Журнал "Биология внутренних вод"
№ 2 за 2019 год
В. А. Габышев1, П. М. Царенко2, А. П. Иванова1, *
РАЗНООБРАЗИЕ И ОСОБЕННОСТИ ПРОСТРАНСТВЕННОЙ СТРУКТУРЫ ВОДОРОСЛЕВЫХ СООБЩЕСТВ ВОДОЕМОВ И ВОДОТОКОВ УСТЬЯ р. ЛЕНЫ
1Институт биологических проблем криолитозоны Сибирского отделения Российской академии наук,677980 Якутск, пр. Ленина, д. 41, Россия
2Институт ботаники им. Н.Г. Холодного Национальной академии наук Украины, 01601 Киев, МСП-1, ул. Терещенковская, д. 2, Украина
e-mail: a.p.ivanova@rambler.ru
Впервые обобщены сведения об альгофлоре водоемов и водотоков устья р. Лены. В результате ревизии полученных данных в соответствии с современными таксономическими сводками выявлен видовой список водорослей (646 видов). Установлено, что таксономическая структура водорослей характеризует исследованные водоемы как арктические ненарушенные. Проведенный анализ показал, что крупная транзитная р. Лена, протекающая в меридиональном направлении, способствует
переносу бореальной флоры в арктический регион. В зоне смешения морских и пресных вод выявлены признаки краевого эффекта. Установлено влияние морской флоры на все исследованные водные объекты низовья р. Лены (занос морских и солоновато-водных видов водорослей).
Ключевые слова: альгофлора, таксономическая структура, низовье реки Лены, дельта, взморье, болота, озера, Заполярье.
Cписок литературы
1. Балонов И.М., Кузьмина А.Е. Золотистые водоросли // Гидрохимические и гидробиологические исследования водоемов Хантайского водохранилища. Новосибирск: Наука, 1986. С. 59–70.
2. Баринова С.С., Медведева Л.А., Анисимова О.В. Биоразнообразие водорослей-индикаторов окружающей среды. Тель-Авив: Pilies Studio, 2006. 498 с.
3. Бессудова А.Ю., Сороковикова Л.М., Фирсова А.Д., Томберг И.В. Современное состояние вод нижнего участка реки Енисей // География и природные ресурсы. 2014. № 3. С. 93–99.
4. Бессудова А.Ю., Сороковикова Л.М., Букин Ю.С. и др. Гидрохимия и альгофлора термокарстовых озер арктической части бассейна нижнего Енисея // Синергия наук. 2017. № 16. С. 1175–1199.
5. Васильева И.И., Ремигайло П.А. Флора пресноводных водорослей Ленской дельты. Якутск, 1986. 24 с. Деп. в ВИНИТИ. № 2414-В86.
6. Васильева И.И., Ремигайло П.А., Габышев В.А. и др. Водоросли // Разнообразие растительного мира Якутии. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2005. С. 150–272.
7. Венглинский Д.Л., Лабутина Т.М., Огай Р.И. и др. Особенности экологии гидробионтов нижней Лены. Якутск: Изд-во Якутск. филиала СО АН СССР, 1987. 184 с.
8. Волошко Л.Н. Золотистые водоросли // Биоразнообразие экосистем Полярного Урала. Сыктывкар: Ин-т биологии Коми науч. центр УрО РАН, 2007. С. 57–69.
9. Волошко Л.Н. Современная система золотистых водорослей (Chrysophyta) // Ботан. журн. 2008. Т. 963. № 8. С. 1250–1264.
10. Волошко Л.Н., Гецен М.В., Гаврилова О.В. Разнообразие золотистых водорослей Большеземельской тундры // Морфология, систематика, онтогенез, экология и биогеография диатомовых водорослей: Тез. докл. IX школы диатомологов России и стран СНГ. Борок: Ин-т биологии внутр. вод РАН, 2005. С. 30.
11. Гецен М.В. Водоросли в экосистемах Крайнего Севера. Л.: Наука, 1985. 165 с.
12. Гецен М.В., Стенина А.С., Патова Е.Н. Альгофлора Большеземельской тундры в условиях антропогенного воздействия. Екатеринбург: Наука, 1994. 145 с.
13. Гогорев Р.М. Некоторые особенности горизонтального распределения фитопланктона в море Лаптевых (август–сентябрь 1993 г.) // Научные результаты экспедиции ЛАПЭКС-93. СПб.: Гидрометеоиздат, 1994. С. 337–352.
14. Давыдов Д.А. Cyanoprokaryota Шпицбергена, состояние изученности флоры // Ботан. журн. 2010. Т. 95. № 2. С. 169–176.
15. Дружкова Е.И., Макаревич П.Р. Исследования фитоплакнтона моря Лаптевых: история и современность // Тр. Кольск. науч. центра РАН. 2013. Вып. 1(14). С. 71–79.
16. Ермолаев В.И., Левадная Г.Д., Сафонова Т.А. Альгофлора водоемов окрестностей Таймырского стационара // Биогеоценозы Таймырской тундры и их продуктивность. Л.: Наука, 1971. С. 116–129.
17. Ермолаев В.И., Ремигайло П.А., Габышев В.А. Водоросли планктона водоемов бассейна озера Таймыр // Сиб. экол. журн. 2003. Т. 10. № 4. С. 381–392.
18. Зернова В.В., Нютик Е.М., Шевченко В.П. Вертикальные потоки микроводорослей в северной части моря Лаптевых (по данным годичной постановки седиментационной ловушки) // Океанология. 2000. Т. 40. № 6. С. 850–858.
19. Комаренко Л.Е. Планктон бассейна реки Яны. М.: Наука, 1968. 151 с.
20. Комулайнен С.Ф. Экология фитоперифитона малых рек Восточной Скандинавии. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2004. 182 с.
21. Комулайнен С.Ф., Чекрыжева Т.А., Вислянская И.Г. Альгофлора озёр и рек Карелии. Таксономический состав и экология. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2006. 81 с.
22. Крахмальный А.Ф. Динофитовые водоросли Украины (иллюстрированный определитель). Киев: Альтпресс, 2011. 444 с.
23. Летописи природы Государственного природного заповедника “Усть-Ленский”. Гл. 7. Фитопланктон. Книги 8. Тикси: Фонды ФГБУ ГПЗ “Усть-Ленский”, 1997. С. 90–114
24. Летописи природы Государственного природного заповедника “Усть-Ленский”. Гл. 7. Фитопланктон. Книги 9. Тикси: Фонды ФГБУ ГПЗ “Усть-Ленский”, 1997. С. 95–105
25. Одум Ю. Основы экологии. М.: Мир, 1975. 740 с. (Odum Eu. P. Fundamentals of ecology. Philadelphia: Saunders, 1971. 555 р.)
26. Околодков Ю.Б. Водоросли льдов моря Лаптевых // Новости системат. низш. раст. 1992. Т. 28. С. 29–34.
27. Павлюкова Т.И. Фитопланктон. Ежегодник качества поверхностных вод по гидробиологическим показателям на территории деятельности Тиксинского УГМС за 1992 г. Тикси: Тиксинское ТУГМС, 1993. С. 7–9, 23–31.
28. Павлюкова Т. И. Фитопланктон. Обзор состояния загрязнения морской среды в зоне деятельности Тиксинского УГМС по гидробиологическим показателям за 1992 г. Тикси: Тиксинское ТУГМС, 1993. С. 19–23, 56–68.
29. Патова Е.Н., Демина И.В. Водоросли других отделов // Биоразнообразие экосистем Полярного Урала. Сыктывкар: Ин-т биологии Коми науч. центра УрО РАН, 2007. С. 69–90.
30. Приймаченко А.Д., Шевелева Н.Г., Покатилова Т.Н. и др. Продукционно-гидробиологические исследования Енисея. Новосибирск: Наука, 1993. 197 с.
