Журнал "Биология внутренних вод"
№ 1 за 2019 год
Н. С. Батурина 1, *
Закономерности организации речных экосистем: ретроспектива становления современных концепций (обзор)
1 Новосибирский государственный университет, 630090 Новосибирск, ул. Пирогова, 2
e-mail: Natalya.s.baturina@gmail.com
Представлен обзор развития базовых концепций, описывающих организацию речных экосистем. Рассмотрены первые зональные модели описания рек, переход к континуальным концепциям, их последующая критика и развитие дисконтинуальных моделей. Описаны основные дискретные концепции как главные альтернативные подходы к описанию устройства рек. Отражены основные направления развития идей об иерархичности организации речных систем и их трансформирование в современные комплексные концепции
Ключевые слова: речные экосистемы, концепции.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Богатов В.В. Экология речных сообществ Российского Дальнего Востока. Владивосток: Дальнаука, 1994. 218 с.
2. Богатов В.В. Комбинированная концепция функционирования речных экосистем // Вестн. Дальневосточ. отд. РАН. 1995. № 3. С. 51–61.
3. Богатов В.В. О закономерностях функционирования речных экосистем в свете базовых научных концепций // Вестн. Северо-Восточного центра ДВО РАН. Гидробиология. 2013. № 4. С. 90–99.
4. Богатов В.В., Никулина Т.В., Вшивкова Т.С. Соотношение биоразнообразия фито- и зообентоса в континууме модельной горной реки Комаровки (Приморский край, Россия) // Экология. 2010. № 2. С. 134–140.
5. Чертопруд М.В. Разнообразие и классификация реофильных сообществ макробентоса средней полосы европейской России // Журн. общ. биологии. 2011. Т. 72. № 1. С. 51–73.
6. Bayley P. B. Understanding large river – flood plain ecosystems // BioSсience. 1995. V. 45. P. 153–158.
7. Benda L., Poff L.R., Miller D. et al. Network dynamics hypothesis: How Channel Networks Structure Riverine Habitats // BioScience. 2004. № 54. Р. 413–427.
8. Cummins K.W. Predicting variations in energy flow through a semicontrolled lotic ecosystem // Institute of Water Research, Michigan State University. Technical Report. 1972. № 19. Р. 1–21.
9. Cummins K.W. Macroinvertebrates // River Ecology. Oxford: Blackwell Sci., 1975. Р. 170–198.
10. Cummins K.W., Klug M.J. Feeding ecology of stream invertebrates // Ann. Rev. Ecol. Syst. 1978. № 10. Р. 147–172.
11. Cummins K.W. Riparian – stream linkage paradigm // Verh. Int. Ver. theor. und angew. Limnol. 2002. V. 28. P. 49–58.
12. Elwood J.W., Newbold J.D., O’Neill R.V., Van Winkle W. Resource spiraling: an operational paradigm for analyzing lotic ecosystems // Dynamics of lotic ecosystems. Ann Arbor: Ann Arbor Sci. Publ. M. I., 1983. P. 3–27.
13. Frissell C.A., Liss W.J., Warren C.E., Hurley M.D. A hierarchical framework for stream habitat classification: viewing streams in a watershed context // Environ. Management. 1986. V. 10(2). P. 199–214.
14. Hawkes H.A. River zonation and classification // River Ecology. Oxford: UK. Blackwell Sci. Publ., 1975. P. 312–374.
15. Hynes H.B.N. The ecology of running waters // Liverpool: University of Liverpool Press., 1970. 555 p.
16. Illies J., Botosaneanu L. Problemes et methodes de la zonation ecologique des eaux corantes, considerees sur tout du point de vue faunistice // Mitteilungen, Internat. Vereinigung fur Theoretische und Angevandte Limnol. 1963. V. 12. P. 1–57.
17. Junk W.J., Bayley P.B., Sparks R.E. The flood pulse concept in river– floodplain systems // Canadian Special Publication of Fisheries and Aquatic Sciences. 1989. № 106. Р. 110–127.
18. Maiolini B., Bruno M.C. The River Continuum Concept revisited: lessons from the Alps // The Water Balance of the Alps. Alpine space – man & environment. Innsbruck: University Press., 2007. V. 3. P. 21–30.
19. Minshall G.W., Peterson R.C., Cummins K.W. et al. Interbiome comparison of stream ecosystems dynamics // Ecology. Monographs. 1983. V. 53. P. 1–25.
20. Montgomery D.R. Process domains and the river continuum // J. Am. Water Res. Assoc. 1999. V. 35 (2). P. 397–410.
21. Newblod J.D., Elwood J.W., O’Neill R.V., Winkle W. Nutrient spiraling in streams: The concept and its field measurement // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1981. V. 38. P. 860–863.
22. Nowicki M. Report of the Phisiography Commission (cited in Nowicki M.) Fishes of Raier System of Wisla, Styr, Dniestr and Prut in Galicja. Krakow: Wydz. Krajowy. Poland., 1889. 54 p.
23. Perry J.A., Schaeffer D.J. The longitudinal distributions of or riverine benthos: a river discontinuum? // Hydrobiologia. 1987. V. 148. P. 257–268.
24. Petts G.E., Amoros C. Fluvial Hydrosystems. N.Y.: US. Chapman & Hall., 1996. 278 p.
25. Poff N.L., Allan J.D., Bain M.B. et al. The natural flow regime: a paradigm for river conservation and restoration // BioScience. 1997. V. 47. P. 796–784.
26. Pool G.C. Fluvial landscape ecology addressing uniqueness within the river discontinuum // Freshwater Biol. 2002. V. 47. P. 641–660.
27. Ricker W.E. An ecological classification of central Ontario Streams // Univ. Toronto Studies, Biological Series. 1934. V. 37. 114 p.
28. Sedell J.R., G.H. Reeves F.R., Hauer J.A. et al. Role of refugia in recovery from disturbances: modern fragmented and disconnected river systems // Environ. Management. 1990. № 14. Р. 711–724.
29. Shelford V., Samuel E. Methods for the study of stream communities // Ecology. 1929. № 10. Р. 382–391.
30. Statzner B., Higler B. Questions and comments on the river continuum concept // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1985. V. 42. P. 1038–1044.
31. Stanford J.A., Ward J.V. An ecosystem perspective of alluvial rivers: connectivity and the hyporheic corridor // J. North Am. Benthol. Soc. 1993. V. 12. P. 48–60.
32. Thorp J.H., Thorns M.C., Delong M.D. The riverine ecosystem synthesis: Biocomplexity in river networks across space and time // River Res. Appl. 2006. № 22. Р. 123–147.
33. Thorp J.H., Thoms M.C., Delong M.D. The Riverine Ecosystem Synthesis: Towards Conceptual Cohesiveness in River Science. San Diego, CA: Elsevier Acad. Press, 2008. 208 p.
34. Thienemann A. Der Bergbach des Sauerlandes // Int. Rev. gesamt. Hydrobiol. Hydrogr., Biol. Suppl. 1912. V. 4. 125 p.
35. Townsend C. R. The patch dynamics concept of stream community ecology // J. North Am. Benthol. Soc. 1989 V. 8. № 1. P. 36–50.
36. Vannote R.L., Minshall G.W., Cummins K.W. et al. The River Continuum Concept // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1980. V. 37. № 1. P. 370–377.
37. Ward J.V., Stanford J.A. The serial discontinuity concept of lotic ecosystems // Dynamics of Lotic Systems. California. US: Ann Arbor Sci., 1983. P. 29–42.
38. Webster J.R. Analysis of potassium and calcium dynamics in stream ecosystems on three southern Appalachian watersheds of contrasting vegetation // Dissertation. University of Georgia, Athens, Georgia, USA. 1975. 238 р.
39. Webster J.R., Patten B.C. Effect of watershed perturbation on streams potassium and calcium dynamics // Ecol. Monogr. 1979. V. 49. P. 57–72.
40. Winemiller K.O., Flecker A.S., Hoeinghaus D.J. Patch dynamics and environmental heterogeneity in lotic ecosystems // J. North Am. Benthol. Soc. 2010. № 29. Р. 84–99
К. И. Прокина 1, *, А. П. Мыльников 1
Центрохелидные солнечники разнотипных пресноводных местообитаний Южной Патагонии и Огненной Земли (Чили)
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: kristin892@mail.ru
Впервые изучен видовой состав центрохелидных солнечников разнотипных пресноводных местообитаний юга Чили: сфагнового болота, временных и постоянных водоемов и водотоков. Выявлено 14 видов: Acanthocystis nichollsi, A. pectinata, A. penardi, Pseudoraphidiophrys discoidea, P. formosa, P. veliformis, Raphidiophrys ovalis, Choanocystis perpusilla, Pterocystis foliacea truncata, P. pyriformis, P. quadrata, Raineriophrys erinaceoides, R. fortesca и R. pteromorphos. Большинство видов впервые обнаружены в южной части страны, два (Acanthocystis nichollsi и Pterocystis quadrata) – новые для страны. Методами электронной микроскопии изучена внешняя морфология покровных неорганических чешуек клеток, имеющих важное диагностическое значение. Приведенные морфологические описания и фотографии исследованных чешуек расширяют представления о внутривидовой изменчивости и дополняют диагнозы видов.
Ключевые слова: центрохелидные солнечники, протисты, простейшие, фауна, морфология, видовой состав, сфагновые болота, временные и постоянные водоемы, водотоки, Южная Патагония, Огненная Земля, Чили.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Галай И.П., Жучкевич В.А., Рылюк Г.Я. Физическая география материков и океанов. Ч. 2: Северная Америка, Южная Америка, Африка, Австралия, Океания, Антарктида, Мировой океан. Минск: Изд-во Университетское, 1988. 366 с.
2. Гапонова Л.П. Центрохелидни солнцевики (Centrohelea Cavalier-Smith, 1993) Киивського та Чернигивського полисся: Канд. дис. … Киев, 2009. 150 с.
3. Герасимова Е.А., Плотников А.О. Разнообразие амебоидных протистов в соленых водоемах Оренбургской области // Вестн. Оренбург. гос. ун-та. 2015. № 10 (185). С. 130–133.
4. Златогурский В.В. Солнечники. Протисты: руководство по зоологии. СПб.; М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2011. С. 205–269.
5. Леонов М.М., Мыльников А.П. Центрохелидные солнечники из Южной Карелии // Зоол. журн. 2012. Т. 91. № 5. С. 515–525.
6. Микрюков К.А. Интересные находки солнечников (Protista) в Чёрном море и Крыму: к вопросу о единстве морской и пресноводной фауны этих организмов // Зоол. журн. 1999. Т. 78. С. 517–527.
7. Микрюков К.А. Морские и солоноватоводные центрохелидные солнечники (Centroheliozoa, Sarcodina) Кандалакшского залива Белого моря // Зоол. журн. 1994. Т. 73. Вып. 6. С. 5–17.
8. Микрюков К.А. Центрохелидные солнечники (Centroheliozoa). М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2002. 136 с.
9. Тихоненков Д.В., Мыльников А.П. Новый солнечник Choanocystis antarctica sp. n. (Centrohelida) из литоральной зоны острова Кинг-Джорж (южные Шетландские острова, Антарктика) // Зоол. журн. 2010. Т. 89. № 11. С. 1283–1287.
10. Burger O. Nuevos estudios sobre protozoos chilenos del aqua dulce // Anales de la Universidad de Chile. 1908. V. 122. P. 137–204.
11. Cavalier-Smith T., von der Heyden S. Molecular phylogeny, scale evolution and taxonomy of Centrohelid heliozoan // Mol. Phylogenet. Evol. 2007. V. 44. P. 1186–1203.
