Журнал "Биология внутренних вод"
№ 3 за 2016 год
Л. В. Петрожицкая*, П. В. Матафонов**
Мошки (Diptera, Simuliidae) Восточного Забайкалья: таксономический состав и физико-географическое распределение.
*Институт систематики и экологии животных СО РАН, 630091 Новосибирск, ул. Фрунзе, 11
**Институт природных ресурсов, экологии и криологии СО РАН, 672014 Чита, ул. Недорезова, 16а
e-mail: lusia@eco.nsc.ru
Описана фауна и разнообразие мошек отдельных физико-географических округов Восточного Забайкалья. Даны структурные характеристики сообществ мошек горных и равнинных ландшафтов южных и северных территорий региона. Впервые для региона приведен список из 47 видов 5 родов сем. Simuliidae. Рассмотрено распределение видов в трех крупных бассейнах рек – Верхнего Амура, Лены и Енисея. Проведен сравнительный анализ сходства видового состава мошек c сопредельными территориями. По составу мошки Верхне-Амурского бассейна близки к населению р. Селенги и значительно отличаются от участков Среднего и Нижнего Амура, из дальневосточной фауны отмечены только три вида мошек.
Ключевые слова: биоразнообразие, мошки, Simuliidae, сообщества, пространственное распределение.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Атлас Забайкалья. М.; Иркутск: Главное управление геодезии и картографии при Совете Министров СССР, 1967. 176 с.
2. Балашов Ю.С. Паразитизм клещей и насекомых наземных позвоночных. СПб.: Наука, 2009. 357 с.
3. Бассейн реки Амур в Забайкалье в вопросах и ответах. Чита: Экспресс, 2011. 208 с.
4. Биоразнообразие Сохондинского заповедника. Членистоногие. Новосибирск; Чита: Сиб. центр деловых технологий, 2004. 431 с.
5. Боброва С.И., Глущенко Н.П., Кухарчук Л.П., Мирзаева А.Г. Кровососущие двукрылые насекомые в районе строительства Байкало-Амурской магистрали // Паразитические насекомые и клещи Сибири. Новосибирск: Наука, 1980. С. 5–71.
6. Болдаруева Л.В. Новый вид мошки (Diptera, Simuliidae) из Бурятии // Тр. Всес. энтомол. о-ва. 1979. Т. 61: Новые виды насекомых. С. 179–181.
7. Болдаруева Л.В. Новый вид мошки рода Simulium Latr. (Diptera, Simuliidae) из Бурятии // Членистоногие и гельминты Сибири (Новые и малоизвестные виды фауны Сибири). Новосибирск: Наука, 1979. С. 44–45.
8. Болдаруева Л.В. К экологии преимагинальных фаз мошек (Diptera, Simuliidae) в среднем течении р. Витим // Паразитические насекомые и клещи Сибири. Новосибирск: Наука, 1980. С. 82–97.
9. Болдаруева Л.В. Экологические особенности мошек (Diptera, Simuliidae) Муйской котловины // Паразитические насекомые и клещи Сибири. Новосибирск: Наука, 1980. С. 72–81.
10. Воробец Э.И. Мошки (Diptera, Simuliidae) равнинных и предгорных районов Якутии: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Новосибирск, 1979. 21 с.
11. Галгош И. Мошки Монгольской Народной республики: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Л., 1989. 40 с.
12. Гвоздецкий Н.А., Михайлов Н.И. Физическая география СССР. Азиатская часть. М.: Мысль, 1970. 543 с.
13. Гребельский С.Г. Фенология развития, сезонная динамика кровососущих мошек Енисейско-Ленского междуречья // Сезонная и вековая динамика природы Сибири. Иркутск: Иркутск. гос. ун-т, 1963. С. 47–57.
14. Гуцевич А.В. Материалы по изучению кровососущих двукрылых насекомых (гнуса) в Забайкалье // Тр. Военно-мед. акад. Рабоче-Крестьянской Красной Армии им. С.М. Кирова. 1939. Т. 19. С. 35–47.
15. Дарийчук З.С., Кухарчук Л.П. Кровососущие мошки Приселенгинской степи (Юго-Западное Забайкалье) // Изв. Сиб. отд. АН СССР. 1972. № 5. Сер. биол. наук. Вып. 1. С. 87–89.
16. Дорогостайский В.Ч., Рубцов И.А., Власенко Н.М. Материалы для изучения систематики, географического распространения и биологии мошек (Simuliidae) Восточной Сибири // Паразитол. сб. ЗИН АН СССР. 1935. Вып. 5. С. 107–204.
17. Конурбаев Э.О. Экологическая классификация текучих водоёмов Средней Азии и особенности расселения мошек (Diptera, Simuliidae) в типологически различных водотоках // Энтомол. обозрение. 1977. Т. 56. Вып. 4. С. 736–750.
18. Конурбаев Э.О. Мошки (Diptera, Simuliidae) Средней Азии. Фрунзе: Илим, 1984. 231 с.
19. Нагорья Прибайкалья и Забайкалья. М.: Наука, 1974. 359 с.
20. Патрушева В.Д. Фаунистические и экологические особенности кровососущих мошек бассейнов Оби, Енисея, Лены // Итоги исследования живой природы Сибири. Новосибирск: Наука, 1973. С. 130–150.
21. Патрушева В.Д. Мошки Сибири и Дальнего Востока. Новосибирск: Наука, 1982. 320 с.
22. Петрожицкая Л.В. Мошки (Diptera, Simuliidae) Приенисейских лесотундровых и таежных ландшафтов // Сиб. биол. журн. 1993. Вып. 5. С. 55–60.
23. Петрожицкая Л.В. Новые сведения по фауне мошек (Diptera, Simuliidae) Южного Алтая (Восточный Казахстан) // Евразиат. энтомол. журн. 2012. Т. 11. Вып. 5. С. 488–492.
24. Петрожицкая Л.В. Пространственно-типологическая характеристика сообществ мошек (Diptera, Simuliidae) Восточной Тувы // Евразиат. энтомол. журн. 2013. Т. 12. Вып. 5. С. 506–514.
25. Петрожицкая Л.В., Родькина В.И. Структура сообществ и пространственное распределение мошек (Diptera: Simuliidae) в водотоках бассейна р. Абакан // Сиб. экол. журн. 2002. Т. 9. № 3. С. 371–376.
26. Петрожицкая Л.В., Родькина В.И. Видовой состав и распределение мошек (Diptera: Simuliidae) в водотоках Юго-Восточного Алтая // Зоол. журн. 2007. Т. 86. Вып. 7. С. 831–838.
27. Петрожицкая Л.В., Родькина В.И. Пространственное распределение мошек (Diptera: Simuliidae) в бассейне горной реки Сема Северного Алтая // Биология внутр. вод. 2009. № 1. С. 36–44.
28. Предбайкалье и Забайкалье. М.: Наука, 1965. 492 с.
29. Рубцов И.А. К фауне мошек (Simuliidae) Забайкалья // Паразитол. сб. ЗИН АН СССР. 1939. Т. 7. С. 193–201.
30. Рубцов И.А. Мошки (сем. Simuliidae) // Фауна СССР. М.; Л.: Наука, 1940. Т. 6. Вып. 6. 533 с.
31. Рубцов И.А. Мошки (сем. Simuliidae) // Фауна СССР. М.; Л.: Наука, 1956. Т. 6. Вып. 6. 860 с.
32. Стуколкина Н.Н. Материалы по биологии мошек (Simuliidae) Забайкалья // Тр. Военно-мед. акад. Рабоче-Крестьянской Красной Армии им. С.М. Кирова. 1939. Т. 19. С. 49–60.
33. Типы местности и природное районирование Читинской области М.: Изд-во АН СССР, 1961. 158 c.
34. Чубарева Л.А., Петрова Н.А. Цитологические карты политенных хромосом и некоторые морфологические особенности кровососущих мошек России и сопредельных стран (Diptera: Simuliidae): Атлас. СПб.; М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2008. 135 с.
35. Янковский А.В. Два новых вида мошек, Hemicnetha tsharae sp. n. и Simulium vershininae sp.n. (Simuliidae) из Читинской области (Чарская котловина) // Паразитология. 1982. Т. 16. Вып. 3. С. 248–253.
36. Янковский А.В. Определитель мошек (Diptera: Simuliidae) России и сопределеьных территорий (бывшего СССР). СПб.: Зоол. ин-т РАН, 2002. 570 с.
37. Яныгина Л.В. Зообентос бассейна Верхней и Средней Оби: воздействие природных и антропогенных факторов: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Владивосток, 2014. 39 с.
38. Adler P.H., Crosskey R.W. World blackflies (Diptera: Simuliidae): a comprehensive revision of the taxonomic and geographical inventory // 2012. 119 p. URL: http://entweb.clemson.edu/biomia/pdfs/blackflyinventory.pdf.
39. Britain J.E., Castella E., Rnispel S. et al. Ephemeropteran and Plecopteran communities in glacial rivers // Res. Update on Ephemeroptera and Plecoptera. Perugia: Univ. Perugia, 2003. P. 271–277.
40. Engelmann H.-D. Zur Dominanzklassifizierung von Bodenarhropoden // Pedobiologia. 1978. Bd 18. S. 378–380.
41. Illies J., Botosaneanu L. Problems et methods de la classification et de zonation ecologique des eaux courantes, considerees surtout du point de vue Faunistique // Verh. Int. Ver. theor. und angew Limnol. 1963. V. 2. S. 1–57.
42. Jansonnet R., Nilsson C., Renofalt B. Fragmentation of riparian floras in rivers with multiple dams // Ecology. 2000. V. 81. № 4. P. 899–903.
43. Petrozhitskaya L.V., Illesova D.V., Rodkina V., Halgos J. Species composition of blackflies (Diptera, Simuliidae) in the transboundary area of the Russian and Mongolian Altai Mts. // Proc. 4 Int. Simuliidae Symp. Ankara, 2010. P. 20.