31. Сафонова Т.А. Водоросли горных водотоков юга Западной Сибири. Разнообразие и таксономическая структура // Сиб. экол. журн. 1997. № 1. С. 91–96.
32. Семенова Л.А. Многолетние исследования фитопланктона Нижней Оби // Вестн. экологии, лесоведения и ландшафтоведения. 2009. № 9. С. 163–173.
33. Стенина А.С. Диатомовые водоросли // Биоразнообразие экосистем Полярного Урала. Сыктывкар: Ин-т биологии Коми науч. центра УрО РАН, 2007. С. 41–56.
34. Суханова И.Н., Флинт М.В., Георгиева Е.Ю. и др. Структура сообществ фитопланктона в восточной части моря Лаптевых // Океанология. 2017. Вып. 57. № 1. С. 86–102.
35. Тимофеев С.Ф. Пелагическая экосистема моря Лаптевых // Биология и океанография Карского и Баренцова морей (по трассе Севморпути). Апатиты: Изд-во Кольск. науч. центра РАН, 1998. С. 75–88.
36. Цибульский В.Р., Валеева Э.И., Арефьев С.П. и др. Природная среда Ямала. Тюмень: Изд-во Ин-та проблем освоения Севера СО РАН, 1995. Т. 1. 168 с.
37. Algae of Ukraine: Diversity, Nomenclature, Taxonomy, Ecology and Geography // Wasser and Eviatar Nevo: V. 4: Charophyta. Ruggell: A.R.G. Gantner Verlag, 2014. 703 p.
38. Coesel P.F.M. Biogeography of desmids // Hydrobiology. 1996. V. 336. P. 41–43.
39. Hilliard D.K. Notes on the phytoplankton of Karluk Lake, Kodiak Island, Alaska // Can. Field–Natur. 1959. V. 73. P. 135–143.
40. Kristiansen J., Düwel L., Wegeberg S. Silica-scaled chrysophytes from the Taymyr Peninsula, Northern Siberia // Nova Hedwigia. 1997. V. 65. № 1. P. 337–351.
41. Okolodkov Yu.B. A checklist of dinoflagellates recorded from Russian Arctic seas // Sarsia. 1998. V. 83. P. 267–292.
42. Prescott G.M. Ecology of Alaskan freshwater algae. Introduction: general considerations // Trans. Amer. Microscop. Soc. 1963. V. 82. № 1. P. 83–98.
43. Sandgren C.D. The ecology of chrysophyte flagellates. Their growth and perennation strategies as freshwater phytoplankton // Growth and reproductive strategies of freshwater phytoplankton. USA; N.Y.: Cambridge Univ. Press, 1988. P. 9–104.
44. Schilthuizen M. Ecotone: Speciation-prone // Trends Ecol. Evol. 2000. V. 15. № 4. Р. 130–131.
45. Sheath R.G., Munawar M. Phytoplankton composition of a small subarctic lake in the Northwest Territories, Canada // Phycologia. 1974. V. 13. № 2. P. 149–161.
46. Siver P.A., Hammer J.S. Multivariate statistical analysis of the factors controlling the distribution of scaled chrysophytes // Limnol., Oceanogr. 1989. V. 34. P. 368–381.
47. Smith T.B., Wayne R.K., Girman D.J., Bruford M.W. A role for ecotones in generating rainforest biodiversity // Science. 1997. V. 276. № 5320. Р. 1855–1857.
48. Sörensen T. A method of establishing groups of equal amplitude in plant sociology based on similarity of species content // Kongel. Danke Vid. bernes Selskab. Biol. Krifter. 1948. Bd 5. № 4. P. 1–34.
Е. В. Лелекова1, *, Н. П. Савиных1
ПОБЕГООБРАЗОВАНИЕ У ГОРЦА ЗЕМНОВОДНОГО Persicaria amphibia (L.) Delarbre С ПОЗИЦИЙ МОДУЛЬНОЙ ОРГАНИЗАЦИИ
1Вятский государственный университет, 610000 Киров, ул. Московская, 36, Россия
e-mail: LelekovaEV1980@mail.ru
Проведен биоморфологический анализ трех биоморф Persicaria amphibia (L.) Delarbre, отличающихся особенностями побегообразования в разных условиях среды с позиций системного подхода и модульной организации. Побеговые системы всех биоморф формируются по симподиальной длиннопобеговой модели побегообразования и сложены однотипными элементарными модулями. Универсальные модули в различных местообитаниях представлены монокарпическими побегами возобновления, силлептическими, а также побегами с неполным циклом развития. Вариабельность побеговых системопределяется модульной организацией и демонстрирует пластичность габитуса P. amphibia.
Ключевые слова: водные растения, монокарпический побег, структурно-функциональные зоны, модульная организация, морфологическая дезинтеграция, биоморфология, биоморфа, жизненная форма.
Cписок литературы
1. Беляков Е.А. Биология некоторых представителей рода Sparganium L. (сем. Typhaceae): Автореф. дис. … канд. биол. наук. Сыктывкар, 2016. 21 с.
2. Бобров Ю.А. Жизненные формы водных трав Северо-Востока Европейской России // Arctic Environ. Res. 2017. Т. 17. № 2. С. 104–112.
3. Борисова И.В., Попова Т.А. Разнообразие функционально-зональной структуры побегов многолетних трав // Бот. журн. 1990. Т. 75. № 10. С. 1420–1425.
4. Губанов И.А., Новиков В.С., Тихомиров В.Н. Определитель высших растений средней полосы европейской части СССР. М.: Просвещение, 1981. 288 с.
5. Даровских Е.А. Типы монокарпических побегов Potamogeton lucens L. // Тр. VII Междунар. конф. по морфологии растений, посвященной памяти И. Г. и Т. И. Серебряковых. М.: Москов. пед. гос. ун-т, 2004. С. 76–77.
6. Жмылев П.Ю., Гололобова М.А. Разнообразие жизненных форм водных сосудистых растений европейской части России // Вестн. Рос. ун-та дружбы народов. Сер. Экология и безопасность жизнедеятельности. 2009. № 4. С. 5–15.
7. Жмылев П.Ю., Леднев С.А. Биоморфологическое разнообразие водных сосудистых растений ЗБС // Тр. Звенигород. биол. ст. им. С.Н. Скадовского. М.: МГУ, 2011. Т. 5. С. 80–85.
8. Жмылёв П.Ю., Леднёв С.А., Щербаков А.В. Биоморфология водных растений: проблемы и подходы к классификации жизненных форм // Леонид Васильевич Кудряшов Ad Memoriam: Сб. статей. М.: Макс ПРЕСС, 2012. С. 101–128.
9. Лапиров А.Г. Рдест гребенчатый // Биологическая флора Московской области. М.: Изд-во МГУ, 1995. Вып. 11. С. 37–55.
10. Лебедева О.А., Лапиров А.Г. Формирование побеговой системы, цветорасположение и модульная организация Batrachium trichophyllum (Chaix) Bosch // Матер. VI Всерос. шк.-конф. по водным макрофитам “Гидроботаника-2005”. Рыбинск: Дом печати, 2006. С. 294–298.
11. Лелекова Е.В. Биоморфология водных и прибрежно-водных семенных растений северо-востока Европейской России: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Пермь, 2006. 19 с.
12. Марков М.В., Ключникова Н.М., Федорин А.К. Разнообразие жизненных форм и систем репродукции в роде Polygonum S.L. в аспекте вторичного перехода к водному образу жизни // Преподаватель XXI век. 2010. Т. 2. № 1. С. 207–215.
13. Петухова Д.Ю. Биоморфология столонно-розеточных гидрофитов: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Сыктывкар, 2008. 19 с.
14. Работнов Т.А. Изучение ценотических популяций в целях выяснения стратегии жизни видов растений // Бюл. МОИП. Отд. биол. 1975. Т. 80. Вып. 2. С. 5–17.