12. Croome R.L. Observations of the heliozoan genera Acanthocystis and Raphidocystis from Australia // Archiv für Protistenkunde. 1986. V. 131. P. 189–199.
13. Croome R.L. Observations of heliozoan genera Acanthocystis, Raphidiophrys, Clathrulina, and Pompholyxophrys from Australian freshwaters // Archiv für Protistenkunde. 1987. V. 133 (3/4). P. 237–243.
14. Croome R.L., van den Hoff J., Burton H.R. Observations of the Heliozoean genera Pinasiophora and Acanthocystis (Heliozoea, Sarcodina, Protozoa) from Ellis Fjord, Antarctica // Polar Biol. 1987. V. 8. P. 23–28.
15. Dürrschmidt M. An electron microscopical study of freshwater Heliozoa (genus Acanthocystis, Centrohelidia) from Chile, New Zealand, Malaysia and Sri Lanka. II // Archiv für Protistenkunde. 1987. V. 133. P. 21–48.
16. Dürrschmidt M. An electron microscopical study of freshwater Heliozoa (genus Acanthocystis, Centrohelidia) from Chile, New Zealand, Malaysia and Sri Lanka. III // Archiv für Protistenkunde. 1987. V. 133. P. 49–79.
17. Dürrschmidt M. Electron microscopic observations on scales of species of the genus Acanthocystis (Centrohelidia, Heliozoa) from Chile. I // Archiv für Protistenkunde. 1985. V. 129. P. 55–87.
18. Kosolapova N.G., Mylnikov A.P. First record of Centrohelid heliozoans (Centrohelida) in Mongolia // Inland Water Biol. 2015. vol. 8. no 3. P. 232–235. doi: 10.1134/S1995082915030074.
19. Leonov M.M. Heliozoan fauna of waterbodies and watercourses of the Central Russian Upland forest-steppe // Inland Water Biol. 2009. vol. 2. no 1. P. 6–12. doi: 10.1134/S1995082909010027.
20. Leonov M.M. Heliozoans (Heliozoa, Sarcodina, Protista) of fresh and marine water of the European part of Russia: species composition, morphology, and description // Inland Water Biol. 2010. vol. 3. no 4. P. 344–355. doi: 10.1134/S1995082910040073.
21. Mikrjukov K.A. Interesting findings of heliozoan (Protista) in Black Sea and Crimea: data on the similarity of sea and freshwater fauna of these organisms // Rus. J. Zool. 1999. V. 3. № 2. P. 240–249.
22. Mikrjukov K.A. Observations on Centroheliozoa (Sarcodina, Protozoa) of the Volga basin // Zoosystematica Rossica. 1993. V. 2. № 2. P. 201–209.
23. Mikrjukov K.A. On centrohelid and rotosphaerid Heliozoa from the environs of the Vôrtsjärv limnological station in Estonia // Proceedings of the Estonian Academy of Sciences, Biology and Ecology. 1993. V. 422. P. 154–160.
24. Moestrup Ø., Thomsen H.A. Preparations of shadow cast whole mounts // Handbook of Phycological Methods. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1980. P. 385–390.
25. Nicholls K.H. Little-known and new heliozoeans: the centrohelid genus Acanthocystis, including descriptions of nine new species // Can. J. Zool. 1983. V. 61. № 6. P. 1369–1386.
26. Nicholls K.H., Dürrschmidt M. Scale structure and taxonomy of some species of Raphidiophrys, Raphidiocystis and Pompholyxophrys (Heliozoa) including descriptions of six new taxa // Can. J. Zool. 1985. V. 63. P. 1944–1961.
27. Plotnikov A.O., Gerasimova E.A. Heliozoa (Centrohelea, Haptista, Hacrobia) of Saline and Brackish Water Bodies and Watercourses of Russia // Inland Water Biol. 2017. vol. 10. no 2. P. 121–129. doi: 10.1134/S1995082917020109.
28. Siemensma F.J. Klasse Heliozoa Haeckel, 1866. Nackte Rhizopoda und Heliozoea. Stuttgart; N.Y.: Gustav Fischer Verlag, 1991. P. 171–297.
29. Siemensma F.J., Roijackers M.M. A study of new and little-known acanthocystid heliozoans, and a proposed devision of the genus Acanthocystis (Actinopoda, Heliozoea) // Archiv für Protistenkunde. 1988. V. 135. P. 197–212.
30. Siemensma F. J., Roijackers M.M. The genus Raphidiophrys (Actinopoda, Heliozoea): scale morphology and species distinctions // Archiv für Protistenkunde. 1988. V. 136. P. 237–248.
31. Thomasson K. Araucanian Lakes // Acta Phytogeographica Suecica. 1963. V. 47. P. 1–139.
32. Tong S., Vørs N., Patterson D.J. Heterotrophic flagellates, centrohelid heliozoan and filose amoebae from marine and freshwater sites in the Antarctic // Polar Biol. 1997. V. 18. P. 91–106.
33. Wujek D.E. Freshwater heliozoa from Florida // Florida Scientist. 2006. V. 69. P. 177–191.
34. Wujek D.E. Freshwater heliozoan (Protista, Heliozoa) from India // Proceeding of the Indian Academy of Science. 2003. V. 112. № 2. P. 169–174.
35. Wujek D.E. Identification, ecology, and distribution of scale bearing amoeba, ciliates, flagellates and heliozoan from the Carolinas // J. North Carolina Acad. Sci. 2005. V. 121.№ 1. P. 1–16.
36. Wujek D.E., Saha L.C. Freshwater scaled Heterotrophic Flagellates and Heliozoa from India including a description of a new species of Choanocystis // J. Bombay Natur. History Soc. 2006. V. 103. № 1. P. 71–81.
37. Yabuki A., Chao E.E., Ishida K.I., Cavalier-Smith T. Microheliella maris (Microhelida ord. n.), an ultrastructurally highly distinctive new axopodial protist species and genus, and the unity of phylum Heliozoa // Protist. 2012. V. 163. № 3. P. 356–388.
38. Zlatogursky V.V. Puzzle-like cyst wall in centrohelid heliozoans Raphidiophrys heterophryoidea and Raineriophrys erinaceoides // Acta Protozool. 2013. V. 52. P. 229–236.
Л. А. Медведева 1, *, А. А. Семенченко 1, 2
Структурные и количественные особенностисообществ фитоперифитона в водотоках бассейна реки Зея (Амурская область)
1 Федеральный научный центр биоразнообразия наземной биоты Восточной Азии Дальневосточного отделения Российской академии наук, 690022 Владивосток, проспект 100 лет Владивостоку, 159
2 Дальневосточный федеральный университет, 690950 Владивосток, ул. Суханова, 8
e-mail: medvedeva@ibss.dvo.ru
Приведены результаты исследования водорослей перифитона р. Зея и девяти водотоков ее бассейна (Амурская обл.). Определен состав доминирующих видов, рассмотрены структурные особенности сообществ, получены количественные характеристики их отдельных компонентов. Общая численность фитоперифитона в р. Зея была 582 млрд кл./м2, биомасса – 102–1106 г/м2. В небольших водотоках численность колебалась от 16.2 до 100 млрд кл./м2, биомасса – от 2.0 до 18.3 г/м2. Основу биомассы составляли диатомовые водоросли Encyonema silesiacum, Hannaea arcus, Ulnaria ulna, Gomphoneis olivaceum, крупноклеточные виды рода Gomphonema; основу численности – цианобактерии и диатомовые водоросли из родов Achnanthes, Fragilaria, Gomphonema и вид Encyonema minutum.
Ключевые слова: водоросли, перифитон, численность, биомасса, структура сообществ, водотоки бассейна р. Зея.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алекин О.А. Основы гидрохимии. Л.: Гидрометеоиздат, 1970. 444 с.
2. Баринова С.С., Медведева Л.А. К методике количественного учета микрофитобентоса малых рек Дальнего Востока России // Альгология. 2004. Т. 14. № 1. С. 101–110.
3. Беляева П.Г. Структура фитоперифитонных сообществ в речных экосистемах (обзор) // Изв. Пензенск. гос. пед. ун-та им. В.Г. Белинского. 2011. Вып. 25. С. 484–492.
4. Беляева П.Г., Поздеев И.В. Донные сообщества р. Чусовая (бассейн Камы) // Вестн. Пермск. ун-та. Сер. Биол. 2005. Вып. 6. С. 103–107.
5. Виноградова К.Л., Голлербах М.М., Зауер Л.М., Сдобникова Н.В. Зеленые, красные и бурые водоросли. Определитель пресноводных водорослей СССР. Л.: Наука, 1980. Вып. 13. 248 с.
6. Водоросли. Справочник. Киев: Наук. думка, 1989. 608 с.
7. Глущенко Л.А., Дубовская О.П., Иванова Е.А. и др. Гидробиологический очерк некоторых озер горного хребта Ергаки (Западный Саян) // Журн. Сиб. фед. ун-та. Биология. 2009. Т. 2. № 3. С. 355–378.
8. Голлербах М.М., Косинская Е.К., Полянский В.И. Синезеленые водоросли. Определитель пресноводных водорослей СССР. М.: Сов. наука, 1953. Вып. 2. 652 с.
9. Девяткин В.Г. Динамика развития альгофлоры обрастаний в Рыбинском водохранилище // Тр. Ин-та биологии внутр. вод. АН СССР. 1979. Вып. 42(45). С. 78–108.
10. Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и современные). Л.: Наука, 1988. Т. 2. Вып. 1. 116 с.
11. Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и современные). СПб.: Наука, 1992. Т. 2. Вып. 2. 125 с.
12. Забелина М.М., Киселев И.А., Прошкина-Лавренко А.И., Шешукова В.С. Диатомовые водоросли. Определитель пресноводных водорослей СССР. М.: Сов. наука, 1951. Вып. 4. 619 с.
13. Игнатова Н.В., Помазкина Г.В. Биоценозы диатомовых водорослей и их роль в формировании поверхностного слоя донных отложений в южном Байкале // Проблемы экологии Прибайкалья: Тез. докл. 3 Всесоюз. науч. конф. Иркутск, 1988. Ч. 2. С. 96.
14. Качаева М.И. Количественный учет биомассы обрастаний водорослей р. Ингоды // Флора, растительность и растительные ресурсы Забайкалья и сопредельных областей. Вып. 4. Чита: Изд-во Забайкал. отд. Всесоюз. Ботан. об-ва АН СССР, 1972. С. 22–25.
15. Комулайнен С.Ф. Экология фитоперифитона малых рек Восточной Фенноскандии. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН, 2004. 182 с.
16. Левадная Г.Д. Микрофитобентос реки Енисей. Новосибирск: Наука, 1986. 286 с.
17. Левадная Г.Д., Чайковская Т.С. Водорослевая растительность Енисея и ее продукция // Круговорот вещества и энергии в водоемах. Элементы биотического круговорота. Лиственичное на Байкале, 1977. С. 96–99.
18. Медведева Л.А. Структурная характеристика сообществ водорослей перифитона водотоков бассейна реки Бурея (Хабаровский край, Российская Федерация) // Гидробиол. журн. 2006. Т. 42. № 6. С. 22–40.
19. Медведева Л.А. Альгологические исследования водотоков бассейна реки Зея и Зейского водохранилища // Гидробиологический мониторинг зоны влияния Зейского гидроузла. Хабаровск: Дальнаука, 2010. С. 45–92.
20. Медведева Л.А. Количественные характеристики сообществ перифитонных водорослей реки Кедровая (Приморский край) // Чтения памяти проф. Владимира Яковлевича Леванидова. Вып. 6. Владивосток: Дальнаука, 2014. С. 443–452.