44. Petrozhitskaya L.V., Rodkina V.I., Zaika V.V. Distribution of amphibiotic insects of different trophic groups in mountainous and steppe rivers of Western Tuva // Inland Water Biology. 2010. V. 3. № 2. P. 126–134.
45. Zhang Y., Malmqvist B. Relationships between labral fan morphology and habitat in North Swedish blackfly larvae (Diptera: Simuliidae) // Biol. J. Linnean Soc. 1996. V. 59. P. 261–280.
М. С. Куликовский, И. В. Кузнецова
Морфология, таксономическое положение и распространение родов диатомовых водорослей Ochigma и Khursevichia из озера Байкал.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: max-kulikovsky@yandex.ru
Рассмотрена морфология родов диатомовых водорослей Ochigma и Khursevichia на основе новых данных, полученных в световом и сканирующем электронном микроскопах. Эти роды описаны из древнего оз. Байкал. Морфология шва и порового аппарата соответствует таковой у цимбеллоидных диатомовых. Предложено включить эти роды в порядок Cymbellales и семейство Cymbellaceae. Обсуждено значение различных качественных морфологических признаков для систематики диатомовых водорослей на родовом уровне. Симметрия не может использоваться как признак для отнесения родовых таксонов к тем или иным более крупным категориям. Важно строение шва, его дистальных концов и порового аппарата. Поровый аппарат у представителей рода Khursevichia представлен тектулюмом, у рода Ochigma он устроен сложнее: с внутренней стороны это тектулюм, с наружной представлен форикулой. Дано расширенное описание вида Ochigma dubiosa (Metzeltin, Kulikovsky et Lange-Bertalot).
Ключевые слова: диатомовые водоросли, Ochigma, Khursevichia, Cymbellales, морфология, таксономическое положение, распространение, озеро Байкал.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Вишняков В.С., Куликовский М.С., Генкал С.И. и др. Систематика и распространение диатомовых водорослей рода Epithemia Kützing в водоемах Центральной Азии // Биология внутр. вод. 2014. № 4. С. 18–31.
2. Генкал С.И., Лепская Е.В. Материалы к флоре Bacillariophyta озера Кроноцкое (Камчатка, Россия) // Альгология. 2015. Т. 25. № 1. С. 74–82.
3. Кузьмин М.И., Хурсевич Г.К., Прокопенко А.А. и др. Центрические диатомовые водоросли позднего кайнозоя озера Байкал. Новосибирск: ГЕО, 2009. 370 с.
4. Benhke A., Friedl T., Chepurnov V.A., Mann D.G. Reproductive compatibility and rDNA sequence analysis in the Sellaphora pupula species complex (Bacillariophyta) // J. Phycol. 2004. V. 40. № 1. P. 193–208.
5. Bruder K., Medlin L.K. Molecular assessment of phylogenetic relationships in selected species/genera in the naviculoid diatoms (Bacillariophyta). I. The genus Placoneis // Nova Hedwigia. 2007. V. 85. № 3–4. P. 331–352.
6. Bruder K., Medlin L.K. Morphological and molecular investigations of naviculoid diatoms. II. Selected genera and families // Diatom Res. 2008. V. 23. № 2. P. 283–329.
7. Bruder K., Medlin L.K. Morphological and molecular investigations of naviculoid diatoms. III. Hippodonta and Navicula s.s. // Diatom Res. 2008. V. 23. № 2. P. 331–347.
8. Cox E.J. Pore occlusions in raphid diatoms – a reassessment of their structure and terminology, with particular reference to members of the Cymbellales // Diatom. 2004. V. 20. P. 33–46.
9. Cox E.J. Ontogeny, homology, and terminology – wall morphogenesis as an aid to character recognition and character state definition for pennate diatom systematics // J. Phycol. 2012. V. 48. P. 1–31.
10. Dorofeyuk N.I., Kulikovskiy M.S. Diatoms of Mongolia // Biological Resources and Natural Conditions of Mongolia: Proceedings of Joint Russian-Mongolian Complex Biological Expeditions RAS and MAS. Moscow: IEE RAN, 2012. V. 59. P. 1–366.
11. Kermarrec L., Ector L., Bouchez A. et al. A preliminary phylogenetic analysis of the Cymbellales based on 18S rDNA gene sequencing // Diatom Res. 2011. V. 26. № 3. P. 305–315.
12. Kociolek J.P., Kulikovskiy M., Solak C.N. The diatom genus Gomphoneis Cleve (Bacillariophyceae) from Lake Baikal, Russia // Phytotaxa. 2013. V. 154. № 1. P. 1–37.
13. Kociolek J.P., Stepanek J.G., Lowe R.L. et al. Molecular data show the enigmatic cave-dwelling diatom Diprora (Bacillariophyceae) to be a raphid diatom // Eur. J. Phycol. 2013. V. 48. № 4. P. 474–484.
14. Kozhowa O.M., Izmest'eva L.R. Lake Baikal: evolution and biodiversity. Leiden: Backhuys Publ., 1998. 447 p.
15. Kulikovskiy M., Gusev E., Andreeva S., Annenkova N. Phylogenetic position of the diatom genus Geissleria Lange-Bertalot & Metzeltin and description of two new species from Siberian mountain lakes // Phytotaxa. 2014. V. 177. № 5. P. 249–260.
16. Kulikovskiy M.S., Kuznetsova I.V. Biogeography of Bacillariophyta. Main concepts and approaches // Int. J. Algae. 2014. V. 16. № 3. P. 207–228.
17. Kulikovskiy M., Lange-Bertalot H., Kuznetsova I., Khursevich G. Three new species of Eolimna Lange-Bertalot & Schiller (Bacillariophyta) from Lake Baikal // Nova Hedwigia. Beiheft. 2015. V. 144. P. 199–209.
18. Kulikovskiy M.S., Lange-Bertalot H., Metzeltin D., Witkowski A. Lake Baikal: hotspot of endemic diatoms. I. // Iconographia Diatomologica. 2012. V. 23. P. 7–608.
19. Kulikovskiy M., Lange-Bertalot H., Witkowski A. Gliwiczia gen. nov., a new achananthoid diatom genus with description of four species new for science // Phytotaxa. 2013. V. 109. № 1. P. 1–16.
20. Kulikovskiy M.S., Lange-Bertalot H., Witkowski A., Kuznetsova I. Description of four species belonging in Cavinula D.G. Mann & Stickle from Lake Baikal with notes on family Cavinulaceae D.G. Mann in Round et al. 1990 // Nova Hedwigia. 2014. V. 99. № 3–4. P. 487–499.
21. Levkov Z., Krstic S., Metzeltin D., Nakov T. Diatoms of Lakes Prespa and Ohrid // Iconographia Diatomologica. 2007. V. 16. P. 1–611.
22. Mann D.G. Sieves and flaps: siliceous minutiae in the pores of raphid diatoms // Proc. 6th Diatom Symp. Stuttgart, 1981. P. 279–300.
23. Nakov T., Ruck E., Galachyants Y. et al. Molecular phylogeny of the Cymbellales (Bacillariophyceae, Heterokontophyta) with a comparison of models for accommodating rate variation across sites // Phycologia. 2014. V. 53. № 4. P. 359–373.
24. Round F.E., Crawford R.M., Mann D.G. The Diatoms. Biology and morphology of the genera. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1990. 747 p.
25. Sorhannus U. Diatom phylogenetics inferred based on direct optimization of nuclear-encoded SSU rRNA sequences // Cladistics. 2004. V. 20. № 5. P. 487–497.
Ж. В. Корнева*, В. В. Куклин**, С. А. Корниенко***
Ультраструктура сетчатой матки и особенности матротрофии у трех видов высших цестод Cestoda, Cyclophyllidea).
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Мурманский морской биологический институт Кольского научного центра РАН, 183010 г. Мурманск, ул. Владимирская, 11
***Институт систематики и экологии животных СО РАН, 630091 Новосибирск, ул. Фрунзе, 11
e-mail: janetta@ibiw.yaroslavl.ru
У циклофиллидных цестод с водным (Alcataenia dominicana и A. larina) и наземным (Arostrilepis tenuicirrosa) жизненными циклами исследованы ультраструктура сетчатой матки в прегравидных и гравидных проглоттидах. У всех изученных видов клетки медуллярной паренхимы, окружающие матку, заполнены липидными включениями. Для Alcataenia dominicana и Arostrilepis tenuicirrosa характерно гипертрофическое развитие мелких экскреторных сосудов, которые окружают матку, контактируют с маточным эпителием и проникают в дивертикулы. На основе сравнительного анализа полученных результатов и имеющихся данных по другим видам цестод предположили, что сетчатое строение матки, накопление липидов и контакт маточного эпителия с экскреторными сосудами – морфофункциональные адаптации, обеспечивающие матротрофию и позволяющие циклофиллидным цестодам достигать максимальной плодовитости.
Ключевые слова: Cestoda, Alcataenia, Arostrilepis, половая система, матка, ультраструктура, питание эмбрионов, матротрофия.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Виноградов Г.А., Давыдов В.Г., Куперман Б.И. Морфофизиологические особенности водно-солевого обмена у некоторых псевдофиллидных цестод // Паразитология. 1982. Т. 16. № 3. С. 188–193.
2. Гуляев В.Д., Корниенко С.А. О причинах и механизмах возникновения миниатюрных полимерных Hymenolepididae (Cyclophyllidea, Cestoda) – паразитов бурозубок // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2009. Т. 313. № 3. С. 249–256.
3. Корнева Ж.В., Корниенко С.А. Взаимосвязь матки и развивающихся яиц у высших цестод с различной плодовитостью // Изв. РАН. Сер. биол. 2013. № 4. С. 420–430.
4. Корнева Ж.В., Корниенко С.А., Гуляев В.Д. Морфологические и ультраструктурные изменения матки и формирование синкапсул в онтогенезе Ditestolepis diaphana (Cestoda: Cyclophyllidea) // Зоол. журн. 2010. Т. 89. № 10. С. 1181–1189.