15. Савиных Н.П. Модули у растений // Тез. докл. II Междунар. конф. по анатомии и морфологии растений. СПб.: Изд-во Ботанического института им. В. Л. Комарова РАН, 2002. С. 95–96.
16. Савиных Н.П. О жизненных формах водных растений // Гидроботаника: методология, методы: Матер. школы по гидроботанике. Рыбинск: Дом печати, 2003. С. 39–48.
17. Савиных Н.П., Шабалкина С.В., Лелекова Е.В. Биоморфологические адаптации гелофитов // Сиб. экол. журн. 2015. Т. 22. № 5. С. 671–681.
18. Серебряков И.Г. Структура и ритм в жизни цветковых растений. Ч. 2. // Бюл. МОИП. Отд. биол. 1949. Т. 54. Вып. 2. С. 47–62.
19. Серебряков И.Г. Морфология вегетативных органов высших растений. М.: Сов. наука, 1952. 390 с.
20. Серебряков И.Г. О методах изучения ритмики сезонного развития растений в геоботанических стационарах // Докл. совещ. по стационарным геобот. исследованиям. Л., 1954. С. 145–159.
21. Серебряков И.Г. Жизненные формы высших растений и их изучение // Полевая геоботаника. М.; Л.: Наука, 1964. Т. 3. С. 148–208.
22. Серебрякова Т.И., Воронин Н.С., Еленевский А.Г. и др. Ботаника с основами фитоценологии. Анатомия и морфология растений. М.: Академкнига, 2006. 543 с.
23. Современные подходы к описанию структуры растений. Киров: ООО “Лобань”, 2008. 355 с.
24. Ценопопуляции растений: Основные понятия и структура. М.: Наука, 1976. 214 с.
25. Чернова А.М. Сезонная динамика продуктивности кубышки желтой (Nuphar lutea, Nymphaeaceae) в условиях малых рек верхнего Поволжья: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Борок, 2013. 23 с.
26. Шабалкина С.В., Савиных Н.П. О поливариантности развития растений в местах с переменным обводнением // Биоморфологические исследования на современном этапе: Матер. конф. с международным участием “Современные проблемы биоморфологии”. Владивосток: Мор. гос. ун-т, 2017. С. 219–221.
27. Шафранова Л.М., Гатцук Л.Е. Растение как пространственно временная метамерная (модульная) система // Успехи экологической морфологии и ее влияние на смежные науки: Межвузовский сб. науч. трудов. М., 1994. С. 6–7.
28. Raunkiaer C. The life form of plants and statistical plant geography. Oxford: Clarendon Press, 1934. 632 p.
29. Santamaria L., Garcia A.I.L. Latitudinal variation in tuber production in an aquatic pseudo-annual plant, Potamogeton pectinatus // Aquat. Bot. 2004. V. 79. P. 51–64.
30. Troll W. Die Infloreszenzen. Jena: Fischer Verlag, 1964. Bd 1. 615 s.
Ю. А. Хроленко1, *, М. С. Яцунская1, Т. Ю. Горпенченко1, Т. А. Безделева2
PАЗВИТИЕ Nelumbo komarovii Grossh. (Nelumbonaceae) ИЗ СЕМЯН В КУЛЬТУРЕ
1ФНЦ Биоразнообразия Дальневосточного отделения Российской академии наук,
690022 Владивосток, пр. 100-летия Владивостока, д. 159, Россия
2Ботанический сад-институт Дальневосточного отделения Российской академии наук,
690024 Владивосток, ул. Маковского, д. 142, Россия
e-mail: khrolenko@biosoil.ru
Получены сведения о развитии Nelumbo komarovii Grossh. из семян при выращивании в культуре. Выделено пять фаз морфогенеза N. komarovii: фаза семени, первичного (главного) побега, системы “главного побега” и побегов закрепления, куртины, клубневидной структуры. Фазы морфогенеза соотнесены с периодами онтогенеза и возрастными состояниями особей.
Ключевые слова: Nelumbo komarovii, гидрофит, онтогенез, морфогенез, искусственные условия.
Cписок литературы
Батыгина Т.Б. Биология развития растений. Симфония жизни. СПб.: Изд-во ДЕАН, 2014. 764 с.
2. Безделев А.Б., Безделева Т.А. Жизненные формы семенных растений российского Дальнего Востока. Владивосток: Дальнаука, 2006. 296 с.
3. Бутюков С.А. Лотос Комарова в Приморском крае (распространение и охрана) // Актуальные вопросы охраны природы на Дальнем Востоке. Владивосток: Дальневост. науч. центр АН СССР, 1978. С. 56–59.
4. Васильева Н.В. Особенности прорастания семян частухи подорожниковой (Alisma plantago-aquatica L.) в лабораторных условиях // Биология внутр. вод. 2001. № 1. С. 46–49.
5. Грушвицкий И.В. Подземное прорастание и функции семядолей // Бот. журн. 1963. Т. 48. № 6. С. 906–915.
6. Дулин А.Ф., Цыренова Д.Ю. Исследование фенологии и семенной продуктивности лотоса Комарова Nelumbo komarovii Grossh. в популяции вида вблизи Хабаровска (Дальний Восток, Россия) // Уч. зап. ЗабГУ. 2017. Т. 12. № 1. С. 13–19.
7. Жмылев П.Ю., Алексеев Ю.Е., Карпухина Е.А., Баландин С.А. Биоморфология растений: иллюстрированный словарь. Уч. пособие. М.: Гриф и Ко, 2002. 240 с.
8. Жукова Л.А. Популяционная жизнь луговых растений. Йошкар-Ола: Изд-во РИИК Ланар, 1995. 224 с.
9. Зиновьев А.С., Гуков Г.В. Выращивание лотоса Комарова (Nelumbo komarovii Grossh.) в искусственных условиях // Изв. Иркутск. гос. ун-та. Сер. Биология. Экология. 2011. Т. 4. № 2. С. 32–37.
10. Красная книга Приморского края: Растения. Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды растений и грибов. Владивосток: АВК “Апельсин”, 2008. 688 с.
11. Красная книга Хабаровского края. Редкие и находящиеся под угрозой исчезновения виды растений и животных. Хабаровск: Приамурские ведомости, 2008. 632 с.
12. Кудрин С.Г. Влияние наводнения 2013 г. на популяции Nelumbo komarovii (Nelumbonaceae) в Архаринском районе Амурской области // Бот. журн. 2015. Т. 100. № 10. С. 1091–1099.
13. Лапиров А.Г., Беляков Е.А. Морфология вегетативной и генеративной сферы Sparganium microcarpum (Neum.) Raunk. // Ярослав. пед. вестн. 2011. Т. 3. № 1. С. 133–138.
14. Лебедева О.А., Лапиров А.Г. К биологии Batrachium trichophyllum (Chaix) Bosch: Особенности прорастания семян и начальных этапов развития проростка в лабораторных условиях // Биология внутр. вод. 2000. № 4. С. 14–20.
15. Мурдахаев Ю.М. Некоторые вопросы биологии и морфологии лотосов, интродуцированных Ботаническим садом АН УзССР // Интродукция и акклиматизация растений. Ташкент: ФАН, 1973. Вып. 10. С. 95–99.
16. Пшенникова Л.М. Водные растения российского Дальнего Востока. Владивосток: Дальнаука, 2005. 106 с.
17. Работнов Т.А. Жизненный цикл многолетних травянистых растений в луговых ценозах // Тр. БИН АН СССР. Сер. 3. Геоботаника. М.; Л.: Наука, 1950. 176 с.
18. Савиных Н.П. Онтогенез и его особенности у водных растений // Гидроботаника: методология, методы: материалы школы по гидроботанике. Рыбинск: ОАО Рыбинский Дом печати, 2003. С. 98–103.
19. Серебряков И.Г. Экологическая морфология растений. М.: Высш. шк., 1962. 378 с.