21. Метелёва Н.Ю. Структура и продуктивность фитоперифитона водоёмов бассейна Верхней Волги: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Борок, 2013. 22 с.
22. Мошкова И.А., Голлербах М.М. Зеленые водоросли. Класс улотриксовые (1). Определитель пресноводных водорослей СССР. Л.: Наука, 1986. Вып. 10. 360 с.
23. Помазкина Г.В., Щербакова Т.А. Видовой состав Bacillariophyta литоральной зоны озера Байкал (Россия) // Альгология. 2010. Т. 20. № 4. С. 449–463.
24. Протасов А.А. Пресноводный перифитон. Киев: Наук. думка, 1994. 307 с.
25. Ресурсы поверхностных вод СССР. Дальний Восток. Т. 18: Верхний и Средний Амур. Л.: Гидрометеоиздат, 1966. Вып. 1. 781 с.
26. Рычкова М.А. Водоросли обрастаний озер Воже и Лача // Гидробиология озер Воже и Лача в связи с прогнозом качества вод, перебрасываемых на юг. Л.: Наука, 1978. С. 28–35.
27. Сиротский С.Е., Тесленко В.А. Физико-географическая характеристика бассейна реки Зея в районе исследований // Гидробиологический мониторинг зоны влияния Зейского гидроузла. Хабаровск: Дальнаука, 2010. С. 12–23.
28. Скворцов Б.В. Водоросли верховьев р. Зеи Амурской области. Материалы по флоре водорослей Азиатской России. 4. // Журн. Рус. Ботан. об-ва. 1917. Т. 2. С. 117–120.
29. Станиславская Е.В. Перифитон притоков Ладожского озера // Охрана и рациональное использование водных ресурсов Ладожского озера и других больших озер. СПб.: Лема, 2003. С. 249–252.
30. Шестеркина Н.М., Таловская В.С., Сиротский С.Е. и др. Условия формирования и качество воды реки Зея и ее притоков в пределах Зейско-Селемджинской и Амуро-Зейской возвышенных равнин // Гидробиологический мониторинг зоны влияния Зейского гидроузла. Хабаровск: Дальнаука, 2010. С. 23–35.
31. Algal ecology: freshwater benthic ecosystems. San Diego; N.Y.; Boston; L.; Sydney; Tokyo; Toronto: Acad. Press, 1996. 753 p.
32. Algarte V.M., Siqueira N.S., Rodrigues L. Desiccation and recovery of periphyton biomass and density in a subtropical lentic ecosystem // Acta Sci. Biol. Sci. 2013. V. 35. № 3. P. 311–318.
33. Hartley B., Barber H.G., Carter J.R. An Atlas of British Diatoms. Bristol: Biopress Ltd., 1996. 601 p.
34. Iwaniec D., Childers D.L., Rondeau D. et al. Effects of hydrologic and water quality drivers on periphyton dynamics in the southern Ever-glades // Hydrobiologia. 2006. V. 569. № 1. P. 223–235.
35. Izagirre O., Elosegi A. Environmental control of seasonal and inter-annual variations of periphytic biomass in a North Iberian stream // Ann. limnol. – Int. J. Lim. 2005. V. 41 (1). P. 35–46.
36. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae: Naviculaceae. Süßwasserflora von Mitteleuropa. Bd 2, 1. Jena: Gustav Fisher Verlag, 1986. 876 S.
37. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae: Bacillariaceae, Epithemiaceae, Surirellaceae. Süßwasserflora von Mitteleuropa. Bd 2, 2. Stuttgart; N.Y.: Gustav Fisher Verlag, 1988. 596 S.
38. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae: Centrales, Fragilariaceae, Eunotiaceae. Süßwasserflora von Mitteleuropa. Bd 2, 3. Stuttgart; Jena: Gustav Fisher Verlag, 1991. 576 S.
39. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae: Achnanthaceae, Kritische Ergänzungen zu Navicula (Lineolatae) und Gomphonema Gesamtliteraturverzeichnis. Süßwasserflora von Mitteleuropa. Bd 2, 4. Stuttgart; Jena: Gustav Fisher Verlag, 1991. 437 S.
40. Lindstrǿm E.A., Johansen S.W., Saloranta T. Periphyton in running waters – long-term studies of natural variation // Hydrobiologia. 2004. V. 521. № 1. P. 63–86.
41. Medvedeva L.A., Semenchenko A.A. Phytoperiphyton of the Samarga River Basin (Primorskii Krai) // Inland Water Biol. 2014. V. 7. № 2. P. 141–147. doi: 10.1134/S1995082914010106.
42. Nedbaliuc B., Chiriac E., Nedbaliuc R., Coadă V. Taxonomic structure and quantitative dinamics of the periphyton algoflora of the river Ichel (Republic of Moldova) // Analele Ştiinţifice ale Universitǎţii “Al. I. Cuza” Iaşi s. II a. Biologie vegetalǎ. 2013. Т. 59. № 1. P. 27–33.
43. Pfeiffer T.Ž., Mihaljević M., Špoljarić D. et al. The disturbance-driven changes of periphytic algal communities in a Danubian floodplain lake // Knowl. Manag. Aquat. Ec. 2015. V. 416. № 2. P. 1–15.
44. Potapova M.G., Charles D.F. Benthic diatoms in USA rivers: distributions along spatial and environmental gradients // J. Biogeogr. 2002. V. 29. № 2. P. 167–187.
45. Potapova M.G., Charles D.F. Distribution of benthic diatoms in U.S. rivers in relation to conductivity and ionic composition // Freshwater Biol. 2003. V. 48. № 2. P. 1311–1328.
46. Villeneuve A., Montuelle B., Bouchez A. Effect of minor changes in light intensity, current velosity and turbulence on the structure and function of the periphyton // Aquat. Sci. 2010. V. 72. № 1. P. 33–44.
А. Н. Ефремов 1, *, Б. Ф. Свириденко 2, Я. В. Болотова 3, Ц. Тома 4, Ю. А. Мурашко 2
Ценокомплекс и экологические особенности Hydrilla verticillata (L. f.) Royle (Hydrocharitaceae) в Северной Евразии
1 Омский государственный педагогический университет, 644009 Омск, набережная Тухачевского, 14
2 Сургутский государственный университет, 628412 Тюменская обл., Сургут, Ханты-Мансийский автономный округ – Югра, ул. Энергетиков, 22
3 Амурский филиал Ботанического сада-института ДВО РАН,675000 Благовещенск, Игнатьевское шоссе, 2-й км
4 Университет им. Казимира Великого, 85-064 Быдгощ, ул. Я.K. Хадкевич, 30, Польша
e-mail: stratiotes@yandex.ru
Hydrilla verticillata (L. f.) Royle – гидатофит с дизъюнктивным семикосмополитным ареалом, играющий существенную роль в функционировании водных экосистем. В состав ценокомплекса Северной Евразии входят 19 ассоциаций, относящихся к 17 формациям пресноводной макрофитной растительности. В группировках с участием H. verticillata отмечен 91 вид гидромакрофитов. Наиболее широкий географический ареал имеют ассоциации Hydrilla verticillata (Северная Евразия) и Nymphaea candida – Ceratophyllum demersum + Hydrilla verticillata (Восточная Европа, Западная и Средняя Сибирь). Приведены пределы толерантности H. verticillata по отношению к основным абиотическим факторам: тип грунта, скорость течения, трофность, сапробность, аллювиальность, содержание в водной среде основных ионов растворённых солей и растворимых форм тяжёлых металлов. В экологическом плане H. verticillata следует рассматривать как пресноводный алкалифильный олиго-мезотрофный олиго-β-мезосапробный мезоаллювиальный псаммопелофит.
Ключевые слова: Hydrilla verticillata, Hydrocharitaceae, Северная Евразия, ценокомплекс, экология, толерантность.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Александрова В.Д. Классификация растительности: обзор принципов классификации и классификационных схем в разных геоботанических школах. Л.: Наука, 1969. 275 с.
2. Баринова С.С., Медведева Л.А., Анисимова О.В. Биоразнообразие водорослей–индикаторов окружающей среды. Тель-Авив: Pilies Studio, 2006. 498 с.
3. ГОСТ 3351–74. Вода питьевая. Методы определения вкуса, запаха, цветности и мутности. М.: ИПК Издательство стандартов, 2003. С. 322–328.
4. Евженко К.С. Флора и растительность водоёмов долин правобережных притоков реки Иртыш: Дис. ... канд. биол. наук. Омск, 2011. 145 с.
5. Катанская В.М., Распопов И.М. Методы изучения высшей водной растительности // Руководство по методам гидробиологического анализа вод и донных отложений. Л.: Гос. комитет СССР по гидрометеорологии и контролю природной среды, 1983. С. 129–218.
6. Киприянова Л.М. Разнообразие водных и прибрежно-водных растительных сообществ Бердского залива Новосибирского водохранилища // Сиб. экол. журн. 2000. № 2. С. 195–207.
7. Киприянова Л.М. Растительность реки Бердь и её притоков (Новосибирская область, Западная Сибирь) // Растительность России. 2008. № 12. С. 12−38.
8. Количественный химический анализ вод. Методика выполнения измерений рН в водах потенциометрическим методом. ПНД Ф 14.1:2:3:4.121–97. М.: Минприроды России, 2004. 14 с.
9. Количественный химический анализ вод. Методика измерений массовой концентрации алюминия, бария, бериллия, ванадия, железа, кадмия, кобальта, лития, марганца, меди, молибдена, мышьяка, никеля, свинца, селена, серебра, стронция, титана, хрома, цинка в пробах природных и сточных вод атомно-абсорбционным методом с электротермической атомизацией с использованием атомно-абсорбционного спектрометра модификаций МГА-915, МГА-915М, МГА-915МД. ПНД Ф 14.1:2.253–09. М.: ООО “Люмекс-маркетинг”, 2013. 36 с.
10. Методы количественного химического анализа. Сборник методик выполнения измерений. М.: ЗАО “Аквилон”, 2012. 539 с.
11. Определитель пресноводных водорослей СССР. Л.: Наука, 1951–1983. Т. 10. 1986. 360 с. Т. 13. 1980. 248 с. Т. 14. 1983. 190 с.
12. Свириденко Б.Ф. Флора и растительность водоёмов Северного Казахстана. Омск: Изд-во Омcк. гос. пед. ун-та, 2000. 196 с.
13. Свириденко Б.Ф., Мамонтов Ю.С., Свириденко Т.В. Использование гидромакрофитов в комплексной оценке экологического состояния водных объектов Западно-Сибирской равнины. Омск: Амфора, 2011. 231 с.
14. Свириденко Б.Ф., Мурашко Ю.А., Свириденко Т.В., Ефремов А.Н. Толерантность гидромакрофитов к активной реакции, минерализации и жёсткости воды в природных и техногенных водных объектах Западно-Сибирской равнины // Вестн. Нижневартов. гос. ун-та. Биол. науки. 2016. № 2. С. 8–17.
15. Чепинога В.В. Флора и растительность водоёмов Байкальской Сибири. Иркутск: Ин-т географии СО РАН, 2015. 468 с.
16. Черепанов С.К. Сосудистые растения России и сопредельных государств (в пределах бывшего СССР). СПб.: Мир и семья, 1995. 992 с.
17. Унифицированные методы анализа вод СССР. Л.: Гидрометеоиздат, 1978. 145 с.