5. Куперман Б.И. Функциональная морфология низших цестод. Л.: Наука, 1988. 167 с.
6. Назимова Д.И., Пономарев Е.И., Степанов Н.В., Федотова Е.В. Черневые темнохвойные леса на юге Красноярского края и проблемы их обзорного картографирования // Лесоведение. 2005. № 1. С. 12–18.
7. Bryant C. The utilization the carbon dioxide by Moniezia expansa: aspect of metabolic regulation // Comparative Biochemistry of Parasites. L.; N.Y.: Acad. Press, 1972. P. 49–80.
8. Chomicz L. Comparative ultrastructural studies on uterus-egg interrelations in some species of hymenolepidids (Cestoda) with aquatic life cycles // Acta Parasitol. 1996. V. 41. P. 191–198.
9. Chomicz L., Czubaj A. Transmission electron micrograph studies of developing oncospheral envelopes of Fimbriaria fasciolaris (Hymenolepididae) // Parasitol. Res. 1991. V. 77. P. 503–508.
10. Chomicz L., Grytner-Ziecina B., Walski M. Morphological studies on envelopes of oncospheres of the hymenolepidid cestode, Fimbriaria fasciolaris (Pallas, 1781) // Acta Parasitol. 1995. V. 40. № 1. P. 26–30.
11. Chomicz L., Swiderski Z. Functional ultrastructure of the oncospheral envelopes of twelve hymenolepidid species with aquatic life cycles // Acta Parasitol. 2004. V. 49. № 3. P. 177–181.
12. Chowdhury N., De Rycke P.H. Qualitative distribution of neutral lipids and phospholipids in Hymenolepis microstoma from the cysticercoid to the egg producing adult // Z. Parasitenkd. 1976. V. 50. P. 151–160.
13. Conn D.B. Ultrastructure of the gravid uterus of Hymenolepis diminuta (Platyhelminthes: Cestoda) // J. Parasitol. 1993. V. 79. № 4. P. 583–590.
14. Conn D.B., Etges F.J. Fine structure and histochemistry of the parenchyma and uterine egg capsules of Oochoristica anolis (Cestoda: Linstowiidae) // Z. Parasitenkd. 1984. V. 70. № 6. P. 769–779.
15. Conn D.B., Forman L.A. Morphology and fine structure of the gravid uterus of three hymenolepidid tapeworm species (Platyhelminthes: Cestoda) // Invert. Reprod. Develop. 1993. V. 23. № 2–3. P. 95–103.
16. Davydov V.G., Korneva J.V. Differentiation and structure of a uterus for Nippotaenia mogurndae Yamaguti et Miato, 1940 (Cestoda: Nippotaeniidea) // Helmintologia. 2000. V. 37. № 2. P. 77–82.
17. Hamilton J.D., Dawson A.M., Webb J.P.W. Observation upon smallgut “mucosal” pO2 and pCO2 in anesthetized dogs // Gastroenterology. 1968. V. 55. P. 52–60.
18. King J.W., Lumsden R.D. Cytological aspects of lipid assimilation by cestodes. Incorporation of linoleic acid into the parenchyma and eggs of Hymenolepis diminuta // J. Parasit. 1969. V. 55. P. 250–260.
19. Korneva J.V., Kornienko S.A., Jones M.K. Fine structure of the uteri in two hymenolepidid tapeworm Skrjabinacanthus diplocoronatus and Urocystis prolifer (Cestoda: Cyclophyllidea) parasitic in shrews that display different fecundity of the strobilae // Parasitol. Res. 2012. V. 111. № 4. P. 1523–1530.
20. Korneva J.V., Kornienko S.A., Kuklin V.V. et al. Relationships between uterus and eggs in cestodes from different taxa, as revealed by scanning electron microscopy // Parasitol. Res. 2014. V. 113. P. 425–432.
21. Makarikov A.A., Gulyaev V.D., Kontrimavichus V.L. A redescription of Arostrilepis horrida (Linstow, 1901) and descriptions of two new species from Palaearctic microtine rodents, Arostrilepis macrocirrosa sp. n. and A. tenuicirrosa sp. n. (Cestoda: Hymenolepididae) // Folia Parasitol. 2011. V. 58. № 2. P. 108–120.
22. Mayberry L.F., Tibbits F.D. Hymenolepis diminuta (Order Cyclophyllidea): Histochemical localization of glycogen, neutral lipid, and alkaline phosphatase in developing worms // Z. Parasitenkd. 1972. V. 38. P. 66–76.
23. Mettrick D.F., Podesta R.B. Ecological and physiological aspects of helminth-host interactions in the mammalian gastrointestinal canal // Adv. Parasitol. 1974. V. 12. P. 183–278.
24. Ostrovsky A.N., Lidgard S., Gordon D.P. et al. Matrotrophy and placentation in invertebrates: a new paradigm // Biol. Rev. 2015. Camb. Philos. Soc. DOI: 10.1111/brv. 12189.
25. Overturf M., Dryer R.L. Lipid metabolism in the adult cestode Hymenolepis diminuta // Comp. Biochem. Physiol. 1968. V. 27. P. 145–175.
26. Podesta R.B., Mettrick D.F. Components of glucose transport in the host parasite system Hymenolepis diminuta (Cestoda) and the rat intestine // Can. J. Physiol. Pharm. 1974. V. 52. P. 183–197.
27. Rybicka K. Embryogenesis in cestodes // Adv. Parasitol. 1966. V. 20. P. 759–767.
28. Shimazu T. Some cestodes and acanthocephalan larvae from euphausiid crustaceans collected in northern North Pacific Ocean // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1975. V. 41. P. 813–821.
29. Swiderski Z., Xylander W.E.R. Vitellocytes and vitellogenesis in cestodes in relation to embryonic development, egg production and life cycle // Int. J. Parasitol. 2000. V. 30. P. 805–817.
В. Г. Гагарин, В. А. Гусаков
Два новых вида свободноживущих нематод семейства Dorylaimidae (Nematoda, Dorylaimida) из мелких пресных водоемов Вьетнама.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: gagarin@ibiw.yaroslavl.ru
Приведены описания и рисунки двух видов свободноживущих нематод, обнаруженных в грунте мелких водоемов Вьетнама. Laimydorus propinquus sp. n. морфологически близок к L. papillatus Ahmad, Ahmad, 2002, но отличается от него более длинным и относительно более толстым телом, относительно более длинным хвостом у самок, ближе к серединe тела расположенной вульвой, более длинным преректумом у самок, более длинными спикулами и большим количеством преклоакальных супплементов у самцов. Ischiodorylaimus paracognatus sp. n. отличается от близкого вида I. cognatus Andrássy, 1983 более длинным телом, относительно коротким пищеводом, более толстой кутикулой, более широкой областью губ и более короткими спикулами.
Ключевые слова: Вьетнам, мелкие пресные водоемы, свободноживущие нематоды, Laimydorus propinquus sp. n., Ischiodorylaimus paracognatus sp. n..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Гусаков В.А., Гагарин В.Г., Семенова Л.М. Таксономический состав и структура мейо- и макрозообентоса исследованных водоемов // Экология внутренних вод Вьетнама. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. С. 163–190.
2. Ahmad A., Ahmad W. Studies of the genus Laimydorus Siddigi, 1969 (Dorylaimida: Dorylaimidae) from India // J. Nem. Morph. Syst. 2002. V. 4. № 2. P. 91–109.
3. Andrássy I. The free-living nematode fauna of the Hortobágy national park // The Fauna of the Hortobágy National Park. Budapest: Akadémial Kiadó, 1983. P. 31–46.
4. Andrássy I. Free-living nematodes of Hungary (Nematoda errantia). V. III // Pedozoologica Hungarica. 2009. V. 5. P. 1–608.
5. Baqri Q.H., Jana A. Nematodes from West Bengal (India). XIII. Four new species of Dorylaimidae, with a key to the species of Laimydorus Siddiqi, 1969 (Dorylaimoidea) // Nematologica. 1982. V. 28. P. 192–205.
6. Gagarin V.G., Gusakov V.A. Two new species of the genus Laimydorus Siddiqi, 1969 (Nematoda, Dorylaimida) from small fresh water bodies of Vietnam // Амурск. зоол. журн. 2014. Т. 6. № 2. С. 117–124.
7. Gagarin V.G., Nguyen Vu Thanh. Three new species of free-living nematodes from freshwater bodies of North Vietnam // Int. J. Nematol. 2005. V. 15. № 1. P. 110–116.
8. Khan T.H., Ahmad W. Descriptions of Ischiodorylaimus paraugandanus sp. n. and Tylencholaimus asymmetricus sp. n. (Nematoda: Dorylaimida) from India // Indian J. Nematol. 1994. V. 24. № 2. P. 206–210.
9. Mushtaq P., Ahmad W. Five new and two known species of Dorylaimidae (Nematoda) from Jammu and Kashmir State, India // Int. J. Nematol. 2006. V. 16. № 1. P. 19–24.
10. Nguyen Vu Thanh. Free-living nematodes Monhysterida, Araeolaimida, Chromadorida, Rhabditida, Enoplida, Mononchida, Dorylaimida. Hanoi: Sci. Techn. Publ. House, 2007. 455 p.
11. Peña-Santiago R. Dorylaimidae species listing. Synopsis of the described Dorylaimida of the world. Entomology at Texas A & M. University. https: // insects.tamy.edu/research /collection/hallan/Nematoda/ Family/Dorylaimidae. Txt (website, cited 30.12.2013). 2007.
12. Siddiqi M.R. Crateronema n. gen. (Crateronematidae n. fam.) and Poronema n. gen (Lordellonematinae n. subfam) and Chrysonemoides n. gen. (Chrysonematidae n. fam.) with a revised classification of Dorylaimoidea (Nematoda) // Nematologica. 1969. V. 15. P. 81–100.
13. Vinciguerra M.T. Dorylaimida. Part II. Superfamily Dorylaimoidea // Freshwater Nemаtodes: Ecology and Taxonomy. Wallingford; Oxfordshire: CABI Publ., 2006. P. 392–467.