20. Серебрякова Т.И. Об основных “архитектурных моделях” травянистых многолетников и модусах их преобразования // Бюл. МОИП. Отд. биол. 1977. Т. 82. Вып. 5. С. 112–128.
21. Снигиревская Н.С. Материалы к морфологии и систематике рода Nelumbo Adans. // Флора и систематика высших растений. Сер. 1. Вып. 13. М.; Л.: Наука, 1964. С. 104–172.
22. Сравнительная эмбриология цветковых растений. 1. Winteraceae – Juglandaceae. Л.: Наука, 1981. С. 116–120.
23. Тахтаджян А.Л. Происхождение покрытосеменных растений. М.: Сов. наука, 1954. 96 с.
24. Титова Г.Е. О природе псевдомонокотилии у цветковых растений // Бот. журн. 2000. Т. 85. № 7. С. 76–91.
25. Уранов А.А. Возрастной спектр фитоценопопуляций как функция времени и энергетических волновых процессов // Науч. докл. высш. шк. Биол. науки. М.: Наука, 1975. № 2. С. 7–34.
26. Хохряков А.П. Изменение образа жизни растений в онтогенезе // Журн. общ. биол. 1978. Т. 39. № 3. С. 357–372.
27. Хроленко Ю.А., Бурундукова О.Л., Безделева Т.А. и др. Возрастные этапы в онтогенезе Panax ginseng C.A. Mey в условиях плантации // Изв. РАН. Сер. биол. 2007. № 2. С. 157–162.
28. Хроленко Ю.А., Журавлев Ю.Н. Возрастная структура природных популяций женьшеня настоящего // Вестн. Дальневост. отд. РАН. 2008. № 4. С. 97–102.
29. Lyon H.L. Preliminary note on the embryogeny of Nelumbo // Science, New Series. 1901. V. 13. № 325. P. 470.
30. Masuda J., Urakawa T., Ozaki Y., Okubo H. Short photoperiod induces dormancy in lotus (Nelumbo nucifera) // Ann. Bot. 2006. V. 97. P. 39–45.
31. Masuda J., Yoshimizu S., Ozaki Y., Okubo H. Rhythmic response of rhizome growth to light-break in lotus (Nelumbo nucifera) // J. Fac. Agr. Kyushu Univ. 2007. V. 52. P. 35–38.
32. Nakonechnaya O.V., Gorpenchenko T.Yu., Voronkova N.M. et al. Embryo structure, seed traits, and productivity of relict vine Aristolochia contorta (Aristolochiaceae) // Flora. 2013. V. 208. P. 293–297.
33. Shen-Miller J., Schopf J.W., Harbottle G. et al. Long-living lotus: germination and soil γ-irradiation of centuries-old fruits, and cultivation, growth, and phenotypic abnormalities of offspring // Amer. J. Botan. 2002. V. 89. № 2. P. 236–247.
В. Л. Вершинин1, 2, *, А. Г. Трофимов1, 2, Е. В. Перехрест2, Д. Л. Берзин1
ИЗМЕНЧИВОСТЬ ОССИФИКАЦИИ КРАНИАЛЬНОГО СКЕЛЕТА СЕГОЛЕТКОВ Lissotriton vulgaris (L.) (Саudata) В ГРАДИЕНТЕ УРБАНИЗАЦИИ
1Институт экологии растений и животных УрО РАН, ул. 8 Марта, д. 202, корп. 3, Екатеринбург, 620144 Россия
2Уральский федеральный университет им. первого Президента России Б.Н. Ельцина,
ул. Мира, д. 19, Екатеринбург, 620002 Россия
e-mail: vol_de_mar@list.ru
Рассмотрено влияние экологических условий на специфику процесса оссификации черепа сеголетков обыкновенного тритона Lissotriton vulgaris (Linnaeus, 1758) в зависимости от уровня урбанизации. Установлено, что степень смыкания срединного шва черепа сеголетков зависит от уровня минерализации поверхностных вод, в которых протекает развитие тритона. Аккумулирующий характер урбоценозов способствует интенсификации минерального обмена из-за обилия кальцефильных животных в местах обитания тритона и преобладания их в пищевом рационе сеголетков, он же служит сопутствующим фактором, ускоряющим формирование краниальных окостенений у животных
в популяциях из селитебной части городской агломерации.
Ключевые слова: обыкновенный тритон, краниальный скелет, урбанизация, минерализация.
Cписок литературы
Безуглая Э.Ю., Расторгуева Г.П., Смирнова И.В. Чем дышит промышленный город? Л.: Гидрометеоиздат, 1991. 255 с.
2. Берзин Д.Л., Вершинин В.Л. Особенности трофологии сеголеток обыкновенного тритона (Lissotriton vulgaris L.) на урбанизированных территориях // Вестн. Удмуртск. гос. ун-та. Сер. биол. Науки о Земле. 2016. Т. 26. Вып. 2. С. 114–120.
3. Вершинин В.Л. Амфибии и рептилии Урала. Екатеринбург: УрО РАН, 2007. 261 с.
4. Гаранин В.И., Попов А.Ю. Материалы по экологии тритонов Раифского леса (Татарская АССР) // Изв. Казан. фил. АН СССР. Сер. биол. 1958. № 6. С. 89–94.
5. Лебедкина Н.С. Развитие коррелятивных систем в филогенезе и онтогенезе // Морфология и эволюция животных. М.: Наука, 1986. С. 95–101.
6. Лиознер Л.Д. Тритоны Triturus vulgaris, Triturus cristatus // Объекты биологии развития. М.: Наука, 1975. С. 324–341.
7. Матей В.Е. Жабры пресноводных костистых рыб: морфофункциональная организация, адаптация, эволюция. М.: Наука, 1996. С. 1–286.
8. Медведева И.М. Орган обоняния амфибий и его филогенетическое значение. Л.: Наука, 1975. 260 с.
9. Меркулова К.М. Роль тиреоидных гормонов в регуляции онтогенеза черепа испанского тритона (Pleurodeles walti, Salamandridae, Urodela) // Вопросы герпетологии: Матер. IV съезда герпетологического общества им. А.М. Никольского. СПб.: Русская коллекция, 2011. С. 172–177.
10. Плисс Г.Б., Худолей В.В. Онкогенез и канцерогенные факторы у низших позвоночных и беспозвоночных животных // Экологическое прогнозирование. М.: Наука, 1979. С. 167–185.
11. Рузский М. Результаты исследования земноводных и пресмыкающихся в Казанской губернии и местностях с нею смежных // (Предварительный отчет Казанского общества естествознания). Приложения к протоколам заседаний общества естествоиспытателей при Императорском Казанском университете. 1894. № 139. С. 1–8.
12. Русанов В.В. Влияние ультрафиолетовых лучей на рост и обмен кальция у мальков карпа // Изв. ГосНИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. Л., 1974. Т. 92. С. 141–144.
13. Шарлеманъ Э.В. Заметки о фауне пресмыкающихся и земноводныхъ окрестностей Кiева // Материалы къ познанiю фауны юго-зап. Россiи. Кiев, 1917. Т. 2. С. 1–17.
14. Andrzejewski R., Babinska–Werka J., Gliwicz J., Goszczynski J. Synurbization processes in population of Apodemus agrarius. I. Characteristics of populations in an urbanization gradient // Acta Theriol. 1978. V. 23. P. 341–358.
15. Baldwin G.F., Bentley P.J. Calcium Metabolism in Bullfrog Tadpoles (Rana catesbeiana) // J. Exper. Biol. 1980. V. 88. P. 357–366.
16. Banks B., Laverick G. Garden ponds as amphibian breeding sites in a conurbation in the north east of England (Sunderland Tyne and Weare) // Herpetol. J. 1986. V. 1. № 2. P. 44–50.