18. Barko J.W., Michael R. Smart Sediment-Related Mechanisms of Growth Limitation in Submersed Macrophytes // Ecology. 1986. V. 67. № 5. P. 1328–1340. doi: 10.2307/1938689.
19. Cook C.D.K., Lüönd R. A revision of the genus Hydrilla (Hydrocharitaceae) // Aquat. Bot. 1982. V. 13. P. 485–504.
20. Cooley Th.N., Dooris P.M., Martin D.F. Aeration as a tool to improve water quality and reduce the growth of Hydrilla // Water Res. 1980. V. 14. № 5. P. 485–489.
21. Jabłońska E., Kłosowski S. Ecology of rare water plant communities in lakes of north-eastern Poland // Acta. Soc. Bot. Pol. 2012. V. 81(1). P. 3–9. doi: 10.5586/asbp.2012.006.
22. Kahara S.N. Vermaat J.E. The effect of alkalinity on photosynthesis-light curves and inorganic carbon extraction capacity of freshwater macrophytes // Aquat. Bot. 2003. V. 75. P. 217–227.
23. Klosowski S. The relationships between environmental factors and the submerged Potametea associations in lakes of north–eastern Poland // Hydrobiology. 2006. V. 560. P. 15–29.
24. Madeira P.T., Jacono C.C., Van T.K. Monitoring Hydrilla using two RAPD procedures and the nonindigenous aquatic species database // J. Aqaut. Plant Managе. 2000. V. 38. P. 33–40.
25. Mony C., Koschnick T.J., Haller W.T., Muller S. Competition between two invasive Hydrocharitaceae (Hydrilla verticillata (L. f.) (Royle) and Egeria densa (Planch)) as influenced by sedimnt fertility and season // Aquat. Bot. 2007. V. 86. P. 236–242. doi: 10.1016/j.aquabot. 2006.11.007.
26. Pietsch W. Zur Bioindikation Najas marina L. s.1. – und Hydrilla verticillata (L. f.) Royle-reicher Gewasser Mitteleuropas // Feddes Repertorium. 1981. Bd 92. № 1–2. S. 126–173.
27. Sousa W.T.Z. Hydrilla verticillata (Hydrocharitaceae), a recent invader threatening Brazil’s freshwater environments: a review of the extent of the problem // Hydrobiol. 2011. V. 669. P. 1–20.
28. Spencer W.E., Wetzel R.G., Teeri J. Photosynthetic phenotype plasticity and the role of phosphoenolpyruvate carboxylase in Hydrilla verticillata // Plant. Sci. 1996. V. 118. P. 1–9.
29. Van T.K., Haller W.T., Bowes G. Comparison of the photosynthetic characteristics of three submersed aquatic plants // Plant. Physiol. 1976. V. 58. P. 761–768.
30. Van T.K., Haller W.T., Bowes G., Garrard L.A. Effects of light quality on growth and chlorophyll composition in Hydrilla // J. Aquat. Plant Manage. 1977. V. 15. P. 29–31.
31. Van T.K. Differential responses to photoperiods in monoecious and dioecious Hydrilla verticillata // Weed Sci. 1989. V. 37. P. 552–556.
32. White A., Reiskind J.B., Bowes G. Dissolved inorganic carbon influences the photosynthetic responses of Hydrilla to photoinhibitory conditions // Aquat. Bot. 1996. V. 53. P. 3–13.
Ю. В. Герасимов 1, *, Э. С. Борисенко 2, М. И. Базаров 1, И. А. Столбунов 1, А. И. Цветков 1
Распределение рыб в среднем течении большой реки под влиянием гидрофизических факторов
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
2 Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Ленинский проспект, 33
e-mail: gu@ibiw.yaroslavl.ru
Исследовано пространственное распределение рыб на двух участках р. Хопер (каждый длиной 9 км) в Хоперском заповеднике и вне его с использованием эхолота горизонтального зондирования. Изучены плотности рыб на отрезках русла реки с разной степенью меандрированности и глубиной и влияние на распределение рыб островов и скоплений древесных остатков. При высоком уровне воды (конец весны) все рассмотренные факторы оказывали влияние на пространственное распределение рыб. При низком уровне уровня воды (осень) разница в плотности скоплений рыб на участках с разной степенью меандрированности, с островами и без них уменьшалась, на участках с разной глубиной – возрастала. Плотность рыб на участке реки в пределах заповедника была всегда выше, чем за его пределами.
Ключевые слова: река, гидроакустика, степень меандрированности, глубина, распределение рыб .
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Богатов В.В. Значение бентостока в процессах биологического продуцирования в реках // Экология. 1984. № 3. С. 51–60.
2. Борисенко Э.С., Мочек А.Д., Павлов Д.С., Чемагин А.А. Распределение рыб в речной системе Нижнего Иртыша // Вопр. ихтиологии. 2013. Т. 53. № 1. С. 31–43.
3. Гладких К.К., Делицына Л.Ф., Карпов Н.А. К познанию ихтиофауны бассейна реки Хопер // Тр. Хоперск. гос. заповедника. Воронеж: Изд-во Воронеж. гос. ун-та, 2012. Вып. 7. С. 3–19.
4. Ефремов Д.А. Распределение и поведение реофильных видов рыб в реках Восточной Фенноскандии: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Петрозаводск, 2012. 24 с.
5. Мартинсен Ю.В. Влияние течений на поведение рыб // Рыб. хоз-во. 1940. № 12. С. 23–27.
6. Мартинсен Ю.В. Движение рыб в реке // Рыб. хоз-во. 1937. № 2. С. 27–30.
7. Павлов Д.С., Барекян А.Ш., Рипинский И.И. и др. Экологический способ защиты рыб на повороте струёй открытого потока. М.: Наука, 1982. 112 с.
8. Поддубный С.А., Герасимов Ю.В., Новиков Д.А. Структура течений и распределение рыб в речных плесах верхневолжских водохранилищ // Биология внутр. вод. 2003. № 1. С. 89– 97.
9. Фортунатова К.Р., Попова О.А. Питание и пищевые взаимоотношения хищных рыб в дельте Волги. М.: Наука, 1973. 299 с.
10. Biggs B.J.F., Nikora V.I., Snelder Т.Н. Linking scales of variability to lotic ecosystem structure and function // River Res. Appl. 2005. V. 21. P. 283–298.
11. Borisenko E.S., Gusar A.G., Goncharov S.M. The target strength dependence of some freshwater species on their length-weiht characteristics // Proceedings of the Institute of Acoustics. England: Lowestoft, 1989. V. 11. Pt. 3. P. 27–34.
12. Borisenko E.S., Degtev A.I., Mochek A.D., Pavlov D.S. Hydroacoustic characteristics of mass fishes of Ob-Irtish basin // J. Ichthyol. 2006. V. 46. Suppl. 2. Р. 227–234.
13. Bunn S.E., Arthington A.H. Basic principles and ecological consequences of altered flow regimes for aquatic biodiversity // Environ. Manag. 2002. V. 30. P. 492–507.
14. Fausch K.D., Torgersen C.E., Baxter C.V., Li H.W. Landscapes to river scapes: bridging the gap between research and conservation of stream fishes // BioScience. 2002. V. 52. P. 483–498.
15. Jackson D.A., Peres-Neto P.R., Olden J.D. What controls who is where in freshwater fish communities: the roles of biotic, abiotic and spatial factors? // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2001. V. 58. P. 157–170.
16. Lowe W.H., Likens G.E., Power M.E. Linking scales in stream ecology // BioScience. 2006. V. 56. P. 591–597.
17. Hynes H.B.N. The ecology of running waters. Liverpool, England: Liverpool University Press, 1970. 555 p.
18. Kennard M.J., Pusey B.J., Arthington A.H. et al. Utility of a multivariate modelling method for prediction of freshwater fish assemblages and evaluation of river health // Hydrobiologia. 2006. V. 572. P. 33–57.
19. Kennard M.J., Olden J.D., Arthington A.H. et al. Multiscale effects of flow regime and habitat and their interaction on fish assemblage structure in eastern Australia // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2007. V. 64. P. 1346–1359.
20. Milner N.J., Wyatt R.J., Scott M.D. Variability in the distribution and abundance of stream salmonids, and the associated use of habitat models // J. Fish Biol. 1993. V. 43. Suppl. A. P. 103–119.
21. Poff N.L., Allan J.D. Functional organization of stream fish assemblages in relation to hydrologic variability // Ecology. 1995. V. 76. P. 606–627.
22. Poff N.L., Allan J.D., Bain M.B. et al. The natural flow regime: a paradigm for riverine conservation and restoration // BioScience. 1997. V. 47. Р. 769–784.
23. Pusey B.J., Kennard M.J., Arthington A.H. Discharge variability and the development of predictive models relating stream fish assemblage structure to habitat in north-eastern Australia // Ecol. Freshwater Fish. 2000. V. 9. Р. 30–50.
24. Rahel F.J. The hierarchical nature of community persistence: a problem of scale // Amer. Natur. 1990. V. 136. Р. 328–344.
25. Strange E.M., Moyle P.B., Foin T.C. Interactions between stochastic and deterministic processes in stream fish community assembly // Environ. Biol. Fishes. 1992. V. 36. P. 1–15.
А. К. Смирнов 1, *, Е. С. Смирнова 1
Окончательно избираемая температура молоди трехиглой колюшки Gasterosteus aculeatus (Linnaeus, 1758)
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: smirnov@ibiw.yaroslavl.ru
В экспериментальных условиях исследованы температуры, предпочитаемые молодью трехиглой колюшки из пресных водоемов прибрежья Белого моря. Окончательная избираемая температура для сеголеток была 15.2 оС независимо от температуры предварительного содержания (11, 16 и 20 оС). Увеличенная продолжительность опытов (10 сут) позволила отразить весь процесс выбора рыбами температурного оптимума, а не его отдельные этапы. Сопоставление результатов с литературными данными выявило возможность существования различий в температурных характеристиках, как географически удаленных популяций колюшки, так и между ее пресноводной и морской формами.
Ключевые слова: Gasterosteus aculeatus, окончательно избираемая температура, терморегуляционное поведение.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2002. Т. 2. 253 с.
2. Голованов В.К. Эколого-физиологические закономерности распределения и поведения пресноводных рыб в термоградиентных условиях // Вопр. ихтиологии. 2013. Т. 53. № 3. С. 286–314.
3. Ивлев В.С. Элементы физиологической гидробиологии // Физиология морских животных. М.: Наука, 1966. С. 3–45.
4. Лапкин В.В., Свирский А.М., Сопов Ю.Н. Избираемая температура и температура акклимации рыб // Зоол. журн. 1979. Т. 58. Вып. 11. С. 1659–1670.
5. Озернюк Н.Д. Температурные адаптации. М.: Изд-во Москов. ун-та, 2000. 205 с.
6. Свирский А.М. Поведение рыб в гетеротермальных условиях // Поведение и распределение рыб: Докл. 2-го Всерос. совещ. Борок, 1996. С. 140–152.
7. Свирский А.М., Голованов В.К. Влияние температуры акклимации на терморегуляционное поведение молоди леща Abramis brama (L.) в различные сезоны года // Вопр. ихтиологии. 1991. Т. 31. Вып. 6. С. 974–980.
8. Смирнов А.К. Влияние наличия пищи в зоне температурного оптимума на поведение молоди речного окуня Perca fluviatilis L. // Вестн. Астрахан. гос. тех. ун-та. Сер. Рыб. хоз-во. 2013. № 1. С. 75–82.
9. Хлебович В.В. Акклимация животных организмов. Л.: Наука, 1981. 136 с.
10. Шилов И.А. Экология. М.: Высш. шк., 2001. 512 с.