14. Williams D.D., Williams N.E. A counterstaining technique for use in sorting benthic samples // Limnol., Oceanogr. 1974. V. 19. P. 152–154.
А. И. Копылов, Д. Б. Косолапов, Е. А. Заботкина, Е. В. Румянцева
Вирусы в донных отложениях мезо-эвтрофного водохранилища (Рыбинское водохранилище, Верхняя Волга).
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: kopylov@ibiw.yaroslavl.ru
В донных отложениях Рыбинского водохранилища определены общее количество, морфологический и размерный состав вириобентоса, численность бактерий, инфицированных вирусами, количество зрелых фагов внутри бактериальных клеток, а также вирус-индуцированная смертность, численность и продукция бактериобентоса. Общее количество вириобентоса изменялось в пределах (1.1–10.9) × 10⁹ (в среднем (5.9 ± 0.6) × 10⁹) частиц/см³, его отношение к общему количеству бактерий – в пределах 0.2–2.1 (в среднем 0.9 ± 0.3). Между численностью бентосных вирусов и численностью и продукцией бентосных бактерий выявлены слабые положительные корреляции. На большинстве исследованных участков водохранилища инфицированные бентосные бактерии или не были обнаружены, или доля видимых инфицированных клеток бактерий (FVIC) не превышала 0.5% общей численности бактериобентоса (Nᴮ). Сравнительно высокая зараженность бактерий вирусами отмечена в донных отложениях только одной глубоководной станции, где FVIC составляла 2.5% Nᴮ.
Ключевые слова: вириобентос, бактериобентос, вирус-индуцированная смертность бактерий, Рыбинское водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Копылов А.И., Заботкина Е.А., Романенко А.В. Вирусы в донных осадках эвтрофного водохранилища (Иваньковское водохранилище, Верхняя Волга) // Биология внутр. вод. 2015. № 3. С. 23–29.
2. Копылов А.И., Косолапов Д.Б., Заботкина Е.А. Вирусы в планктоне Рыбинского водохранилища // Микробиология. 2007. Т. 76. № 6. С. 879–887.
3. Bettarel Y., Bouvy M., Dumont C., Sime-Ngando T. Virus-bacterium interactions in water and sediment of West African inland aquatic systems // Appl. Environ. Microbiol. 2006. V. 72. P. 5274–5282.
4. Binder B. Reconsidering the relationship between virally induced bacterial mortality and frequency of infected cells // Aquat. Microb. Ecol. 1999. V. 18. P. 207–215.
5. Danovaro R., Corinakdsi C., Filippini M. et al. Viriobenthos in freshwater and marine sediments: a review // Freshwater Ecol. 2008. V. 53. P. 1186–1213.
6. Danovaro R., Manini E., Dell’Anno A. Higher abundance of bacteria than viruses in deep Mediterranean sediments // Appl. Environ. Microbiol. 2002. V. 68. P. 1468–1472.
7. Filippini M., Boesing N., Bettarel Y. et al. Infection paradox: high abundance but low impact of freshwater benthic viruses // Appl. Environ. Microbiol. 2006. V. 72. P. 4893–4898.
8. Findlay S. Thymidine Incorporation into DNA as an estimate of sediment bacterial production // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology. Boca Raton; Ann Arbor: Lewis Publ., 1993. P. 505–508.
9. Fischer U.R., Wieltschnig C., Kirschner A.K.T., Velimirov B. Does virus-induced lysis contribute to bacterial mortality in the oxygenated sediment layer of shallow oxbow lake? // Appl. Environ. Microbiol. 2003. V. 69. P. 5281–5289.
10. Glud R.N., Middelboe M. Virus and bacteria dynamics of a coastal sediment: implication for benthic carbon cycling // Limnol., Oceanogr. 2004. V. 49. P. 2073–2081.
11. Hewson I., Fuhrman J.A. Viriobenthos production and virioplankton sorptive scavenging by suspended sediment particles in coastal and pelagic waters // Microb. Ecol. 2003. V. 46. P. 337–347.
12. Hewson L., O’Nell J.M., Fuhrman J.A., Dennison W.C. Virus-like particle distribution and abundance in sediments and overlying waters along eutrophication gradients in two subtropical estuaries // Limnol., Oceanogr. 2001. V. 46. P. 1734–1746.
13. Maranger R., Bird D.F. High concentrations of viruses in the sediments of Lac Gilbert, Quebec // Microb. Ecol. 1996. V. 31. P. 141–151.
14. Mei M.L. Danovaro R. Virus production and life strategies in aquatic sediments // Limnol., Oceanogr. 2004. V. 49. P. 459–470.
15. Middelboe M., Glud R.N., Finster K. Distribution off viruses and bacteria in relation to diagenetic activity in an estuarine sediment // Limnol., Oceanogr. 2003. V. 48. P. 1447–1456.
16. Moriarty D.J.W. Bacterial productivity in sediments // Arch. Hydrobol. Beih. Ergebn. Limnol. 1990. H. 34. S. 183–189.
17. Noble R.T., Fuhrman J.A. Use of SYBR Green for rapid epifluorescence count of marine viruses and bacteria // Aquat. Microb. Ecol. 1998. V. 14. P. 113–118.
18. Norland S. The relationship between biomass and volume of bacteria // Handbook of Methods in Aquatic Microbial Ecology. Boca Raton; Ann Arbor: Lewis Publ., 1993. P. 303–308.
19. Paul J.H., Rose J.B., Jiano S.C. et al. Distribution of viral abundance in the reef environment of Key Largo, Florida // Appl. Environ. Microbiol. 1993. V. 59. P. 718–724.
20. Pinto F., Larsen S., Casper P. Viriobenthos in aquatic sediments: variability in abundance and production and impact on the C-cycle // Aquat. Sci. 2013. V. 75. P. 571–579.
21. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol., Oceanogr. 1980. V. 25. № 5. P. 943–948.
22. Ricciardi-Rigauli M., Bird D.F., Prairie Y.T. Changes in sediment viral and bacterial abundances with hypolimnetic oxygen depletion in a shallow eutrophic Lac Brome (Quebec, Canada) // Can. J. Fish Aquat. Sci. 2000. V. 56. P. 1284–1290.
23. Säwström C., Ask J., Karlsson J. Viruses in subarctic lakes and their impact on benthic and pelagic bacteria // FEMS Microbiol. Ecol. 2009. V. 70. P. 471–482.
24. Slováčková H. Study of the ecological role of viruses and bacteria in aquatic ecosystems: Dis. thesis. Masaryk univ. Faculty sci. Res. centre environ. chem. and ecotoxicol. Brno, 2008. 143 p.
25. Weinbauer M.G. Ecology of prokaryotic viruses // FEMS Microbiol. Rev. 2004. V. 28. № 2. P. 127–181.
Н. М. Минеева, Л. Г. Корнева, В. В. Соловьева
Влияние факторов среды на фотосинтетическую активность фитопланктона водохранилищ реки Волги.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: mineeva@ibiw.yaroslavl.ru
Проанализирована связь фотосинтетической активности биомассы фитопланктона водохранилищ р. Волги с факторами среды. Показано, что в наибольшей степени Ф/Б и П/Б-коэффициенты зависят от содержания общего азота, а также от температурных и световых условий, интегрирующих эффект географической зональности. Из собственных характеристик фитопланктона его продукционные возможности определяются таксономическим составом, ценотическим разнообразием и размерами клеток, величиной биомассы и физиологическим состоянием популяций. Максимальными Ф/Б- и П/Б-коэффициентами характеризуются альгоценозы с преобладанием мелкоклеточных зеленых, динофитовых и криптофитовых водорослей.
Ключевые слова: фитопланктон, Ф/Б- и П/Б-коэффициенты, факторы среды, водохранилища р. Волги.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Апонасенко А.Д., Щур Л.А., Лопатин В.Н. Роль удельной поверхности клеток в продуктивности фитопланктона // Докл. РАН. 2000. Т. 375. № 3. С. 415–417.
2. Белевич Т.А. Продукционные характеристики фитопланктона Белого моря в зависимости от источника азота // Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: Матер. XXVIII Междунар. конф. Петрозаводск, 2009. С. 75–79.
3. Волга и ее жизнь. Л.: Наука, 1978. 348 с.
4. Елизарова В.А. Содержание фотосинтетических пигментов в единице биомассы фитопланктона Рыбинского водохранилища // Флора, фауна и микроорганизмы Волги. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод АН CCCP, 1974. С. 46–66.
5. Елизарова В.А. Популяционный рост водорослей в водоеме // Экология фитопланктона Рыбинского водохранилища. Тольятти: Ин-т экологии Волжск. бассейна РАН, 1999. С. 51–68.
6. Корнева Л.Г. Фитопланктон Волги: разнообразие, структура сообществ, стратегия развития // Актуальные проблемы рационального использования биологических ресурсов водохранилищ. Рыбинск: Дом печати, 2005. С. 119–141.
7. Корнева Л.Г. Фитопланктон водохранилищ бассейна Волги. Кострома: Дом печати, 2015. 284 с.
8. Лаврентьева Г.М. Фитопланктон водохранилищ волжского каскада // Изв. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. Л., 1977. Т. 114. 166 с.
9. Лаврентьева Г.М., Терешенкова Т.В. Удельная скорость фотосинтеза популяций фитопланктона в озерах, мелиорируемых в рыбохозяйственных целях // Тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. Л., 1983. Т. 204. С. 11–21.
10. Ланге Е.К. Оценка продуктивности фитопланктона в нижнем течении реки Преголи // Изв. Калининград. гос.-техн. ун-та. 2014. № 32. С. 153–161.
11. Лунд Д.В. Значение турбулентности воды в периодичности развития некоторых пресноводных видов рода Melosira (Algae) // Ботан. журн. 1966. Т. 51. № 2. С. 176–187.