17. Beebee T.J.C. Observation concerning the decline of the British amphibia // Biol. Conserv. 1973. V. 5. № 1. P. 20–24.
18. Berg A. Studies on the metabolism of calcium and strontium in fresh-water fish. II. Relative contribution of direct and intestinal absorption in growth conditions // Mem. Ist. ital. Idrobiol. 1970. V. 26. P. 241–255.
19. Hanken J., Hall B.K. Variation and timing of the cranial ossification sequence of the Oriental fire-bellied toad, Bombina orientalis (Amphibia, Discoglossidae) // J. Morphol. 1984. V. 182. P. 245–255.
20. Hanken J., Hall B.K. Skull development during anuran metamorphosis. II. Role of thyroid hormone in osteogenesis // Anat. Embryol. 1988. V. 178. P. 219–227.
21. Gaudin A.J. The sequence of cranial ossification in the California toad, Bufo boreas (Amphibia, Anura, Bufonidae) // J. Herpetol. 1978. V. 12. P. 309–318.
22. Gilbert S.F. Ecological Developmental Biology: Developmental Biology Meets the Real World // Develop. Biol. 2001. V. 233. P. 1–12.
23. Gomez-Mestre I., Saccoccio V.L., Iijima T. et al. The shape of things to come: linking developmental plasticity to post-metamorphic morphology in anurans // J. Evol. Biol. 2010. V. 23. P. 1364–1373.
24. Rose C.S. An endocrine-based model for developmental and morphogenetic diversification in metamorphic and paedomorphic urodeles // J. Zool. 1996. V. 239. P. 253–284.
25. Rose C.S. The developmental morphology of salamander skulls // Amphibian Biology. V. 5: Osteology, Surrey Beatty and Sons, Australia: Heatwole, H. & Davies, 2003. P. 1684–1781.
26. Smirnov S.V., Vassilieva A.B. Bony Skull of the Smooth Newt Triturus vulgaris (Amphibia, Urodela: Salamandridae) and the Role of Thyroid Hormones in Its Ossification // Dokl. Biol. Sci. 2003. V. 388. P. 73–75.
27. Smirnov S.V., Vassilieva A.B. Skeletal and dental ontogeny in the smooth newt, Triturus vulgaris (Urodela: Salamandridae): role of thyroid hormone in its regulation // Rus. J. Herpetol. 2003. V. 10. № 2. P. 93–110.
28. Trueb L., Hanken J. Skeletal development in Xenopus laevis (Anura: Pipidae) // J. Morphol. 1992. V. 214. P. 1–41.
29. Vershinin V.L. Features of amphibian populations of an industrial сity // Urban ecological studies in Central and Eastern Europe. Warszawa: Wydawinstwo Polskej Akademii nauk, 1990. P. 112–121.
30. Vershinin V.L., Vershinina S.D., Berzin D.L. et al. Long-term observation of amphibian populations inhabiting urban and forested areas in Yekaterinburg, Russia // Scientific Data. 2015. P. 1–13. doi: 10.1038/sdata.2015.18.
31. Wassersug R.J. A Procedure for Differential Staining of Cartilage and Bone in Whole Formalin–Fixed Vertebrates // Stain Technol. 1976. V. 51. № 2. P. 131–134.
32. Wright K. Important clinical aspects of amphibian physiology // Proceedings of the North American veterinary conference, January 7–11, 2006, Orlando, Florida. V. 20. Small Animal Edition, 2006. P. 1686–1688.
Н. М. Минеева1, *, Н. Ю. Метелёва1
СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ПРОДУКТИВНОСТИ ФИТОПЛАНКТОНА И ЭПИФИТОНА ВОДОХРАНИЛИЩ ВЕРХНЕЙ ВОЛГИ
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-он, Россия
e-mail: mineeva@ibiw.yaroslavl.ru
По материалам полевых наблюдений 2005 и 2013 гг. приведены сравнительные данные о продуктивности фитопланктона и эпифитона Иваньковского и Угличского водохранилищ (Верхняя Волга). В летний период разных по температурным условиям лет среднее содержание хлорофилла в планктоне изменялось от 7.6 Ѓ} 1.6 до 39.1 Ѓ} 0.7 мкг/л, в эпифитоне от 6.6 Ѓ} 2.8 до 28.4 Ѓ} 4.2 мг/м2 субстрата, суточная первичная продукция соответственно была 0.55–1.64 мг С/л и 0.10–0.68 г С/м2 субстрата. В развитии двух сообществ выявлены межгодовые изменения разной направленности. При более
интенсивном прогреве воды в 2013 г. содержание хлорофилла а в планктоне обоих водохранилищ увеличивалось в 1.5–2.5 раза по сравнению с 2005 г., а в эпифитоне снижалось в 2–3.5 раза. В Иваньковском водохранилище при наличии обширных мелководных участков доля фитопланктона пелагиали в общей биомассе и суточной первичной продукции водорослей (66.6–78.6%) была ниже, чем в Угличском водохранилище (86.5–97.0%), а доля эпифитона (22.2 и 14.2% в 2005 г., 8.2 и 4.6% в 2013 г.) в 1.8–5.1 раза выше.
Ключевые слова: фитопланктон, эпифитон, фотосинтетические пигменты, первичная продукция, Иваньковское и Угличское водохранилища.
Cписок литературы
Второй оценочный доклад Росгидромета об изменениях климата и их последствиях на территории Российской Федерации. Общее резюме. М.: Росгидромет, 2014. 61 с.
2. Евстафьев В.К., Бондаренко Н.А. Природа явления “мелозирных” лет в оз. Байкал // Гидробиол. журн. 2002. Т. 38. № 1. С. 3–12.
3. Елизарова В.А. Содержание пигментов фитопланктона в Иваньковском водохранилище по наблюдениям 1970 г. // Биология, морфология и систематика организмов. Л.: Наука, 1976. С. 82–90.
4. Жеребцов Г.А., Коваленко В.А. Влияние солнечной активности на погодно-климатические характеристики тропосферы // Солнечно-земная физика. 2012. Вып. 21. С. 98–106.
5. Иваньковское водохранилище и его жизнь. Л.: Наука, 1978. 304 с.
6. Лаврова И.В. Влияние Северо-Атлантического колебания в океане на формирование летних условий погоды в Европе: Автореф. дис. … канд. геогр. наук. СПб., 2009. 20 с.
7. Лазарева В.И., Копылов А.И., Пырина И.Л. и др. Отклик планктона Рыбинского водохранилища на динамику Северо-Атлантического Колебания (North Atlantic Oscillation, NAO) // Современные проблемы водохранилищ и их водосборов: Тр. Междунар. науч. практ. конф. Пермь: Перм. гос. ун-т, 2013. Т. 3. С. 145–150.
8. Литвинов А.С., Законнова А.В. Многолетние изменения воднобалансовых характеристик Рыбинского водохранилища // Тр. Ин-та биологии внутр. вод им. И.Д. Папанина РАН. Вып. 75 (78). 2016. С. 23–29.
9. Литвинов А.С., Пырина И.Л., Законнова А.В. Термический режим и продуктивность фитопланктона Рыбинского водохранилища в условиях изменения климата // Вода: химия и экология. 2014. № 12. С. 108–112.
10. Ляшенко О.А. Фитопланктон и содержание хлорофилла а в Шошинском плесе Иваньковского водохранилища // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1996. № 99. С. 3–10.
11. Ляшенко О.А. Фитопланктон и содержание хлорофилла как показатели трофического статуса Иваньковского водохранилища // Вод. ресурсы. 1999. Т. 26. № 1. С. 81–89.
12. Ляшенко О.А. Сезонная динамика и многолетние изменения фитопланктона и содержания хлорофилла в Угличском водохранилище // Биология внутр. вод. 2000. № 3. С. 52–61.
13. Ляшенко О.А., Минеева Н.М., Метелева Н.Ю., Соловьева В.В. Пигментные характеристики фитопланктона Угличского водохранилища // Биология внутр. вод. 2001. № 3. С. 77–84.