11. Bicego K.C., Barros R.C.H., Branco L.G.S. Physiology of temperature regulation: comparative aspects // Comp. Biochem. Physiol. – Part A: Molecular & Integrative Physiology. 2007. V. 147. P. 616–639.
12. Fry F.E.J. Effect of the environment on animal activity // Univ. Toronto Studies, Biol. Ser., Publ. Ont. Fish. Res. Lab., 1947. № 68. 62 p.
13. Garside E.T., Heinze D.G., Barbour S.E. Thermal preference in relation to salinity in the threespine stickleback, Gasterosteus aculeatus L., with an interpretation of its significance // Can. J. Zool. 1977. V. 55(3). P. 590–594.
14. Jobling M. Temperature tolerance and the final preferendum – rapid methods for the assessment of optimum growth temperatures // J. Fish Biol. 1981. V. 19. P. 439–455.
15. Jordan C.M., Garside E.T. Upper lethal temperatures of threespine stickleback, Gasterosteus aculeatus (L.) in relation to thermal and osmotic acclimation, ambient salinity, and size // Can. J. Zool. 1972. V. 50. P. 1405–1411.
16. Lachance S., Magnan P., Fitz Gerald G.J. Temperature preferences of three sympatric sticklebacks (Gasterosteidae) // Can. J. Zool. 1987. V. 65 (6). P. 1573–1576.
17. Reynolds W.W., Casterlin M.E. Behavioral thermoregulation and the “final preferendum” paradigm. Thermoregulation in ectotherms. Symp. Richmond. 1978. // Amer. Zool. 1979. V. 19. № 1. P. 211–224.
18. Røed K.H. The Temperature Preference of the Three-spined Stickleback, Gasterosteus aculeatus L. (Pisces), Collected at Different Seasons // Sarsia. 1979. V. 64. P. 137–141.
Э. И. Бознак 1, *, А. Б. Захаров 2, В. Г. Терещенко 3
Влияние усиления интенсивности любительского лова на рыбное население водотока зоны хозяйственного освоения
1 Сыктывкарский государственный университет им. Питирима Сорокина, 167001 Сыктывкар, Октябрьский проспект, 55, Республика Коми
2 Институт биологии Коми научного центра Уральского отделения РАН, 167982 Сыктывкар, ГСП-2, ул. Коммунистическая, д. 28
3 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: boznak06@rambler.ru
На примере одного из Тиманских водотоков (р. Вымь), расположенного в зоне влияния Среднетиманского бокситового рудника, показано, что на первом этапе функционирования предприятия существенное увеличение численности рыбаков-любителей привело к снижению разнообразия рыбного населения верхнего течения р. Вымь и уменьшению численности популяций хозяйственно ценных видов рыб, которые из длинноцикловых стали среднецикловыми.
Ключевые слова: рыбы, сообщество, разнообразие, популяция, численность, возрастная структура, любительский лов.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Айламазян А.К., Стась Е.В. Информатика и теория развития. М.: Наука, 1989. 174 с.
2. Алимов А.Ф. Элементы теории функционирования водных экосистем. СПб.: Наука, 2001. 147 с.
3. Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2002. 379 с.
4. Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2003. 253 с.
5. Волькенштейн М.В. Общая биофизика. М.: Наука, 1987. 592 с.
6. Доровских Г.Н., Терещенко В.Г., Степанов В.Г. Сезонная динамика видовой структуры компонентного сообщества паразитов ерша из реки Вычегда // Паразитология. 2016. T. 50. № 1. С. 58–68.
7. Захаров А.Б., Черезова М.И. Ихтиофауна малых водотоков в районе разработки бокситовых месторождений Тимана // Разнообразие и пространственно-экологическая организация животного населения европейского Северо-Востока. Сыктывкар: Коми науч. центр УрО РАН, 2008. С. 54–80.
8. Никольский Г.В. Теория динамики стада рыб как биологическая основа рациональной эксплуатации и воспроизводства рыбных ресурсов. М.: Пищ. пром-сть, 1974. 447 с.
9. Песенко Ю.А. Принципы и методы количественного анализа в фаунистических исследованиях. М.: Наука, 1982. 287 с.
10. Решетников Ю.С., Терещенко В.Г., Лукин А.А. Динамика рыбной части сообщества в изменяющихся условиях среды обитания (на примере озера Имандра) // Рыб. хоз-во. 2011. № 6. С. 48–52.
11. Рикер У.Е. Методы оценки и интерпретация биологических показателей популяций рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1979. 408 с.
12. Рыбы в заповедниках России. Т. 1. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. 627 с.
13. Свиржев Ю.М., Логофет Д.О. Устойчивость биологических сообществ. М.: Наука, 1978. 352 с.
14. Сидоров Г.П. Ихтиофауна // Тиманский кряж. В 2 т. Т. 1: История, география, жизнь: монография. Ухта: Ухт. гос. тех. ун-т, 2008. С. 244–251.
15. Сидоров Г.П., Решетников Ю.С. Лососеобразные рыбы водоемов европейского Северо-Востока. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2014. 346 с.
16. Терещенко В.Г., Вербицкий В.Г. Метод фазовых портретов для анализа динамики структуры сообществ гидробионтов // Биология внутр. вод. 1997. № 1. С. 23–31.
17. Терещенко В.Г., Стерлигова О.П., Павлов В.Т., Ильмаст Н.В. Многолетняя динамика структурных и системных характеристик рыбного населения эвтрофируемого Сямозера // Биология внутр. вод. 2004. № 3. С. 93–102.
18. Титов С.Ф., Студенов И.И. Генетическая дифференциация европейского хариуса (Thymallus thymallus L.) из рек восточной части ареала (бассейны Баренцева и Белого морей) // Лососевидные рыбы Восточной Фенноскандии. Петрозаводск, 2005. С. 178–190.
19. Чугунова Н.И. Руководство по изучению возраста и роста рыб. М.: Изд-во АН СССР, 1959. 164 с.
20. Шеннон К. Работы по теории информации и кибернетике: Пер. с англ. М.: Иностр. литература, 1963. 830 с.
21. Шмальгаузен И.И. Интеграция биологических систем и их саморегуляция // Кибернетические вопросы биологии. Новосибирск: Наука, 1968. С. 157–183.
22. Шубин П.Н., Ефимцева Э.А., Челпанова Т.И., Шубин Ю.П. Аллозимная изменчивость лососевидных рыб Европейского Севера. Сыктывкар: Коми науч. центр УрО РАН, 2000. 100 с.
23. Шубина В.Н. Бентос лососевых рек Урала и Тимана. СПб.: Наука, 2006. 416 с.
24. Mineeva N.M., Tereshchenko V.G. Application of the phase portrait method for analysis of seasonal dynamics in phytoplankton productivity in a large plain reservoir // Inland Water Biol., 2013, V. 6, №. 1, pp. 70–79. doi: 10.1134/S1995082913010112.
25. Routledge R.D. Diversity Indices: Which ones are admissible? // J. Theor. Biol. 1979. V. 76. № 4. P. 503515.
26. Tereschenko V.G., Buzevich I.Yu., Khrystenko D.S., Tereschenko L.I. Specific growth rate of Kilka Clupeonella cultriventris (Nordmann, 1840) populations in Dneprodzerzhinsk and Kremenchug reservoirs at different phases of its naturalization // Inland Water Biol. 2015. V. 8. № 3. P. 301–308. doi 10.1134/S1995082915030141.
27. Tereshchenko V.G., Kapusta A., Wilkonska H., Strelnikova A.P. Long-term changes in 0+ fish assemblages in the littoral zone of heated lakes. 1. Using phase diagrams to evaluated changes in ichthyofauna // Archives of Polish Fisheries. 2007. V. 15. Fasc. 4. P. 415–430.
28. Tereshchenko V.G., Khrystenko D.S., Kotovska G.O., Tereshchenko L.I. Characteristics of stone Moroko population dynamics at different stages of naturalization in lake- and Steam-type Dnieper reservoirs // Rus. J. Ecol. 2016. V. 47. № 7. P. 364–370.
29. Verbitsky V.B., Tereshchenko V.G. Structural phase diagrams of animal communities in assessment freshwater ecosystem conditions // Hydrobiologia. 1996. V. 322. P. 277–282.
С. А. Мурзина 1, *, З. А. Нефедова 1, С. Н. Пеккоева 1, А. Е. Веселов 1, И. А. Барышев 1, П. О. Рипатти 1, Н. Н. Немова 1
Содержание жирных кислот в кормовых объектах молоди лососевых рыб рек бассейна Онежского озера
1 Институт биологии Карельского научного центра Российской академии наук, 185910 Петрозаводск, ул. Пушкинская, 11
e-mail: murzina.svetlana@gmail.com
При учете кормовой базы молоди лососевых рыб (лосося и кумжи) в шести реках бассейна Онежского озера выявлены беспозвоночные организмы 23 таксонов. В пробах макрозообентоса определено содержание и соотношения жирных кислот общих липидов. Установлены различия в соотношении эссенциальных 18:3ω-3/18:2ω-6 жирных кислот, значения которых у зообентоса из лососевых рек (1.68–2.83) превышали таковые из кумжевых рек (0.4–1.08). Соотношение насыщенные жирные кислоты/полиненасыщенные жирные кислоты (0.66–0.97) в зообентосе из лососевых рек выше, чем из кумжевых (0.33–0.59). Содержание и соотношение физиологически активных жирных кислот в зообентосе местообитаний молоди лососевых рыб оказывают существенное влияние на их рост и развитие.
Ключевые слова: макрозообентос, лосось, кумжа, жирные кислоты, реки бассейна Онежского озера.
Показать список литературы
Cписок литературы
Барышев И.А. Факторы формирования сообществ макрозообентоса каменистых порогов и перекатов водотоков восточной Фенноскандии // Журн. общ. биологии. 2014. Т. 75. № 2. С. 124–131.
2. Барышев И.А., Веселов А.Е. Сезонная динамика бентоса и дрифта беспозвоночных организмов в некоторых притоках Онежского озера // Биология внутр. вод. 2007. № 1. С. 80–86.
3. Барышев И.А., Кухарев В.И. Влияние проточного озера на структуру зообентоса в реке с быстрым течением (на примере р. Лижма, бассейн Онежского озера) // Уч. зап. Петрозаводск. гос. ун-та. 2011. № 6 (119). С. 16–19.
4. Воронин В.П., Мурзина С.А., Пеккоева С.Н. Жирнокислотный состав кормовых объектов макрозообентоса молоди лососевых рыб в реках европейского Севера // Актуальные проблемы биологии и экологии: Матер. докл. XXIII Всерос. молодеж. науч. конф. (с элементами научной школы). Сыктывкар, 2016. С. 57–59.
5. Латышев Н.А., Хардин А.С., Кияшко С.И. Жирные кислоты как маркеры пищевых источников морских звезд // Докл. РАН. 2001. Т. 380. № 5. С. 1–3.
6. Методические рекомендации по изучению гидробиологического режима малых рек. Петрозаводск: Ин-т биологии Карельск. науч. центра АН СССР, 1989. 42 с.
7. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 5: Высшие насекомые: Ручейники. Бабочки. Жуки. Сетчатокрылые. СПб.: Зоол. ин-т РАН, 2001. 836 с.
8. Павлов Д.С., Мещерякова О.В., Веселов А.Е. и др. Показатели энергетического обмена у молоди атлантического лосося Salmo salar, обитающей в главном русле и притоке реки Варзуга (Кольский полуостров) // Вопр. ихтиологии. 2007. Т. 47. № 6. С. 819–826.