12. Минеева Н.М. Растительные пигменты в воде волжских водохранилищ. М.: Наука, 2004. 158 с.
13. Минеева Н.М. Первичная продукция планктона в водохранилищах Волги. Ярославль: Принтхаус, 2009. 279 с.
14. Минеева Н.М., Корнева Л.Г., Соловьева В.В. Сезонная и многолетняя динамика содержания хлорофилла в единице биомассы фитопланктона Шекснинского и Рыбинского водохранилищ (Россия) // Альгология. 2013. Т. 23. № 2. С. 150–166.
15. Минеева Н.М., Корнева Л.Г., Соловьева В.В. Содержание хлорофилла в единице биомассы фитопланктона водохранилищ Волжского каскада (Россия) // Альгология. 2014. Т. 24. № 4. С. 476–487.
16. Минеева Н.М., Корнева Л.Г., Соловьева В.В. Фотосинтетическая активность единицы биомассы фитопланктона водохранилищ р. Волги // Биология внутр. вод (в печати).
17. Минеева Н.М., Сигарева Л.Е., Паутова В.Н., Номоконова В.И. Природные и антропогенные факторы функционирования фитопланктона зарегулированной Волги (обзор) // Изв. Самар. науч. центра РАН. 2008. Т. 10. № 5/1. С. 216–227.
18. Михеева Т.М. Оценка продукционных возможностей единицы биомассы фитопланктона // Биологическая продуктивность евтрофного озера. М.: Наука, 1970. С. 50–70.
19. Михеева Т.М. О показателях удельной активности фитопланктона и некоторых причинах, их определяющих // Гидробиол. журн. 1977. Т. 13. № 3. С. 11–15.
20. Михеева Т.М., Бусько С.А. К изучению фитопланктона Волги и его продукционных особенностей // Вод. ресурсы. 1975. № 1. С. 101–109.
21. Николаев И.И. Очерк структуры и формирования годового лимнологического цикла водоемов умеренной зоны // Озера Карельского перешейка. Л.: Наука, 1971. С. 5–23.
22. Палагушкина О.В., Унковская Е.Н. Интенсивность фотосинтеза фитопланктона водоемов Волжско-Камского заповедника // Тр. Волжск.-Камск. гос. природ. заповедника. Казань, 2005. Вып. 6. С. 39–47.
23. Петрова Н.А. Соотношение между продукцией и биомассой фитопланктона Онежского озера // Микробиология и первичная продукция Онежского озера. Л.: Наука, 1973. С. 92–108.
24. Пырина И.Л. Первичная продукция фитопланктона в Иваньковском, Рыбинском и Куйбышевском водохранилищах в зависимости от некоторых факторов // Продуцирование и круговорот органического вещества во внутренних водоемах. М.; Л.: Наука, 1966. С. 249–270.
25. Пырина И.Л. Содержание хлорофилла а в биомассе некоторых видов пресноводного фитопланктона // Водоросли: проблемы таксономии, экологии и использование в мониторинге: Матер. докл. III Междунар. науч. конф. Ярославль, 2014. С. 173–175.
26. Скабичевский А.П. Планктонные диатомовые водоросли пресных вод СССР. М.: Изд-во Москов. ун-та, 1960. 349 с.
27. Терешенкова Т.В. Изменение фотосинтетической активности фитопланктона под влиянием некоторых факторов среды в малых удобряемых озерах // Тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. Л., 1981. Вып. 161. С. 104–111.
28. Терешенкова Т.В. Особенности удельной фотосинтетической активности фитопланктона при доминировании разных систематических групп в малых удобряемых озерах Северо-Запада // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. Л., 1985. Вып. 231. С. 22–30.
29. Трифонова И.С. Фитопланктон и его продукция // Биологическая продуктивность оз. Красного и условия ее формирования. Л.: Наука, 1976. С. 69–104.
30. Трифонова И.С. Состав и продуктивность фитопланктона разнотипных озер Карельского перешейка. Л.: Наука, 1979. 167 с.
31. Трифонова И.С. Экология и сукцессия озерного фитопланктона. Л.: Наука, 1990. 184 с.
32. Уиттекер Р. Сообщества и экосистемы. М.: Прогресс, 1980. 328 с. (Whittaker R.H. Communities and Ecosystems. N.Y.: Macmillan Publ. Co., 1975. 385 p.).
33. Щур Л.А. Структура и функциональные характеристики бактерио- и фитопланктона в экосистемах водоемов разного типа: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Красноярск, 2006. 31 с.
34. Щур Л.А., Апонасенко А.Д., Лопатин В.Н., Пожиленкова П.В. Первичная продукция различных размерных фракций фитопланктона // Гидробиол. журн. 2004. Т. 40. № 3. С. 3–15.
35. Claesson A. Research on recovery of polluted lakes. Algal growth potential and the availability of limiting nutrients //Acta Univ. Uppsala. 1978. № 461. P. 1–27.
36. Cullen J.J., Geider R.J., Ishizaka J., et al. Towards a general description of phytoplankton growth for biogeochemical models // Towards a Model of Oceanic Biogeochemical Processes. B.; Heidelberg: Springer-Verlag, 1993. P. 153–176.
37. Ferland J., Gosselin M., Starr M. Environmental control of summer primary production in the Hudson Bay system: The role of stratification // J. Mar. Syst. 2011. V. 88. P. 385–400.
38. Findenegg I. Relationship between standing crop and primary productivity // Primary Productivity in Aquatic Environments: Mem. Ist. Ital. Idrobiol. 1965. V. 18. P. 271–289.
39. Litvinov A.S., Mineeva N.M., Papchenkov V.G. et al. Volga River Basin // Rivers of Europe. Amsterdam: Elsevier, 2009. P. 23–57.
40. Montecino V., Quiroz D. Specific primary production and phytoplankton cell size structure in an upwelling area off the coast of Chile (30ºS) // Aquat. Sci. 2000. V. 62. P. 364–380.
41. Moreno-Ostos E., Fernandez A., Huete-Ortega M. et al. Size-fractionated phytoplankton biomass and production in the tropical Atlantic // Sci. Mar. 2011. V. 75. № 2. P. 379–389.
42. Vannote R.L., Minshall G.W., Cummins K.W. et al. The river continuum concept // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1980. V. 37. № 1. P. 130–137.
43. Wetzel R.G. Limnology. Lake and River Ecisystems. San Diego; San Francisco; N.Y.; L.; Sydney; Tokyo: Acad. Press, 2001. 1006 p.
О. П. Баженова, И. Ю. Игошкина
Особенности формирования симбиотических сообществ инфузорий, водорослей и цианобактерий в водоеме природного парка "Птичья гавань" (г. Омск).
Омский государственный аграрный университет им. П.А. Столыпина, 644008 г. Омск, Институтская площадь, 2
e-mail: olga52@bk.ru
Рассмотрены особенности формирования симбиотических сообществ, найденных в водоеме природного парка “Птичья гавань” (г. Омск) в конце мая 2010 г. Пробы отбирали планктонной сеткой, фиксировали формалином и микроскопировали под световым микроскопом. В состав симбиоценозов входят ресничные инфузории Ophrydium versatile, а также 35 видов, разновидностей и форм водорослей и цианобактерий, обитающих в фитопланктоне водоема. Установлено, что состав продуцентов симбиоценозов формировался путем отбора наиболее приспособленных к специфическим условиям видов независимо от их обилия в фитопланктоне. Преобладали виды с широкой толерантностью к абиотическим факторам среды (космополиты), а также обитатели загрязненных зон и виды с широкой толерантностью к содержанию в воде органических веществ.
Ключевые слова: симбиоценозы, инфузории, водоросли, цианобактерии, природный парк “Птичья гавань”, водоем.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Ануфриева Т.Н. Эпибионты мезозоопланктона в минерализованных озерах Хакасии // Тез. докл. Х cъезда Гидробиол. о-ва. Владивосток, 2009. С. 15.
2. Баженова О.П. Фитопланктон Верхнего и Среднего Иртыша в условиях зарегулированного стока. Омск: Гос. аграр. ун-т, 2005. 248 с.
3. Баженова О.П., Игошкина И.Ю. Оценка экологического состояния водоёма природного парка “Птичья гавань” (г. Омск) по показателям развития фитопланктона // Омск. науч. вестн. 2014. № 1 (128). С. 136–139.
4. Баринова С.С., Медведева Л.А., Анисимова О.В. Биоразнообразие водорослей-индикаторов окружающей среды. Тель-Авив: Pilies Studio, 2006. 498 с.
5. Беклемишев В.Н. О классификации биоценологических (симфизиологических) связей // Бюл. Моск. о-ва испыт. природы. Отд. биол. 1951. Т. 56. Вып. 5. С. 3–30.
6. Биологический энциклопедический словарь. М.: Сов. энциклопедия, 1986. 831 с.
7. Бордонский Г.С., Бондаренко Н.А., Оболкина Л.А., Тимошкин О.А. Ледовые сообщества Байкала // Природа. 2003. № 7. С. 22–24.
8. Корнева Л.Г. Формирование фитопланктона водоемов бассейна Волги под влиянием природных и антропогенных факторов: Автореф. дис. … докт. биол. наук. СПб, 2009. 47 с.
9. Михеева Т.М. Структура и функционирование фитопланктона при эвтрофировании вод: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Минск, 1992. 63 с.
10. Одум Ю. Экология. М.: Мир, 1986. Т. 1. 328 с. (Odum E.P. Basic Ecology. N.Y.: CBS College Publ., 1983. 434 p.).
11. Определитель пресноводных водорослей СССР. Вып. 10. Т. 1: Зеленые водоросли. Класс Улотриксовые. Порядок Улотриксовые. Л.: Наука, 1986. 306 с.
12. Протасов А.А., Юришинец В.И., Морозовская И.А. Консорция и консортивные отношения в гидробиоценозах // Гидробиол. журн. 2010. Т. 46. № 3. С. 3–18.
13. Радкевич В.А. Экология. Минск: Высш. шк., 1998. 159 с.