14. Максимов А.А., Березина Н.А., Голубков С.М., Умнова Л.П. Арктическое колебание и изменения в экосистеме северного озера // Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: Матер. XXVIII Междунар. конф. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2009. С. 343–348.
15. Метелева Н.Ю. Содержание пигментов фитопланктона в Угличском водохранилище // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1990. № 88. С. 8–13.
16. Метелева Н.Ю. Содержание хлорофилла а в фитопланктоне Иваньковского водохранилища // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1994. № 97. С. 12–16.
17. Минеева Н.М. Растительные пигменты в воде волжских водохранилищ. М.: Наука, 2004. 158 с.
18. Минеева Н.М. Содержание фотосинтетических пигментов в водохранилищах Верхней Волги (1994–2003 гг.) // Биология внутр. вод. 2006. № 1. С. 31–40.
19. Минеева Н.М. Сезонная и межгодовая динамика хлорофилла в планктоне Рыбинского водохранилища по данным флуоресцентной диагностики // Тр. Ин-та биологии внутр. вод им. И.Д. Папанина РАН. Вып. 76 (78). 2016. С. 75–93.
20. Нестеров Е.С. Североатлантическое колебание: атмосфера и океан. М.: Триада, лтд, 2013. 144 с.
21. Пырина И.Л. Первичная продукция фитопланктона в Иваньковском, Рыбинском и Куйбышевском водохранилищах в зависимости от некоторых факторов // Продуцирование и круговорот органического вещества во внутренних водоемах. М.; Л.: Наука, 1966. С. 249–270.
22. Пырина И.Л. Многолетняя динамика и цикличность межгодовых колебаний содержания хлорофилла в Рыбинском водохранилище // Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды: Матер. междунар. науч. конф. Минск: Белорус. гос. ун-т, 2000. С. 375–380.
23. Пырина И.Л., Литвинов А.С., Кучай Л.А. и др. Многолетние изменения первичной продукции фитопланктона в Рыбинском водохранилище в связи с действием климатических факторов // Состояние и проблемы продукционной гидробиологии. М.: КМК, 2006. С. 38–46.
24. Пырина И.Л., Сигарева Л.Е. Содержание пигментов фитопланктона в Иваньковском водохранилище в 1973–1974 гг. // Биология низших организмов. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод, 1978. С. 3–17.
25. Тарасенко Л.В., Луценко М.А. Фитоценозы мелководий Иваньковского водохранилища // Биологическая продуктивность и качество воды Волги и ее водохранилищ. М.: Наука, 1984. С. 161–166.
26. Трифонова И.С., Макарцева Е.С., Чеботарев Е.Н. Многолетние изменения планктонных сообществ мезотрофного озера (оз. Красное, Карельский перешеек) // Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2009. С. 570–573.
27. Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Ярослав. гос. тех. ун-т, 2001. 427 с.
28. Adrian R., O’Reilly C.M., Zagareze H. et al. Lakes as sentinels of climate change // Limnol., Oceanogr. 2009. V. 54. № 6. Pt. 2. P. 2283–2297.
29. Bertani I., Primicerio R., Rossetti G. Extreme climatic event triggers a lake regime shift that propagates across multiple trophic levels // Ecosystems. 2016. V. 19. Is 1. P. 16–31.
30. Butterwick C., Heaney S.I., Talling J.F. Diversity in the influence of temperature on the growth rates of freshwater algae, and its ecological relevance // Freshwater Biol. 2005. V. 50. № 2. P. 291–300.
31. George D.G., Maberly S.C., Hewitt D.P. The influence of the North Atlantic Oscillation on the physical, chemical and biological characteristics of four lakes in the English Lake District // Freshwater Biol. 2004. V. 49. P. 760–774.
32. Jeffrey S.W., Humphrey G.F. New spectrophotometric equations for determining chlorophylls a, b, c1 and c2 in higher plants, algae and natural phytoplankton // Biochem. Physiol. Pflanz. 1975. Bd 167. S. 191–194.
33. Jeppesen E., Brucet S., Naselli-Flores L., et al. Ecological impacts of global warming and water abstraction on lakes and reservoirs due to changes in water level and related changes in salinity // Hydrobiologia. 2015. V. 750. № 1. P. 201–227.
34. Jeppesen E., Sondergaard M., Jensen J. P., et al. Lake responses to reduced nutrient loading – an analysis of contemporary long-term data from 35 case studies // Freshwater Biol. 2005. V. 50. № 9. P. 1747–1771.
35. Katara I., Illian J., Pierce G.J., et al. Atmospheric forcing on chlorophyll concentration in the Mediterranean // Hydrobiologia. 2008. V. 612. № 1. P. 33–48.
36. Lorenzen C.J. Determination of chlorophyll and pheopigments: shectrophotometric equations // Limnol., Oceanogr. 1967. V. 12. № 2. P. 343–346.
37. Mineeva N.M., Litvinov A.S. Long-term variation of chlorophyll content in Rybinsk reservoir (Russia) in relation to its hydrological regime // Management of Lakes and Reservoirs During Global Climate Change. Dordrecht; Boston; L.: Kluwer Acad. Publ., 1998. P. 159–183.
38. Naselli-Flores L., Barone R. Fight on plankton or phytoplankton shape and size as adaptive tools to get ahead in the struggle for life // Cryptogamie Algol. 2011. V. 32. № 2. P. 157–204.
39. Ottersen G., Planque B., Belgrano A. et al. Ecological effects of the North Atlantic Oscillation // Oecologia. 2001. V. 128. P. 1–14.
40. Paerl H.W., Paul V. J. Climate change: Links to global expansion of harmful cyanobacteria // Water Res. 2012. V. 46. P. 1349 –1363.
41. Parsons T.R., Strickland J.D.H. Discussion on spectrophotometric determination of marine-plant pigments with revised equations for ascertaining chlorophylls and carotenoids // J. Mar. Res. 1963. V. 21. № 3. P. 155–168.
42. Poddubnyi S.A., Papchenkov V.G., Chemeris E.V, Bobrov A.A. Overgrowing of protected shallow waters in the Upper Volga reservoirs in relation // Inland Water Biol. 2017. vol 10. no 1. pp.64–72.
43. SCOR-UNESCO Working Group 17. Determination of photosynthetic pigments in sea water // Monographs on Oceanographic Methodology. Montreux: UNESCO, 1966. P. 9–18.
44. Tan X. Effects of temperature on recruitment and phytoplankton community composition // Afr. J. Microbiol. Res. 2011. V. 5. № 32. P. 5896–5901.
45. Winder M., Hunter D.A. Temporal organization of phytoplankton communities linked to physical forcing // Oecologia. 2008. V. 156. P. 179–192.
Н. А. Исакова1, *, Е. И. Вейсберг1
ФАКТОРЫ, ОПРЕДЕЛЯЮЩИЕ ОРГАНИЗАЦИЮ ПЕРИФИТОННОГО СООБЩЕСТВА Bacillariophyta
1Ильменский государственный заповедник, Миасс, Челябинская обл., 456317 Россия
e-mail: isakova_70@mail.ru
В предгорном оз. Большое Миассово (Южный Урал) исследованы состав и структура перифитонного сообщества Bacillariophyta на четырех широко распространенных видах погруженных гидрофитов – Myriophyllum sibirica Kom., Potamogeton lucens L., P. perfoliatus L. и Stratiotes aloides L. Установлено, что основные факторы, определяющие его организацию, – характер береговой линии и изменения физико-химических параметров озерной воды, вызванные процессами естественного эвтрофирования и дистрофирования.
Ключевые слова: перифитон, Bacillariophyta, погруженные гидрофиты, состав и структура сообществ, факторы среды.