9. Павлов Д.С., Нефедова З.А., Веселов А.Е. и др. Липидный статус сеголеток атлантического лосося Salmo salar L. из разных микробиотопов р. Варзуга // Вопр. ихтиологии. 2008. Т. 48. № 5. С. 679–685.
10. Регеранд Т.И., Нефедова З.А., Тойвонен Л.Т. и др. Липидный метаболизм личинок ручейников при низких значениях pH среды // Онтогенез. “Экспериментальная эмбриология”. 2002. Т. 33(4). С. 285–291.
11. Сергеева М.Г., Варфоломеева А.Т. Каскад арахидоновой кислоты. М.: Народное образование, 2006. 255 с.
12. Смирнов Ю.А., Шустов Ю.А., Хренников В.В. Характеристика поведения и питания молоди онежского лосося Salmo salar L. morpha sebago (Girard) в зимний период // Вопр. ихтиологии. 1976. Т. 16. Вып. 3. С. 557–559.
13. Сущик Н.Н. Роль незаменимых жирных кислот в трофометаболических взаимодействиях в пресноводных экосистемах (обзор) // Журн. общ. биологии. 2008. Т. 69. № 4. С. 299–316.
14. Флеминг Я. Размножение атлантического лосося // Атлантический лосось. СПб.: Наука, 1998. С. 127–141.
15. Хренников В.В. Бентос притоков Онежского озера // Лососевые реки Онежского озера. Биологический режим, использование. Л.: Наука, 1978. С. 41–50.
16. Цыганов Э.П. Метод прямого метилирования липидов после ТСХ без элюирования с силикагелем // Лаб. дело. 1971. № 8. С. 490–493.
17. Чертопруд М.В. Структурная изменчивость литореофильных сообществ макробентоса // Журн. общ. биологии. 2007. Т. 68. № 6. С. 424–434.
18. Шустов Ю.А. Экологические аспекты поведения молоди лососевых рыб в речных условиях. СПб.: Наука, 1995. 161 с.
19. Arts M.T., Kohler C.C. Health and condition of fish: the influence of lipids on membrane competency and immune response // Lipids in aquatic ecosystem. N.Y.: Springer, 2009. P. 237–257.
20. Brett M., Muller-Navarra D. The role of highly unsaturated fatty acids in aquatic food-web processes // Freshwater Biol. 1997. V. 38. P. 483–499.
21. Descroix A., Desvilettes C., Bec A. et al. Impact of macroinvertebrate diet on growth and fatty acid profiles of restocked 0+ Atlantic salmon (Salmo salar L.) parr from a large European river (the Allier) // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 2010. V. 67. P. 1–14.
22. Engström-Öst J., Lehtiniemi M., Jónasdóttir S.H., Viitasalo M. Growth of pike larvae (Esox lucius) under different conditions of food quality and salinity // Ecol. Freshwater Fish. 2005. V. 14. P. 385–393.
23. Folch J., Lees M., Sloan-Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipids animal tissue (for brain, liver and muscle) // J. Biol. Chem. 1957. V. 226. P. 497–509.
24. Fraser A.J., Sargent J.R., Gamble J.C., Seaton D.D. Formation and transfer of fatty acids in an enclosed marine food chain comprising phytoplankton, zooplankton and herring (Clupea harengus L.) larvae // Mar. Chem. 1989. V. 27. P. 1–18.
25. Hansen O.J., Puvanendran V., Jøstensen J.P., Ous C. Effects if dietary levels and ratio of phosphatidylcholine and phosphatidylinositol on the growth, survival and deformity levels of Atlantic cod larvae and early juveniles // Aquat. Res. 2010. P. 1–8.
26. Jonasdottir S.H. Effects of food quality on the reproductive success of Acartia tonsa and Acartia hydsonica: laboratory observations // Mar. Biol. 1994. V. 121. P. 67–81.
27. Lee D.J., Roehm J.N., Yu T.C., Sinnhuber R.O. Effect of omega-3 fatty acids on the growth rate of rainbow trout, Salmo gairdneri // J. Nutr. 1967. № 92. P. 93–98.
28. Legezynska J., Kedra M., Walkusz W. When season does not matter: summer and winter trophic ecology of Arctic amphipods // Hydrobiologia. 2012. V. 684. P. 189–214.
29. Makhutova O.N., Sharapova T.A., Kalachova G.S. et al. Characteristics of fatty acid composition of Gammarus lacustris inhabiting lakes with and without fish // Doklady Bioch. Biophys. 2011. V. 466(1). P. 20–22.
30. Meinelt T., Schulz C., Wirth M. et al. Dietary fatty acid composition influences the fertilization rate of zebrafish (Danio rerio Hamilton Buchanan) // J. Appl. Ichthyol. 1999. V. 15. P. 19–23.
31. Miller M.R., Nichols P.D., Carter C.G. Replacement of dietary fish oil for Atlantic salmon parr (Salmo salar L.) with a stearidonic acid containing oil has no effect on omega-3 longchain polyunsaturated fatty acid concentrations // Comp. Biochem. Physiol. B Biochem. Mol. Biol. 2007. V. 146(2). P. 197–206.
32. Müller-Navarra D.C., Brett M.T., Liston A.M., Goldman C.R. A highly unsaturated fatty acid predicts carbon transfer between primary producers and consumers // Nature. 2000. V. 403. P. 74–77.
33. Sargent J.R., Henderson R.J. Lipids. The biological chemistry of marine copepods. Oxford: Clarendon Press, 1986. P. 59–108.
34. Sidell B.D., Crokett E.L., Driezdic W.R. Antarctic fish tissues preferably catabolise monoenoic fatty acids // J. Exp. Zool. 1995. V. 271. P. 73–81.
35. Viron C., Saunois A., Andre P., Perly B., Laffose M. Isolation and identification of unsaturated fatty acid methyl esters from marinew micro-algae // Anal. Chim. Acta. 2000. V. 409. P. 257–266.
36. Youdim K.A., Martin A., Joseph J.A. Essential fatty acids and the brain: possible health implications // Int. J. Dev. Neurosci. 2000. V. 18. P. 383–399.
37. Zhukova N.V., Aizdaicher N.A. Fatty acid composition of 15 species of marine microalgae // Phytochemistry. 1995. V. 39. P. 351–356.
И. Л. Голованова 1, *, А. А. Филиппов 1, В. В. Крылов 1
Чувствительность пищеварительных гликозидаз к действию тяжёлых металлов у сеголетков плотвы Rutilus rutilus (L.) – последствия гипомагнитных условий в период раннего онтогенеза
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: golovanova5353@mail.ru
Исследовано влияние гипомагнитных условий (ГМУ) в разные промежутки раннего онтогенеза (стадия эмбриона и предличинки) на активность пищеварительных гликозидаз (мальтазы, амилолитической активности) и их чувствительность к in vitro действию ионов тяжелых металлов (Cu2+, Zn2+, Cu2+ + Zn2+, Pb2+, Cd2+, Pb2+ + Cd2+) у сеголетков плотвы Rutilus rutilus (L.). Чувствительность ферментов, гидролизующих крахмал, к действию исследованных металлов в концентрации 25 мг/л, и мальтазы к действию Zn2+ и Pb2+ усиливается после воздействия ГМУ на эмбрионы и предличинки. Чувствительность мальтазы к ионам Cd2+ и комбинации ионов Pb2+ и Cd2+ повышается лишь после воздействия ГМУ на эмбрионы. После их действия в эмбриональный период эффекты совместного действия ионов Cu2+ и Zn2+ (1:1), а также Pb2+ и Cd2+ (1:1) не превышают суммы эффектов отдельных металлов.
Ключевые слова: плотва, пищеварительные гликозидазы, гипомагнитные условия, тяжелые металлы, Cu, Zn, Pb, Cd.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бедняков Д.А. Структурно-функциональные особенности мембранного пищеварения у осетрообразных видов рыб и их гибридов: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Астрахань, 2014. 44 с.
2. Королев В.А., Захарова М.В., Ярмолюк Н.С. Особенности репродуктивного процесса у крыс в условиях электромагнитного экранирования // Уч. зап. Крымск. фед. ун-та им. В.И. Вернадского. Биология. Химия. 2009. Т. 22. № 3. С. 68–74.
3. Линник Л.П., Набиванец Б.И. Формы миграции металлов в пресных поверхностных водах. Л.: Гидрометеоиздат, 1986. 270 с.
4. Малышева Т.Д., Василевский В.С. Влияние избытка кишечного цинка на активность пищеварительных ферментов карпа // Гидробиол. журн. 1992. Т. 28. № 4. С. 45–52.
5. Неваленный А.Н., Туктаров А.В., Бедняков Д.А. Функциональная организация и адаптивная регуляция процессов пищеварения у рыб. Астрахань: Астрахан. гос. техн. ун-т, 2003. 152 с.
6. Новиков С.М., Максимов Г.В., Волков В.В., Шалыгин А.Н. Исследование действия ослабленного постоянного магнитного поля на возбудимость нервной клетки // Биофизика. 2008. Т. 53. № 3. С. 519–523.
7. Осипенко М.A., Межевикина Л.М., Крастс И.В. и др. Влияние “нулевого” магнитного поля на рост эмбриональных клеток и ранних зародышей мыши в культуре in vitro // Биофизика. 2008. Т. 53. № 4. С. 705–714.
8. Перевозников М.А., Богданова Е.А. Тяжелые металлы в пресноводных экосистемах. СПб.: Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1999. 228 с.
9. Темурьянц Н.А., Демцун Н.А., Костюк А.С., Ярмолюк Н.С. Особенности регенерации планарии Dugesia tigrina и ноцицепции моллюсков Helix albescens в условиях слабого электромагнитного экранирования // Геофизические процессы и биосфера. 2011. Т. 10. № 4. С. 66–80.
10. Уголев А.М. Определение активности инвертазы и других дисахаридаз // Исследование пищеварительного аппарата у человека. Л.: Наука, 1969. С. 192–196.
11. Филиппов А.А., Крылов В.В., Голованова И.Л. Влияние флуктуаций локального магнитного поля во время эмбриогенеза на чувствительность пищеварительных гликозидаз сеголеток плотвы к in vitro действию меди, цинка и гербицида Раундап // Вестн. Астрахан. гос. техн. ун-та. Серия: Рыбное хозяйство. 2015. № 3. С. 119–125.
12. Флеров Б.А., Томилина И.И., Кливленд Л. и др. Комплексная оценка состояния донных отложений Рыбинского водохранилища // Биология внутр. вод. 2000. № 2. С. 148–155.
13. Asashima M., Shimada K., Pfeiffer C.J. Magnetic Shielding Induces Early Developmental Abnormalities in the Newt, Cynops pyrrhogaster // Bioelectromagnetics. 1991. V. 12. P. 215–224.
14. Bury N.R., Walker P.A., Glover C.N. Nutritive metal uptake in teleost fish // J. Exp. Biol. 2003. V. 206. № 1. P. 11–23.
15. Fesenko E.E., Mezhevikina L.M., Osipenko M.A. et al. Effect of the “zero” Magnetic Field on Early Embryogenesis in Mice // Electromagn. Biol. Med. 2010. V. 29. P. 1–8.
16. Golovanova I.L. Effect of heavy metals on the physiological and biochemical status of fishes and aquatic invertebrates // Inland Water Biol., 2008, vol. 1, no. 1, pp. 93–101.
17. Filippov A.A., Aminov A.I., Golovanova I.L. et al. Effect of magnetic storm on the sensitivity of juvenile roach intestinal glycosidase to heavy metals (Cu, Zn) and the herbicide Roundup // Inland Water Biol. 2015. V. 8. №. 4. pp. 417–420.