14. Федоров В.Д. О методах изучения фитопланктона и его активности. М.: Изд-во Москов. ун-та, 1979. 168 с.
15. Шмидт В.М. Статистические методы в сравнительной флористике. Л.: Изд-во Ленинград. гос. ун-та, 1980. 176 с.
16. Экологическая система Нарочанских озер. Минск: Изд-во Университетское, 1985. 303 с.
17. Eaton J.W., Carr N.G. Observations on the biology and mass occurrence of Ophrydium versatile (Müller) (Ciliophora: Peritrichia) and associated algae in Lough Ree, Ireland // Irish Natur. J. 1980. V. 20. № 2. P. 55–60.
18. Oberholster P.J., Ashton P.J., Fritz G.D., Botha A.M. First report on the colony-forming freshwater ciliate Ophrydium versatile in an African river [Электронный ресурс] // Water SA. 2010. V. 36. № 3. Режим доступа: http://www.scielo.org.za/scielo.php?pid=S1816-795020100003000 12&script=sci_arttext (дата обращения: 03.02.2011).
19. Olesen J. Af jordens skød [Электронный ресурс] // DR dk. Режим доступа: http://www.dr.dk/arkivP1/Natursyn/Udsendelser/2008/06/26124519.htm (дата обращения: 03.02.2011).
20. Queimaliños C.P., Modenutti B.E., Balseiro E.G. Symbiotic association of the ciliate Ophrydium naumanni with Chlorella causing a deep chlorophyll a maximum in an oligotrophic South Andes lake [Электронный ресурс] // J. Plankton Res. 1999. V. 21. № 1. P. 167–178. Режим доступа: http://plankt.oxfordjournals.org/cgi/reprint/21/1/167.pdf (дата обращения: 03.02.2011).
21. Royland J. Green jelly balls of Ophrydium versatile: hidden relationships in pond slime [Электронный ресурс] // The Connecticut River Homepage. Режим доступа: http://www.bio.umass.edu/biology/conn.river/ophrydiu.html (дата обращения: 03.02.2011).
А. В. Лудикова
Диатомовые комплексы поверхностного слоя донных отложений водоемов г. Санкт-Петербурга.
Институт озероведения РАН, 196105 Санкт-Петербург, ул. Севастьянова, 9
e-mail: ellerbeckia@yandex.ru
Впервые исследован состав диатомовых комплексов поверхностного слоя донных отложений 53 водоемов г. Санкт-Петербурга. Обнаружено 350 видов и внутривидовых таксонов диатомей, среди которых преобладают представители родов Achnanthidium, Cocconeis, Cyclostephanos, Cyclotella, Gomphonema, Lemnicola, Navicula, Nitzschia и Stephanodiscus. Широкое распространение мелких центрических планктонных диатомей Cyclostephanos dubius, C. invisitatus, Cyclotella pseudostelligera, Stephanodiscus hantzschii и S. minutulus обусловлено истощением запасов растворенного кремнезема в результате высокой фосфорной нагрузки. Доминированию обрастателей родов Fragilaria, Staurosira и Staurosirella в отдельных мелководных объектах благоприятствует обилие макрофитов. Численность донных диатомей в мелководных высокотрофных городских водоемах лимитируется недостатком освещения, связанным с развитием высшей водной растительности или фитопланктона. Для изученных объектов наиболее характерны алкалифилы и алкалибионты, виды эвтрофных и гипертрофных водоемов, а также диатомеи, обитающие в водоемах с широким диапазоном трофических условий. Среди видов-индикаторов сапробности преобладают β- и α-мезосапробы.
Ключевые слова: диатомовые водоросли, донные отложения, городские водоемы.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Водные объекты Санкт-Петербурга. СПб.: Символ, 2002. 252 с.
2. Гутельмахер Б.Л. Метаболизм планктона как единого целого. Л.: Наука, 1986. 155 с.
3. Давыдова Н.Н. Диатомовые водоросли – индикаторы природных условий водоемов в голоцене. Л.: Наука, 1985. 244 с.
4. Еленкин А.А. О годовой смене фитопланктона во втором озере в Озерках (окр. Ленинграда) // Ботан. матер. Ин-та споровых растений Глав. Ботан. сада РСФСР. 1924. Т. 3. Вып. 1. С. 56–62.
5. Номоконова В.И., Выхристюк Л.А., Тарасова Н.Г. Трофический статус Васильевских озер в окрестностях г. Тольятти // Изв. Самарск. науч. центра РАН. 2001. Т. 3. № 2. С. 274–283.
6. Павлова О.А. Состояние фитопланктона малых водоемов Санкт-Петербурга под влиянием урбанизированного ландшафта // Региональн. экология. 1999. № 4. С. 70–74.
7. Павлова О.А., Афанасьева А.Л. Состав и сапробиологическая характеристика фитопланктона некоторых внутригородских водоемов Санкт-Петербурга // Водоросли: проблемы таксономии, экологии и использование в мониторинге: Матер. II Всерос. науч.-практ. конф. Сыктывкар, 2009. С. 293–295.
8. Порецкий В.С. Некоторые наблюдения над жизнью пруда в парке Главного ботанического сада в связи с наводнением 23 сентября 1924 г. // Русск. гидробиол. журн. 1926. Вып. 5. С. 182–188.
9. Романова О.Л. Альгофлора искусственно созданных водоемов города Зеленограда // Микология и криптогамная ботаника в России: традиции и современность: Тр. Междунар. конф. СПб., 2000. С. 457–460.
10. Румянцев В.А., Игнатьева Н.В. Система ранней диагностики кризисных экологических ситуаций на водоемах. СПб.: ВВМ, 2006. 152 с.
11. Саут Р., Уиттик А. Основы альгологии. М.: Мир, 1990. 597 с. (South R., Whittick A. Introduction to Phycology. Oxford; L.: Blackwell Sci. Publ., 1987. 528 p.).
12. Сусарева О.М. Состояние водной растительности // Система ранней диагностики кризисных экологических ситуаций на водоемах. СПб.: ВВМ, 2006. С. 111–114.
13. Трифонова И.С. Экология и сукцессия озерного фитопланктона. Л.: Наука, 1990. 180 с.
14. Трифонова И.С., Павлова О.А. Структура и сукцессия фитопланктона урбанизированных водоемов Санкт-Петербурга // Гидробиол. журн. 2005. Т. 41. № 1. С. 3–13.
15. Шитиков В.К., Розенберг Г.С., Зинченко Т.Д. Количественная гидроэкология: методы системной идентификации. Тольятти: Ин-т экологии Волжск. бассейна РАН, 2003. 463 с.
16. Шкундина Ф.Б., Дубовик И.Е., Киреева Н.А. и др. Использование водорослей и цианопрокариот для мониторинга территорий городов Республики Башкортостан // Изв. Самарск. науч. центра РАН. 2010. Т. 12. № 14. С. 1183–1187.
17. Bennion H., Simpson G., Anderson N.J. et al. Defining ecological and chemical reference conditions and restoration targets for nine European lakes // J. Paleolimnol. 2011. V. 45. P. 415–431.
18. Bradshaw E.G., Anderson N.J., Jensen J.P. et al. Phosphorus dynamics in Danish lakes and the implications for diatom ecology and palaeoecology // Freshwater Biol. 2002. V. 47. P. 1963–1975.
19. Gibson C.E. Sinking rates of planktonic diatoms in an unstratified lake: a comparison of field and laboratory observations // Freshwater Biol. 1984. V. 14. P. 631–638.
20. Guiry M.D., Guiry G.M. AlgaeBase. World-wide electronic publication. Galway: National Univ. Ireland, 2015. http://www.algaebase.org.
21. Juggins S. C2 Version 1.5 User guide. Software for ecological and paleoecological data analysis and visualisation. Newcastle upon Tyne: Newcastle Univ., 2007. 73 p.
22. Kilham P. A hypothesis concerning silica and the freshwater planktonic diatoms // Limnol., Oceanogr. 1971. V. 17. P. 10–18.
23. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae // Süßwasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart: Gustav Fisher Verlag, 1986. Bd 2. Teil 1. 876 S. 1988. Bd 2. Teil 2. 596 S. 1991. Bd 2. Teil 3. 576 S. 1991. Bd 2. Teil 4. 437 S.
24. Lotter A.F. The recent eutrophication of Baldeggersee (Switzerland) as assessed by fossil diatom assemblages // Holocene. 1998. V. 8. P. 395–405.
25. Müller U. The vertical zonation of adpressed diatoms and other epiphytic algae on Phragmites australis // Eur. J. Phycol. 1999. V. 34. P. 487–496.
26. Sabater S., Haworth E.Y. An assessment of recent trophic changes in Windermere South Basin (England) based on diatom remains and fossil pigments // J. Paleolimnol. 1995. V. 14. P. 151–163.
27. Sayer C. Problems with the application of diatom-total phosphorus transfer functions: examples from a shallow English lake // Freshwater Biol. 2001. V. 46. P. 743–757.
28. Scheffer M., van Nes E.H. Shallow-lakes theory revisited: various alternative regimes driven by climate, nutrients, depth and lake size // Develop. Hydrobiol. 2007. V. 196. P. 455–466.
29. Shortreed K.R.S., Stockner J.G. Response of attached algae to whole-lake fertilization experiments in five British Columbia coastal lakes // Fish. and Mar. Service Technical Rep. 1978. № 802. 29 p.
30. Van Dam H., Mertens A., Sinkeldam J. A coded checklist and ecological indicator values of freshwater diatoms from the Netherlands // Netherlands J. of Aquat. Ecol. 1994. V. 28. № 1. P. 117–133.