Cписок литературы
1. Андреева М.А. Озера Среднего и Южного Урала. Челябинск: Южно-Уральское кн. изд-во, 1973. 269 с.
2. Бегун А.А. Биоиндикация состояния морской среды по диатомовым водорослям эпифитона макрофитов (залив Петра Великого, Японское море) // Изв. ТИНРО. 2012. Т. 169. С. 1–17.
3. Бегун А.А., Рябушко Л.И., Звягинцев А.Ю. Влияние поверхности субстрата и времени его экспозиции в море на количественное развитие диатомовых водорослей перифитона // Изв. ТИНРО. 2010. Т. 163. С. 240–263.
4. Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и современные). Л.: Наука, 1974. Т. 1. 403 с.
5. Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и современные). Л.: Наука, 1988. Т. 2. Вып. 1. 116 с.
6. Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и современные). СПб.: Наука, 1992. Т. 2. Вып. 2. 125 с.
7. Комулайнен С.Ф. Методические рекомендации по изучению фитоперифитона в малых реках. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2003. 43 с.
8. Ландшафтный фактор в формировании гидрологии озер Южного Урала. Л.: Наука, 1978. 248 с.
9. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
10. Неронов В.В. Развитие концепции экотонов и их роль в сохранении биологического разнообразия // Успехи соврем. биологии. 2001. Т. 121. № 4. С. 323–336.
11. Общие закономерности возникновения и развитиия озер. Методы изучения истории озер (Серия: История озер СССР). Л.: Наука, 1986. 254 с.
12. Оксиюк О.П., Давыдов О.А. Методологические принципы оценки состояния водных объектов по микрофитобентосу // Гидробиол. журн. 2006. Т. 42. № 2. С. 98–112.
13. Песенко Ю.А. Принципы и методы количественного анализа в фаунистических исследованиях. М.: Наука, 1982. 282 с.
14. Рогозин А.Г. Особенности структурной организации зоопланктонного сообщества в озерах разного трофического статуса. Видовые популяции // Экология. 2000. № 6. С. 438–443.
15. Экология озера Большое Миассово. Миасс: ИГЗ УрО РАН, 2000. 318 с.
16. Cattaneo A., Galanti G., Gentinetta S., Romo S. Epiphytic algae and macroinvertebrates on submerged and floating-leaved macrophytes in an Italian lake // Freshwater Biol. 1998. № 39. P. 725–740.
17. Gosz J.R. Landscape boundaries consequence for biotic diversity landscape flows // Ecological studies. N.Y.: Springer-Verlag, 1992. P. 1–55.
18. Gross E.M., Feldbaum C., Graf A. Epiphyte biomass and elemental composition on submersed macrophytes in shallow eutrophic lakes // Hydrobiologia. 2003. V. 506. № 1. P. 559–565.
19. Hutchinson G.E. A Treatise on Limnology // Limnological botany. N.Y.: Wiley and Sons, 1975. V. 3. P. 1–660.
20. Khursevich G.K., Kociolek J.P. A preliminary worldwide inventory of the extinct freshwater fossil diatoms from the orders Thalassiosirales, Stephanodiscales, Paraliales, Aulacoseirales, Melosirales, Coscinodiscales and Biddulphiales // Nova Hedwigia. 2012. Beih. 141. P. 315–364.
21. Kiss M.K., Lakatos G., Borics G., Gidó Z., Deák C. Littoral macrophyte-periphyton complexes in two Hungarian shallow waters // Hydrobiologia. 2003. V. 506. P. 541–548.
22. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 1: Naviculaceae // Süsswasserflora von Mitelleuropa. Jena: Gustav Fischer Verlag, 1986. Bd 2. 876 s.
23. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 2: Bacillariaceae, Epithemiaceae, Surirellaceae // Süsswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart; N.Y.: Gustav Fischer Verlag, 1988. Bd 2. 596 s.
24. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 3: Centrales, Fragilariaceae, Eunotiaceae // Süsswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart; Jena: Gustav Fischer Verlag, 1991a. Bd 2. 576 s.
25. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 4: Achnanthaceae, Kritische Ergänzungen zu Navicula (Lineolatae) and Gomphonema // Süsswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart; Jena: Gustav Fischer Verlag, 1991b. Bd 2. 436 s.
26. Lange-Bertalot H. Diatoms of Europe. Navicula sensu stricto, 10 genera separated from Navicula sensu lato Frustulia. 2001. V. 2. 526 p.
27. Laugaste R., Reunanen M. The composition and density of epiphyton on some macrophyte species in the partly meromictic Lake Verevi // Hydrobiologia. 2005. V. 547. P. 137–150.
28. Liboriussen L., Jeppesen E. Structure, biomass, production and depth distribution of periphyton on artificial substratum in shallow lakes with contrasting nutrient concentrations // Freshwater Biol. 2006. V. 51. P. 95–109.
29. Messyasz B., Kuczynska-Kippen N. Periphytic algal communities: a comparison of Typha angustifolia L. and Chara tomentosa L. beds in three shallow lakes (West Poland) // Poland J. Ecol. 2006. № 54. P. 15–27.
30. Pip E., Robinson G.G.C. A comparison of algal periphyton composition on eleven species of submerged macrophytes // Hydrobiological bulletin. 1981. № 18. P. 109–118.
31. Round F.E., Crawford R.M., Mann D.G. The Diatoms. Biology and Morphology of the Genera. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1990. 747 p.
Д. Ф. Афанасьев1, *, З. А. Мирзоян1, М. Л. Мартынюк1, Д. В. Хренкин1, Н. А. Шляхова1, М. В. Бычкова1, С. В. Жукова1
РАННЕЛЕТНИЙ ЗООПЛАНКТОН АЗОВСКОГО МОРЯ В ПЕРИОД ОСОЛОНЕНИЯ
1Азово-Черноморский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства
и океанографии, 344002 Ростов-на-Дону, ул. Береговая, д. 21в, Россия
e-mail: dafanas@mail.ru
Приведены данные по таксономическому составу и структуре зоопланктона Азовского моря и Таганрогского залива в период с 2005 по 2015 гг. Выделены основные сообщества планктона, проанализированы изменения таксономического разнообразия и структуры сообществ планктона, произошедшие в результате осолонения моря. Показано, что в раннелетнем зоопланктоне таксономическое разнообразие снизилось в 1.4–1.5 раза. Увеличение солености способствовало вытеснению пресноводного комплекса видов и распространению морской копеподы Acartia tonsa.
Ключевые слова: Азовское море, изменение солености, зоопланктон, пространственное распределение, многолетняя динамика.
Cписок литературы
Абакумов В.А. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений. Л.: Гидрометеоиздат, 1983. 240 с.
2. Алдакимова А.Я., Некрасова М.Я., Студеникина Е.И. Гидробиологический режим Азовского моря и его изменения в связи с преобразованием речного стока // Вопр. биогеографии Азовского моря и его бассейна. Л.: Географическое общество СССР, 1977. С. 90–103.
3. Бронфман А.М., Дубинина В.Г., Воловик С.П., Макарова Г.Д. Гидрологические и гидрохимические основы продуктивности Азовского моря // М.: Пищ. пром-сть, 1979. С. 288.
4. Воловик С.П. Основные черты преобразования экосистемы Азовского моря в связи с развитием рыбного хозяйства в его бассейне // Вопр. ихтиологии. 1986. № 16. С. 37–47.
5. Воловик С.П. Продуктивность и проблемы управления экосистемой Азовского моря: Автореф. дис. … д.б.н. М., 1985. 50 с.
6. Воловик С.П., Корпакова И.Г. Методы рыбохозяйственных и природоохранных исследований в Азово-Черноморском бассейне. Краснодар: Просвещение-Юг, 2005. 351 с.
7. Гребневик Mnemiopsis leidyi (A. Agassiz) в Азовском и Черном морях. Ростов-на-Дону: Батайское кн. изд-во, 2000. 500 с.