18. James R., Sampath K., Sivakumar V., Manthiramoorthy S. Individual and combined effects of heavy metals on survival and biochemistry of Oreochromis mossambicus Peters // Indian J. Fish. 1991. V. 38. № 1. P. 49–54.
19. Jiang H., Kong X., Wang S., Guo H. Effect of Copper on Growth, Digestive and Antioxidant Enzyme Activities of Juvenile Qihe Crucian Carp, Carassius carassius, During Exposure and Recovery // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2016. V. 96. № 3. P. 333–340.
20. Li J.-S., Li J.-L., Wu T.-T. The effects of copper, iron and zinc on digestive enzyme activity in the hybrid tilapia Oreochromis niloticus (L.) x Oreochromis aureus (Steindachner) // J. Fish Biol. 2007. V. 71. № 6. P. 1788–1798.
21. Mo W.-Ch., Liu Y., Cooper H.M., He R.-Q. Altered Development of Xenopus Embryos in a Hypogeomagnetic Field // Bioelectromagnetics. 2012. V. 33. № 3. P. 238–246.
22. Nepomnyashchikh L.M., Lushnikova E.L., Klinnikova M.G. et al. Effect of hypogeomagnetic field on tissue and intracellular reorganization of mouse myocardium // Bull. Exp. Biol. Med. 1997. V. 124. № 4. P. 1021–1024.
23. Novikov V.V., Sheiman I.M., Fesenko E.E. Multimodal Effects of Nearly Complete Geomagnetic Field Deprivation on Fission of the Planarian Dugesia tigrina // Biophysics. 2007. V. 52. № 5. P. 498.
24. Rani S., Gupta R.K., Kanikatehri. Zinc and Cadmium Induced Changes in the Proteolytic and Amylolytic Enzyme Activity in Indian Major Carps // The Bioscan. 2015. V. 10. P. 613–616.
25. Tang Q.Q., Feng L., Jiang W.D. et al. Effects of Dietary Copper on Growth, Digestive, and Brush Border Enzyme Activities and Antioxidant Defense of Hepatopancreas and Intestine for Young Grass Carp (Ctenopharyngodon idella) // Biol. Trace. Elem. Res. 2013. V. 155. № 3. P. 370–380.
В. В. Халько 1 , Е. В. Шемонаев 2, 3, *, Е. В. Кириленко 2, Н. А. Халько 1
Физиолого-биохимические показатели сеголетков аборигенного Carassius auratus gibelio (Bloch, 1792) и инвазионного Perccottus glenii (Dybowski, 1877) видов рыб в пойменном озере Круглое (Саратовское водохранилище)
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
2 Институт экологии Волжского бассейна Российской академии наук,455003 Тольятти, ул. Комзина, 10
3 Тольяттинский государственный университет, Россия 445020, Тольятти, ул. Белорусская, 14
e-mail: fosfolipid00@mail.ru
На примере оз. Круглое (Мордовинская пойма Саратовского водохранилища) приведен сравнительный анализ изменений физиолого-биохимических показателей сосуществующих в пределах общих биотопов сеголетков аборигенного (серебряный карась Carassius auratus gibelio) и инвазионного (ротан-головешка Perccottus glenii) видов. Выявлены межвидовые различия динамики массы тела, содержания белка, жира, воды и калорийности при увеличении длины особей в различные месяцы нагульного периода. Рассмотрены возможные причины и последствия их возникновения.
Ключевые слова: сеголетки, ротан-головешка, серебряный карась, длина тела, жир, белок, вода, калорийность.
Показать список литературы
Cписок литературы
Евланов И.А., Козловский С.В., Антонов П.И. Кадастр рыб Самарской области. Тольятти: Изд-во Института экологии волжск. бассейна РАН, 1998. 222 с.
2. Кириленко Е.В., Шемонаев Е.В. Данные о морфологии и биологии ротана- головешки Perccottus glenii Dybowski, 1877 из озера Круглое Мордовинской поймы Саратовского водохранилища // Изв. Самар. науч. центра РАН. 2011. Т. 13. № 1. C. 207–210.
3. Кириленко Е.В., Шемонаев Е.В. Актуальные проблемы экологии и охраны окружающей среды // Матер. X Междунар. науч.-практ. конф. “Татищевские чтения: актуальные проблемы науки и практики”. Тольятти: Волжск. ун-т им. В.Н. Татищева, 2013. С. 60–66.
4. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 352 с.
5. Лапин В.И., Чернова Е.Г. О методике экстракции жира из сырых тканей рыб // Вопр. ихтиологии. 1970. Т. 10. Вып. 4. C. 753–756.
6. Шатуновский М.И. Экологические закономерности обмена веществ морских рыб. М.: Наука, 1980. 281 с.
7. Шульман Г.Е. Физиолого-биохимические особенности годовых циклов рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1972. 368 c.
8. Шульман Г.Е., Кокоз Л.M. Особенности белкового роста и жиронакопления у черноморских рыб // Биология моря. 1968. Вып. 15. C. 159–203.
9. Шульман Г.Е., Кокоз Л.М. Содержание сухого обезжиренного вещества в теле некоторых черноморских рыб // Вопр. ихтиологии. 1971. Т. 11. Вып. 2. C. 339−344.
10. Халько В.В. Закономерности формирования продукционных показателей молоди рыб разных экологических групп: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 1983. 24 c.
11. Folch J., Lees M., Stonley A. A simple method for isolation and purification of total lipids from animal tissues // J. Biol. Chem. 1957. V. 226. № 1. P. 497–509.
В. А. Багиров 1, , Е. А. Сизова 2, 3, *, Е. П. Мирошникова 3, И. А. Гавриш 2, А. В. Коновалов 4
Нарушение равновесия в микробиоценозе кишечника Danio rerio (Hamilton, 1882) и угнетение защитных механизмов под воздействием никельсодержащих наночастиц
1 Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ им. акад. Л.К. Эрнста, Россия 142132 Московская область, пос. Дубровицы, д. 60
2 Федеральный научный центр биологических систем и агротехнологий Российской академиии наук,
Россия 460000 Оренбург, ул. 9-го Января, д. 29
3 Оренбургский государственный университет, Россия 460013 Оренбург, пр. Победы, д. 13
4 Ярославский научно-исследовательский институт животноводства и кормопроизводства Федерального научного центра кормопроизводства и агроэкологии им. В.Р. Вильямса, Россия 150517 Ярославская обл., Ярославский район, пос. Михайловский, ул. Ленина, д. 1
e-mail: Sizova.L78@yandex.ru
Изучено состояние антиоксидантной системы и микробиоценоза кишечника Danio rerio (Hamilton, 1822) при внесении в среду обитания наночастиц никеля и его оксида. Установлено, что токсический эффект наночастиц развивается по пути индукции окислительного стресса и сопровождается качественной реорганизацией микробиоценоза кишечника и угнетением защитных механизмов. Низкая дозовая нагрузка и кратковременный контакт тест-объекта с наноформами никеля приводят к активизации системы антиоксидантной защиты организма в ответ на образование свободных радикалов. Хронические условия и высокие дозы истощают антиоксидантную систему организма на фоне гиперпродукции свободных радикалов при окислительном стрессе. Установлено изменение видового разнообразия микроорганизмов, в частности замена Citrobacter и Enterobacter на Rhodobacter и Methylobacterium (при внесении наночастиц оксида никеля) и Bacillus, Acinetobacter и Rhodobacter (наночастиц никеля), т.е. замещение нормальной микрофлоры желудочно-кишечного тракта транзиторной. Повышение в среде обитания количества никеля в форме наночастиц неизбежно приводит к его кумуляции в теле гидробионтов с выраженностью эффекта при хронических условиях.
Ключевые слова: Danio rerio, выживаемость, микробиоценоз кишечника, каталаза, супероксиддисмутаза, наночастицы никеля и оксида никеля.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Амосова А.А., Амосов Е.А., Козулина А.С. Экспериментальная оценка тест-системы
для исследования острой токсичности различных загрязнителей окружающей среды в лабораторных условиях // Изв. Самар. науч. центра РАН. 2014. № 5(2). C. 1042–1044.
2. Андронов Е.Е., Пинаев А.Г., Першина Е.В., Чижевская Е.П. Выделение ДНК из образцов почвы (методические указания). СПб.: ГНУ ВНИИСХМ РАСХН, 2011. 27 с.
3. Бузолева Л.С., Калитина Е.Г., Безвербная И.П., Кривошеева А.М. Микробные сообщества поверхностных прибрежных вод бухты Золотой Рог в условиях высокого антропогенного загрязнения // Океанология. 2008. Т. 48. № 6. C. 882–888.
4. Бурлакова Е.Б., Храпова Н.Г. Перекисное окисление липидов мембран и природные антиоксиданты // Успехи химии. 1998. Т. 52. № 9. С. 540–558.
5. Бурлаченко И.В. Актуальные вопросы безопасности комбикормов в аквакультуре. М.: Всерос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 2008. С. 126–155
6. Двоскин Я.Г. Химическая безопасность и основы профилактической токсикологии: Метод. пособие. М., 2003. 51 с.
7. Ланкин В.З., Тихазе А.К., Беленков Ю.Н. Свободнорадикальные процессы в норме и при заболеваниях сердечно-сосудистой системы // Кардиология. 2000. Т. 40. № 7. С. 48–61.
8. Мамонова И.А., Бабушкина И.В. Экспериментальное исследование антибактериального действия наночастиц никеля на клинические штаммы Pseudomonas aeruginosa // Биол. науки. 2012. № 2. С. 174–178.
9. Меньшикова Е.Б., Зенков Н.К., Шергин С.М. Биохимия окислительного стресса. Оксиданты и антиоксиданты. Новосибирск: СО РАМН, 1994. 203 с.
10. Обущенко С.В., Гнеденко В.В. Мониторинг содержания микроэлементов и тяжёлых металлов в почвах Самарской области // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2014. № 7. С. 30–34.
11. Паршуков А. Н. Микробиоценоз радужной форели в садковых хозяйствах Карелии: Дис. … канд. биол. наук. Петрозаводск, 2011. 182 c.
12. Стальная И.Д., Гарищвили Т.Г. Методы определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты. Современные методы в биохимии. М.: Медицина, 1977. 392 с.
13. Ates M., Arslan Z., Demir V. et al. Accumulation and toxicity of CuO and ZnO nanoparticles through waterborne and dietary exposure of goldfish (Carassius auratus) // Environ. Toxicol. 2015. V. 30. № 1. P. 119–128.
14. Austin B. The bacterial microflora of fish // The Sci. World J. 2002. V. 2. P. 558–572.
15. Bennett K.W., Eley A. Fusobacteria: new taxonomy and related diseases // J. Med. Microbiol. 1993. V. 39. № 4. P. 246–254.
16. Cahill M.M. Bacterial flora of fishes: A review // Microb. Ecol. 1990. V. 19. № 1. P. 21–41.
17. Choi J.E., Kim S., Ahn J.H. et al. Induction of oxidative stress and apoptosis by silver nanoparticles in the liver of adult zebrafish // Aquat. Toxicol. 2010. V. 100. № 2. P. 151–159.
18. Edgar R.C. Search and clustering orders of magnitude faster than BLAST // Bioinformatics. 2010. V. 26. № 9. P. 2460–2461.
19. Fidopiastis P.M. Microbial activity in the gut of an herbivorous marine fish // Masters Abstracts International. 1996. V. 34. № 3. 1102 p.