31. Willén E. Planktonic diatoms – an ecological review // Ecol. Stud. 1991. V. 62. P. 69–106.
А. Н. Краснова
Аномалии рогозов (Typha L., Typhaceae) в малом антропогенном водоёме бассейна Верхней Волги.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: krasa@ibiw.yaroslavl.ru
Рост антропогенного фактора на гидрофильные экосистемы техногенных водоёмов Волжско-Каспийского бассейна усилил миграцию Typha latifolia L. и его близкородственных видов. В результате обратных скрещиваний и аномалий среди бесприцветничковых секций рода Typha у T. latifolia через фазу вневидовой формы формировались новые морфологические признаки. Приведены морфологические аномалии, выявленные в асс. Typhetum latifoliae Soó, 1927, в малом антропогенном водоёме Ярославской обл.
Ключевые слова: аномалия, Typha latifolia, Typhetum latifoliae, антропогенный фактор, малый антропогенный водоём.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Агаев М.Г. О многообразии видообразовательных процессов // Ботан. журн. 1968. Т. 53. № 1. С. 23–33.
2. Бурда Р.И. Антропогенная трансформация флоры. Киев: Наук. думка, 1991. 168 с.
3. Величко А.А. Эволюционная география: проблемы и решения. М.: ГЕОС, 2012. 563 с.
4. Голуб В.Б., Лактионов А.П., Бармин А.Н., Пилипенко В.Н. Конспект флоры сосудистых растений долины Нижней Волги. Тольятти: Ин-т экологии Волжск. бассейна РАН, Астрахан. гос. пед. ун-т, 2002. 50 с.
5. Гумилев Л.Н. Этносфера: История людей и история природы. М.: Прогресс, 1993. 543 с.
6. Елина Г.А. Растительность Карелии в позднеледниковье и голоцене // Палеонтол. журн. 1999. № 5. С. 112–118.
7. Завадский К.М., Колчинский Э.И. Эволюция эволюции. Историко-критические очерки проблемы. Л.: Наука, 1977. 237 с.
8. Изменение природной среды России в XX веке. М.: Молнет, 2012. 404 с.
9. Кордюм В.А. Эволюция и биосфера. Киев: Наук. думка, 1982. 264 с.
10. Краснова А.Н. Эволюция и тератогенез в роде Typha L. // Вiдновлення порушених природних екосистем: Матер. конф. Донецьк, 2008. С. 288–292.
11. Краснова А.Н. Тератоморфы рогоза широколистного Typha latifolia L. озера Воже // Биология внутр. вод. 2010. № 4. С. 39–44.
12. Краснова А.Н. Гидрофильный род рогоз (Typha L.) (в пределах бывшего СССР). Ярославль: Принтхауc, 2011. 186 с.
13. Краснова А.Н., Кузьмичев А.И. Тераты (морфологические аномалии) в роде рогоз – Typha L. // Биология внутр. вод. 2005. № 2. С. 7–11.
14. Маринка – Волго-Балт. История создания и развития Мариинской водной системы. Вологда: Вологод. гос. пед. ун-т, 2011. 336 с.
15. Оно С.И. Генетические механизмы прогрессивной эволюции. М.: Мир, 1973. 227 с. (Ohno S. Evolution by Gene Duplication. N.Y.: Springer-Verlag, 1970. 160 p.).
16. Папченков В.Г. Макрофиты-вселенцы в водоемах и водотоках бассейна Волги // Инвазии чужеродных видов в Голарктике: Матер. рос.-амер. симп. по инвазийным видам. Ярославль, 2003. С. 98–104.
17. Создатели современного эволюционного синтеза. СПб.: Нестор-История, 2012. 996 с.
18. Тохтарь В.К. Флоры техногенных экотопов: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Киев, 2005. 21 с.
19. Федоров А.А. Тератология и формообразование у растений. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1958. 28 с.
20. Цвелев Н.Н. О значении степени специализации таксонов для их дальнейшей эволюции // Бюл. МОИП. Отд. биол. 1973. Т. 78. № 2. С. 71–82.
21. Шакирова Ф.М., Таиров Р.Г., Латыпова В.З. Виды-вселенцы как угроза биоразнообразию Куйбышевского водохранилища // Уч. зап. Казан. гос. ун-та. Казань, 2005. Т. 141. Кн. 1. С. 5–16.
22. Ciotir C., Kirk H., Row R., Freeland J.R. Intercontinental dispersal of Typha angustifolia and T. latifolia between Europe and North America has implications for Typha invasions // Biol. Invas. 2013. V. 15. P. 1377–1390. The online version of this article DОI: 10.1007/sl10530-012-0377-8.
23. Willder G.J. Normal and teratological pistillate spikes of Typha angustifolia (Typhaceae): gross aspects of morphology, anatomy, symmetry, and inflorescence dehiscence // Can. J. Bot. 1991. V. 69. P. 321–334.
В. В. Костин*, А. О. Звездин*, Д. С. Павлов*, В. К. Голованов**, А. С. Маврин**, В. И. Мартемьянов**, Д. С. Капшай**
Сравнение поведенческих и физиолого-биохимических показателей у сеголетков плотвы Rutilus rutilus L. из реки Ильдь и Ильдинского залива Рыбинского водохранилища.
*Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Ленинский проспект, д. 33
**Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н,
e-mail: vkgolovan@mail.ru
Установлено, что в осенний период размерно-массовые, физиолого-биохимические и поведенческие показатели у сеголетков плотвы из верхнего и нижнего (устьевого) участков р. Ильдь различались. По сравнению с плотвой из верхнего участка реки молодь рыб того же возраста из устьевого участка была больше по длине и массе, имела более высокую концентрацию катионов в организме. В экспериментальных исследованиях рыбы из устья избирали более низкую (на 4◦С) температуру и показали более низкую сопротивляемость потоку воды. Причина различий поведенческих реакций у двух группировок сеголетков плотвы, очевидно, обусловлена, с одной стороны, их физиолого-биохимическими особенностями, с другой – мотивационной составляющей поведения рыб в неодинаковых условиях – гидрологического, термического, гидрохимического режимов и разных объектах питания на территориально удаленных участках одной реки. Предполагается, что в осенний период при понижении температуры воды отход сеголетков плотвы от прибрежья устьевого участка реки (залив водохранилища) в более глубокие места происходит раньше, чем скат молоди в реках. Вероятно, это связано с возникновением миграционного состояния у молоди из устьевого участка реки раньше, чем у сеголетков из верхнего участка, и обусловлено особенностями их физиологического состояния. Отрицательная реореакция, проявляемая в эксперименте у ~80% рыб из залива водохранилища и ~55% у рыб из реки, является подтверждением готовности этих рыб к миграции и, вероятно, поведенческим механизмом отхода рыб от прибрежья и ската из реки.
Ключевые слова: плотва, зимовальная миграция сеголетков, масса и длина тела рыб, реореакция, термоизбирание, термоустойчивость, водно-солевой обмен, река, водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Безлер Ф.И. Сезонные изменения химического состава вод Рыбинского водохранилища // Тр. Ин-та биол. водохр. 1963. № 5(8). С. 329–350.
2. Безлер Ф.И., Трифонова Н.А. Материалы по распределению кислорода в Рыбинском водохранилище в зимний период // Бюл. Ин-та биол. водохр. 1960. № 8–9. С. 72–78.
3. Бикбулатов Э.С., Бикбулатова Е.М., Степанова И.Э. Гидрохимический режим малых рек бассейна оз. Неро // Малые реки: Современное экологическое состояние, актуальные проблемы: Тез. докл. Междунар. науч. конф. Тольятти, 2001. С. 28.
4. Буторин Н.В., Курдина Т.Н., Бакастов С.С. Температура воды и грунтов Рыбинского водохранилища. Л.: Наука, 1982. 224 с.
5. Воронков П.П. Некоторые особенности формирования ионного состава воды водохранилищ в зоне избыточного увлажнения // Тр. Гос. гидрол. ин-та. 1951. Вып. 33(87). С. 129–145.
6. Голованов В.К. Температурные критерии жизнедеятельности пресноводных рыб. М.: Полиграф-Плюс, 2013. 300 с.
7. Голованов В.К. Эколого-физиологические закономерности распределения и поведения пресноводных рыб в термоградиентных условиях // Вопр. ихтиологии. 2013. Т. 53. № 3. С. 286–314.
8. Голованов В.К., Герасимов Ю.В., Капшай Д.С., Васюра О.Л. Термоизбирание и термоустойчивость молоди стерляди Acipenser ruthenus L., выращенной в различных условиях // Вестн. Астрахан. гос.-техн. ун-та. Сер. Рыб. хоз-во. 2014. № 1. С. 62–68.
9. Запруднова Р.А. Изменения поведения и ионной регуляции у пресноводных рыб при стрессе // Успехи соврем. биол. 1999. Т. 119. № 3. С. 265–270.
10. Звездин А.О. Различия в локомоторных возможностях сеголетков нерки (Oncorhynchus nerka), обитающих в разных биотопах // Актуальные проблемы экологии и эволюции в исследованиях молодых учёных: Матер. шестой конф. молодых сотрудников и аспирантов ИПЭЭ РАН. М., 2014. С. 74–75.
11. Звездин А.О., Костин В.В., Маврин А.С., Мартемьянов В.И. Этологические и физиологические показатели сеголеток плотвы Rutilus rutilus из разных мест обитания в одной реке // Поведение рыб: Матер. докл. V Всерос. конф. Кострома, 2014. С. 68–73.
12. Июдина Е.Ф. К биологии молоди окуня Perca fluviatilis (L.) Онежского озера // Тр. Карело-Финск. отд. ВНИОРХ. Петрозаводск, 1951. Т. 3. С. 169–180.
13. Кириллов П.И. Суточная динамика питания личинок плотвы в период их покатной миграции в реке Б. Коша // Вопросы морфологии и экологии животных. Тверь: Твер. гос. ун-т, 1997. С. 34–39.
14. Кириллов П.И. Питание личинок плотвы Rutilus rutilus (Cypriniformes, Cyprinidae) в период интенсивной покатной миграции // Вопр. ихтиологии. 2001. Т. 41. Вып. 6. С. 828–834.
15. Костин В.В., Лупандин А.И., Павлов Д.С. Динамика распределения молоди рыб по экологическим зонам Иваньковского водохранилища // Вопр. ихтиологии. 1997. Т. 37. № 5. С. 689–695.