20. Ganesan S., Anaimalai Thirumurthi N., Raghunath A. et al. Acute and sub-lethal exposure to copper oxide nanoparticles causes oxidative stress and teratogenicity in zebrafish embryos // J. Appl. Toxicol. 2016. V. 36. № 4. P. 554–567.
21. Govindasamy R., Rahuman A.A. Histopathological studies and oxidative stress of synthesized silver nanoparticles in Mozambique tilapia (Oreochromis mossambicus) // J. Environ. Sci. 2012. V. 24. № 6. P. 1091–1098.
22. Hao L., Wang Z., Xing B. Effect of sub-acute exposure to TiO2 nanoparticles on oxidative stress and histopathological changes in juvenile carp (Cyprinus carpio) // J. Environ. Sci. 2009. V. 21. № 10. P. 1459–1466.
23. Huse S.M., Mark Welch D.B., Voorhis A. et al. VAMPS: a website for visualization and analysis of microbial population structures // BMC Bioinformatics. 2014. V. 15. 41 p. doi: 10.1186/1471-2105-15-41.
24. Jankauskiene R. Defence mechanisms in fish: Lactobacillus genus bacteria of intestinal wall in feeding and hibernating carps // Ekologija. 2000. V. 1. P. 3–6.
25. Larsen A.M., Mohammed H.H., Arias C.R. Characterization of the gut microbiota of three commercially valuable warm water fish species // J. Appl. Microbiol. 2014. V. 116. № 6. P. 1396–1404.
26. Lindström E.S., Vrede K., Leskinen E. Response of a member of the Verrucomicrobia, among the dominating bacteria in a hypolimnion, to increased phosphorus availability // J. Plankton Res. 2004. V. 26. № 2. P. 241–246.
27. Moore M.N. Do nanoparticles present ecotoxicological risks for the health of the aquatic environment? // Environ. Int. 2006. V. 32. P. 967–976.
28. Newton R.J. et al. A guide to the natural history of freshwater lake bacteria // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2011. V. 75. P. 14–49.
29. OECD, Guideline for Testing of Chemicals, Guideline 203 // Fish, Acute Toxicity Test., Paris: Organization of Economic Cooperation, Development, 1992. 9 p.
30. Piccinetti C.C., Montis C., Bonini M.et al. Transfer of silica-coated magnetic (Fe3O4) nanoparticles through food: a molecular and morphological study in zebrafish // Zebrafish. 2014. V. 11. № 6. P. 567–579.
31. Ringo E., Lodemel J.B., Myklebust R. et al. Epithelium-associated bacteria in the gastrointestinal tract of Arctic charr (Salvelinus alpinus L.). An electron microscopical study // J. Appl. Microbiol. 2001. V. 90. P. 294–300.
32. Shah V., Taratula O., Garbuzenko O.B. et al. Genotoxicity of Different Nanocarriers: Possible Modifications for the Delivery of Nucleic Acids. Current Drug Discovery Technologies. 2013. V. 10. № 1. С. 8–15.
33. Shahravan A., Desai T., Matsoukas T. Passivation of Aluminum Nanoparticles by Plasma-Enhanced Chemical Vapor Deposition for Energetic Nanomaterials // ACS applied materials & interfaces. 2014. V. 10. № 6. P. 7942–7947.
34. Shvedova A.A., Pietroiusti A., Fadeel B., Kagan V.E. Mechanisms of carbon nanotube-induced toxicity: focus on oxidative stress // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2012. V. 261. № 2. P. 121–133.
35. Spanggaard В., Jørgensen F., Gram L., Huss H.H. Antibiotic resistance in bacteria isolated from three freshwater fish farms and an unpolluted stream in Denmark // Aquaculture. 1993. V. 115. № 3–4. P. 195–207.
36. Srikanth K., Mahajan A., Pereira E. et al. Aluminium oxide nanoparticles induced morphological changes, cytotoxicity and oxidative stress in Chinook salmon (CHSE-214) cells // J. Appl. Toxicol. 2015. V. 35. № 10. P. 1133–1140.
37. Sugita H., Miyajima C., Deguchi Y. The vitamin B12 producing ability of the intestinal microflora of freshwater fish // Aquaculture. 1992. V. 10. P. 267–276.
38. Trpkovic A., Todorovic-Markovic B., Trajkovic V. Toxicity of pristine versus functionalized fullerenes: mechanisms of cell damage and the role of oxidative stress // Arch. Toxicol. 2012. V. 86. № 12. P. 1809–1827.
39. Wan R., Mo Y., Feng L., Chien S. et al. DNA damage caused by metal nanoparticles: involvement of oxidative stress and activation of ATM // Chem. Res. in Toxicol. 2012. V. 25. P. 1402–1411.
40. Yausheva E., Sizova E., Lebedev S. et al. Influence of zinc nanoparticles on survival of worms Eisenia fetida and taxonomic diversity of the gut microflora // Environ. Sci. Pollut. Res. 2016. V. 23. P. 13 245–13 254. doi: 10.1007/s11356-016-6474-y.
41. Zhang J., Kobert K., Flouri T., Stamatakis A. PEAR: A fast and accurate Illumina Paired-End reAd mergeR // Bioinformatics. 2014. V. 30. № 5. P. 614–620.
42. Zhang W., Sun X., Chen L. et al. Toxicological effect of joint cadmium selenium quantum dots and copper ion exposure on zebrafish // Environ. Toxicol. Chem. 2012. V. 31. № 9. P. 2117–2123.
В. П. Андреев 1, *, Ж. В. Плахотская 1
Сравнительный анализ накопления меди и кадмия макрофитами губы Чупа Кандалакшского залива Белого моря
1 Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова, 194044 Санкт-Петербург, ул. акад. Лебедева, д. 6, литера Ж
e-mail: vpandreev@mail.ru
Изучено содержание сухого вещества, меди (Cu) и кадмия (Cd) у пяти видов бурых водорослей (Fucus vesiculosus, F. serratus, Pelvetia canaliculata, Chorda filum и Saccharina latissima) и одного высшего растения (Triglochin maritimum) на шести станциях губы Чупа Кандалакшского залива Белого моря. На едином природном геохимическом фоне виды водорослей близкие по систематическому положению сильно различались по содержанию Cu и Cd. Не установлена функциональная зависимость между содержанием сухого вещества и металлов. Признаки влияния Cu на накопление Cd выявлены лишь при относительно высоком содержании Cu. Наиболее эффективными накопителями Cu и Cd были представители сем. Fucaceae (Fucus vesiculosus, F. serratus и Pelvetia canaliculata). Минимальное содержание Cd зарегистрировано в листьях Triglochin maritimum.
Ключевые слова: Cu, Cd, бурые водоросли, Fucales, Laminariales, Triglochin maritimum, сухое вещество, биоаккумуляция, тяжелые металлы.
Показать список литературы
Cписок литературы
Алыков Н.М., Шачнева Е.Ю. Влияние тяжелых токсичных металлов на окружающую среду // Наука Красноярья. 2012. № 4 (04). С. 35–48.
2. Андреев В.П., Андриянов А.И., Плахотская Ж.В. Опасность возникновения металлотоксикозов при использовании в пищу морских гидробионтов // Вестн. Рос. Военно-мед. акад. 2016. № 2 (54). С. 217– 222.
3. Бабков А.И. Краткая гидрологическая характеристика губы Чупа Белого моря // Исследования фауны морей. Л.: Изд-во Зоол. ин-та РАН, 1982. Т. 27 (35). С. 3–16.
4. Бурдин К.С., Золотухина Е.Ю. Аккумуляция тяжелых металлов морскими макроводорослями как функция содержания сухого вещества в талломах // Вестн. МГУ. 2000. № 4. С. 34–39.
5. Воскобойников Г.М. Тяжелые металлы в морских макрофитах // Исследование содержания тяжелых металлов в Авачинской губе и разработка метода биологической очистки прибрежных морских вод от техногенных загрязнений с помощью водорослей-макрофитов. Петропавловск-Камчатский: Камчатск. гос. ун-т им. Витуса Беринга, 2011. С. 23–50.
6. Капков В.И. Водоросли как биомаркеры загрязнения тяжелыми металлами морских прибрежных экосистем: Дис. … на соискание ученой степени докт. биол. наук. М., 2003. 342 с.
7. Красовская Т.М., Тикунов В.С. Оценка перспектив размещения сети фонового мониторинга в Заполярье // География и природные ресурсы. 1992. № 5. С. 37–41.
8. О состоянии среды прибрежно-шельфовых зон Баренцева, Белого и Балтийского морей в 2013 г.: Информ. бюл. СПб.: Картографическая фабрика ВСЕГЕИ, 2014. 136 с.
9. Потапов В.В., Мурадов С.В., Каплина А.М. Водоросли макрофиты как концентраторы тяжелых металлов: Матер. 1-й Всерос. науч.-практ. конф. “Экология Камчатки и устойчивое развитие региона”. Петропавловск-Камчатский: Камчатск. гос. ун-т им. Витуса Беринга, 2013. С. 230–233.
10. Andrade S., Medina M.H., Moffett J.W., Correa J.A. Cadmium-copper antagonism in seaweeds inhabiting coastal areas affected by copper mine waste disposals // Environ. Sci. and Technol. 2006. V. 40. № 14. Р. 4382–4387.
11. Bailey R.S., Stokes P.M. Evaluation of filamentous algae as biomonitors of metal accumunation on softwater lakes: а multivariateapproach // Aquat. Toxicol. and Hazard Assessment 7th symp., Milvaukee. Wis. Phyladelphia, 1985. 177 p.
А. В. Герман 1, *
Нарушение синхронного развития ооцитов леща Abramis brama L. Рыбинского водохранилища
1 Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н,Россия
e-mail: gera@ibiw.yaroslavl.ru
Изучена сезонная динамика размеров ооцитов леща. У части особей в выборке асинхронность развития ооцитов приводит к формированию второй порции икры. Динамика формирования второй порции ооцитов, сильная вариабельность их количества и доли общего числа ооцитов, резорбция после вымета первой порции икры отличаются от типичного асинхронного развития ооцитов у видов с порционным икрометанием. Повторный нерест леща в настоящее время маловероятен.
Ключевые слова: лещ, ооциты, асинхронное развитие.
Показать список литературы
Cписок литературы
Андреева А.М. Оогенез леща Abramis brama (L.) (Cyprinidae) Рыбинского водохранилища // Вопр. ихтиологии. 1983. Т. 23. Вып. 2. С. 257–261.
2. Володин В.М. Плодовитость леща Abramis brama (L.) (Cyprinidae) Рыбинского водохранилища // Вопр. ихтиологии. 1982. Т. 22. Вып. 2. С. 246–252.
3. Герман А.В. Темп полового созревания и плодовитость леща Abramis brama Волжского плеса Рыбинского водохранилища // Рыбоводство и рыб. хоз-во. 2016. № 8. С. 17–23.
4. Леви Л.А. О некоторых особенностях полового цикла леща Рыбинского водохранилища // Изв. Всесоюз. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1953. Т. 33. С. 62–71.
5. Сергеев Р.С., Пермитин Ю.Е., Ястребков А.А. О плодовитости рыб Рыбинского водохранилища // Тр. биол. ст. Борок. 1955. Вып. 2. С. 278–300.
6. Сыроватская Н.И. О типе икрометания донского леща // Докл. АН СССР. 1949. Т. 66. № 5. С. 1001–1004.
7. Халько В.В., Таликина М.Г. Сравнительная характеристика преднерестового состояния гонад репродуктивных изолятов фитофильных рыб Рыбинского водохранилища // Вопр. ихтиологии. 1993. Т. 33. № 2. С. 241–247.