16. Костин В.В., Павлов Д.С. Стереотипы миграционного поведения молоди рыб в реках // V Всерос. конф. по поведению животных: Тез. докл. М., 2012. С. 99.
17. Крицкий С.Н., Менкель М.Ф., Россинский К.И. Зимний термический режим водохранилищ, рек и каналов. Элементы теории и инженерного расчета. М.; Л.: Госэнергоиздат, 1947. 155 с.
18. Крылов А.В., Цветков А.И., Малин М.И. и др. Сообщества гидробионтов и физико-химические параметры устьевой области притока равнинного водохранилища // Биология внутр. вод. 2010. № 1. С. 65–75.
19. Кузнецов В.А. Распределение молоди рыб в низовьях Свияжского залива Куйбышевского водохранилища // Гидробиол. журн. 1973. Т. 9. Вып. 5. С. 76–80.
20. Литвинов А.С., Законнова А.В. Гидрологическая характеристика реки // Экосистема малой реки в изменяющихся условиях среды. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2007. С. 34–40.
21. Маврин А.С., Виноградов Г.А., Лапирова Т.Б. и др. Влияние кальция, магния и тяжелых металлов на молодь леща Abramis brama L. Результаты исследований // Биология внутренних вод: Информ. бюл. СПб., 1992. № 91. С. 45–50.
22. Маврин А.С., Жохов А.Е. Эндопаразиты сеголеток плотвы Rutilus rutilus – биологический маркер территориально удаленных группировок рыб в одной реке // Экосистемы малых рек: Биоразнообразие, экология, охрана: Матер. II Всерос. шк.-конф. Ярославль, 2014. Т. 2. С. 245–247.
23. Маврин А.С., Мартемьянов В.И. Связь размерно-массовых показателей сеголеток плотвы Rutilus rutilus (L.) с содержанием катионов в теле рыб // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2013. Прил. № 3. С. 155–160.
24. Маврин А.С., Мартемьянов В.И. Содержание катионов в позвонках зрелых и незрелых самок плотвы Rutilus rutilus (L.) перед нерестом // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2013. Прил. № 3. С. 151–154.
25. Мартемьянов В.И. Содержание катионов в плазме, эритроцитах и мышечной ткани рыб Волжского плеса Рыбинского водохранилища // Журн. эвол. биохимии и физиол. 1992. Т. 28. № 5. С. 576–581.
26. Мартемьянов В.И. Физиологическая основа терморегуляционного поведения рыб // Поведение рыб: Матер. докл. IV Всерос. конф. с международным участием. М., 2010. С. 224–228.
27. Мартемьянов В.И. Оценка физиологического состояния карпа Cyprinus carpio L. по содержанию воды в организме // Биология внутр. вод. 2013. № 1. С. 92–96.
28. Мартемьянов В.И. Оценка физиологического состояния плотвы Rutilus rutilus L. в природных условиях по содержанию воды в организме // Биология внутр. вод. 2013. № 3. С. 83–86.
29. Мина М.В., Клевезаль Г.А. Рост животных. М.: Наука, 1976. 291 с.
30. Никольский Г.В. Избранные труды. М.: Изд-во Всерос. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 2013. Т. 2. 600 с.
31. Павлов Д.С. Биологические основы управления поведением рыб в потоке воды. М.: Наука, 1979. 319 с.
32. Павлов Д.С., Костин В.В., Пономарева В.Ю. Поведенческая дифференциация сеголеток черноморской кумжи Salmo trutta labrax: реореакция в год, предшествующий смолтификации // Вопр. ихтиологии. 2010. Т. 50. № 2. С. 251–261.
33. Павлов Д.С., Лупандин А.И., Костин В.В. Покатная миграция рыб через плотины ГЭС. М.: Наука, 1999. 255 с.
34. Павлов Д.С., Лупандин А.И., Костин В.В. Механизмы покатной миграции молоди речных рыб. М.: Наука, 2007. 213 с.
35. Павлов Д.С., Пахоруков А.М. Биологические основы защиты рыб от попадания в водозаборные сооружения. М.: Пищ. пром-сть, 1973. 208 с.
36. Павлов Д.С., Скоробогатов М.А. Миграции рыб в зарегулированных реках. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 413 с.
37. Свирский А.М., Голованов В.К. Влияние температуры акклимации на терморегуляционное поведение молоди леща Abramis brama (L.) в различные сезоны года // Вопр. ихтиологии. 1991. Т. 31. Вып. 6. С. 974–980.
38. Свирский А.М., Голованов В.К. Изменчивость терморегуляционного поведения рыб и ее возможные причины // Успexи соврем. биол. 1999. Т. 119. № 3. С. 259–264.
39. Свирский А.М., Терещенко В.Г. Точность определения температуры, избираемой рыбами в установке с горизонтальным термоградиентом // Биология внутренних вод: Информ. бюл. СПб., 1992. № 92. С. 85–88.
40. Соколов В.А. Оценка точности определения летальных температур рыб методом критического термического максимума КТМ. М., 24 с. Деп. в ВИНИТИ. 08.12.1988. № 8697-В88.
41. Хлебович В.В. Критическая соленость биологических процессов. Л.: Наука, 1974. 236 с.
42. Цветкова М.В., Цветков А.И., Отюкова Н.Г. и др. Гидрологический режим русловых прудов малых рек (на примере р. Ильдь) // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана: Лекции и матер. докл. Всерос. шк.-конф. Ярославль, 2008. С. 323–326.
43. Цельмович О.Л., Отюкова Н.Г. Гидрохимическая характеристика реки // Экосистема малой реки в изменяющихся условиях среды. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2007. С. 41–57.
44. Pavlov D.S., Kostin V.V., Zvezdin A.O., Ponomareva V.Yu. On methods of determination of the rheoreaction type in fish // J. Ichthyol. 2010. V. 50. № 11. P. 977–984.
Е. А. Осипова, В. А. Непомнящих, В. В. Крылов, Ю. В. Чеботарева
Исследовательское поведение молоди плотвы Rutilus rutilus (L.) (Teleostei: Cyprinidae) в лабиринте после различного магнитного воздействия на эмбрионы.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: nepom@ibiw.yaroslavl.ru
У молоди плотвы Rutilus rutilus (L.) в возрасте одного года изучали последовательность посещений коридоров в крестообразном лабиринте. В одном варианте эмбрионы плотвы развивались в естественном магнитном поле, в другом – подвергались действию имитации главной фазы геомагнитной бури с размахом флуктуаций до 100 nT в направлении каждой компоненты. Последовательность посещений коридоров у рыб из обоих вариантов была близка к случайной. Этим молодь плотвы отличается от исследованных ранее представителей других таксонов, у которых наблюдается спонтанное чередование: тенденция при выходе из очередного коридора к переходу в тот коридор, который они не посещали дольше всего.
Ключевые слова: рыбы, Rutilus rutilus, поведение, геомагнитное поле.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Крылов В.В., Зотов О.Д., Клайн Б.И. Устройство для генерации магнитных полей и компенсации локального низкочастотного магнитного поля. А.С. RU 108 640 U1 (Россия). Заявл. 13.05.2011, № 2011119410/28; Опубл. 20.09.2011 // Изобретения, полезные модели: Официальный бюл. 2011. № 26.
2. Крылов В.В., Чеботарева Ю.В., Изюмов Ю.Г. и др. Действие типичной магнитной бури на ранний онтогенез плотвы Rutilus rutilus (L.) // Биология внутр. вод. 2010. № 4. С. 67–70.
3. Чеботарева Ю.В., Изюмов Ю.Г., Крылов В.В. Влияние переменного электромагнитного поля на раннее развитие плотвы Rutilus rutilus (Cyprinidae, Cypriniformes) // Вопр. ихтиологии. 2009. Т. 49. № 3. С. 422–428.
4. Chiussi R., Diaz H., Rittschof D., Forward R.B.Jr. Orientation of the hermit crab Clibanarius antillensis: effects of visual and chemical cues // J. Crustacean Biol. 2001. V. 21. P. 593–605.
5. Hliňák Z., Krejčí I. Spontaneous alternation behaviour in rats: kynurenic acid attenuated deficits induced by MK-801 // Behav. Brain Res. 2006. V. 168. № 1. P. 144–149.
6. Jones M.A., Mason G.J., Pillay N. Correlates of birth origin effects on the development of stereotypic behaviour in striped mice, Rhabdomys // Anim. Behav. 2011. V. 82. № 1. P. 149–159.
7. Krylov V.V., Zotov O.D., Klain B.I. et al. An experimental study of the biological effects of geomagnetic disturbances: The impact of a typical geomagnetic storm and its constituents on plants and animals // J. Atmos. and Solar-Ter. Phys. 2014. V. 110–111. P. 28–36.
8. Lennarz R.C. The role of extramaze cues in spontaneous alternation in a plus-maze // Learn. and Behav. 2008. V. 36. № 2. P. 138–144.
9. Ramey P.A., Teichman E., Oleksiak J., Balci F. Spontaneous alternation in marine crabs: Invasive versus native species // Behav. Proc. 2009. V. 82. № 1. P. 51–55.
10. Richman C.L., Dember W.N., Kim P. Spontaneous alternation behavior in animals: a review // Curr. Psychol. Res. Rev. 1986. V. 5. P. 358–391.
11. Roitblat H.L., Tham W., Golub L. Performance of Betta splendens in a radial arm maze // Anim. Learn. and Behav. 1982. V. 10. № 1. С. 108–114.
12. Sison M., Gerlai R. Associative learning in zebrafish (Danio rerio) in the plus maze // Behav. Brain Res. 2010. V. 207. P. 99–104.
13. Weissburg M.J., Dusenbery D.B. Behavioral observations and computer simulations of blue crab movement to a chemical source in a controlled turbulent flow // J. Exp. Biol. 2002. V. 205. № 21. P. 3387–3398.