8. Грезе В.Н., Ковалев А.В. Основные этапы столетних исследований зоопланктона в Институте биологии южных морей // Вестн. зоологии. 1971. № 5. С. 12–17.
9. Загородняя Ю.А. Таксономический состав и количественные характеристики зоопланктона в восточном Сиваше летом 2004 г. // Экосистемные исследования Азовского, Черного и Каспийского морей. Апатиты: Кольск. науч. центр РАН, 2006. Т. 8. С. 103–114.
10. Карпевич А.Ф. Отношение беспозвоночных Азовского моря к изменению солености // Тр. Всерос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1955. Т. 31. № 1. С. 240–275.
11. Копец В.А. О некоторых изменениях зоопланктона при современном осолонении Азовского моря // Тр. Всерос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1978. Т. 31. С. 38–43.
12. Кренева К.В., Свистунова Л.Д., Саяпин В.В., Поважный В.В. Современное состояние зоопланктонного сообщества Азовского моря // Современное состояние и технологии мониторинга аридных и семиаридных экосистем юга России. Ростов-на-Дону: Юж. науч. центр РАН, 2010. С. 265–287.
13. Матишов Г.Г., Игнатьев С.М., Загородняя Ю.А. и др. Фаунистическое разнообразие и показатели обилия планктонных сообществ Азовского моря в июне 2014 г. // Вестн. Юж. науч. центра. 2015. Т. 11. № 3. С. 81–91.
14. Мордухай-Болтовской Ф.Д. Каталог фауны свободноживущих беспозвоночных Азовского моря // Зоол. журн. 1960. Т. 39. Вып. 10. С. 1454–1466.
15. Новожилова А.Н. Изменения в зоопланктоне Азовского моря в условиях меняющегося режима // Тр. Всерос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1955. Т. 31. С. 199–216.
16. Определитель зоопланктона и зообентоса пресных вод Европейской России. Т. 1: Зоопланктон. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. 495 с.
17. Определитель рыб и беспозвоночных Каспийского моря. Т. 2: Стрекающие, гребневики, многощетинковые черви, веслоногие ракообразные и мизиды. СПб.; М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2015. 244 с.
18. Поважный В.В. Зоопланктон // Вселенцы в биоразнообразии и продуктивности Азовского и Чёрного морей. Ростов-нa-Дону: Изд-во Юж. науч. центра РАН, 2010. С. 12–16.
19. Поважный В.В. Особенности динамики зоопланктонного сообщества Таганрогского залива // Вестн. Юж. науч. центра. 2009. Т. 5. № 2. С. 94–101.
20. Поважный В.В. Особенности функционирования зоопланктонного сообщества Таганрогского залива Азовского моря: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Мурманск, 2009. 25 с.
21. Прусова И.Ю., Губанова А.Д., Шадрин Н.В. и др. Acartia tonsa (Copepoda, Calanoida): новый вид в зоопланктоне Каспийского и Азовского морей // Вестн. зоол. 2002. Т. 36. № 5. С. 65–68.
22. Свистунова Л.Д. Новый вселенец в зоопланктоне Азовского моря // Вестн. Юж. науч. центра РАН. 2013. Т. 9. № 4. С. 104–107.
23. Селифонова Ж.П. Вселенец в Черное и Азовское моря Oithona brevicornis Giesbrecht (Copepoda: Cyclopoida) // Рос. журн. биол. инвазий. 2011. № 2. С. 142–150.
24. Селифонова Ж.П. Таксономический состав и межгодовые изменения численности меропланктона в Азовском море // Биология моря. 2008. Т. 34. № 5. С. 311–317.
25. Студеникина Е.И., Сафронова Л.М., Мирзоян З.А. и др. Биологические основы формирования рыбопродуктивности Азовского моря в современный период. Ростов-на-Дону: Азов.НИИ рыб. хоз-ва, 2010. 170 с.
26. Gubanova A.D. Occurrence of Acartia tonsa Dana in the Black Sea. Was it introduced from the Mediterranean? // Mediterr. Mar. Sci. 2000. V. 1. № 1. P. 105–109.
27. Selifonova J.P. Role of Zooplankton in Functioning of Ecosystem of the Taganrog Gulf of the Azov Sea // Inland Water Biol. 2010. V. 3. № 4. P. 335–343.
28. WoRMS Editorial Board. World Register of Marine Species. 2018. Available from http://www.marinespecies.org at VLIZ. Accessed 2018-12-20. doi: 10.14284/170.
И. В. Енущенко1, *
РЕКОНСТРУКЦИЯ ЕСТЕСТВЕННОГО ХОДА ПРИРОДНЫХ ПРОЦЕССОВ ПО ДАННЫМ КОМПЛЕКСНОГО ИЗУЧЕНИЯ ДОННЫХ ОТЛОЖЕНИЙ оз. ОРОН (ВОСТОЧНАЯ СИБИРЬ)
1Лимнологический институт Сибирского отделения Российской академии наук,
664033 Иркутск, Улан-Баторская, д. 3, Россия
e-mail: deschampsia@yandex.ru
На основе радиометрического, палинологического анализа и изучения останков личинок хирономид (Insecta: Diptera) донных отложений горного оз. Орон проведена реконструкция изменения абиотических и биотических условий в озере и на сопредельных территориях. Высказано предположение, что ~800 лет исследованной истории оз. Орон смены “холодных” и “теплых” фаз происходили в 200-летнем природном цикле.
Ключевые слова: палеолимнология, изменение условий окружающей среды, спорово-пыльцевой анализ, личинки Chironomidae.
Cписок литературы
Атлас. Иркутская область: экологические условия развития. М.; Иркутск, 2004. 90 с.
2. Енущенко И.В., Макарченко Е.А. Находка останков личинок нимфомийид (Diptera, Nymphomyiidae) в донных осадках озера Орон (Иркутская область) // Жизнь пресных вод. Владивосток: Дальнаука, 2016. С. 180–184.
3. Карта геоморфологического районирования СССР. Масштаб 1 : 8 000000. М.: Главное управление геодезии и картографии, 1985. 2 с.
4. Линевич А.А. Хирономиды Байкала и Прибайкалья. Новосибирск: Наука. Сиб. отд., 1981. 152 с.
5. Макарченко Е.А. Сем. Nymphomyiidae – Нимфомииды // Определитель насекомых Дальнего Востока России. Т. VI: Двукрылые и блохи. Ч. 4. Владивосток: Дальнаука, 2006. С. 734–739.
6. Матвеев А.Н., Самусенок В.П., Рожкова Н.А. и др. Биота Витимского заповедника: структура биоты водных экосистем. Новосибирск: Академическое изд-во “Гео”, 2006. 267 с.
7. Berglund B.E., Ralska-Jasiewiczowa M. Pollen analysis and pollen diagrams // Handbook of Holocene Palaeoecology and Palaeochydrology. N.Y.: John Wiley & Sons, 1986. P. 455–484.
8. Brodersen K.P., Odgaard B.V., Vestergaard O., Anderson N.J. Chironomid stratigraphyin the shallow and eutrophic Lake Søbygaard, Denmark: chironomid-macrophyte co-occurrence // Freshwater Biol. 2001. № 46. P. 253–267.
9. Brodin Y.W. The postglacial history of Lake Flarken, southern Sweden, interpreted from subfossil insect remains // Int. Rev. gesamt Hydrobiol. 1986. № 71. P. 371–432.
10. Brooks S.J., Langdon P.G., Heiri O. The identification and use of Palaearctic Chironomidae larvae in palaeoecology. Technical Guide No. 10. L.: Qurternary research association. 2007. 276 p.
11. Cranston P.S., Oliver D.R., Saeter O.A. The adult males of Orthocladiinae (Diptera: Chironomidae) of the Holarctic region – Keys and diagnoses // Entomologica scandinavica. Suppl. 34. 1989. P. 165–352.
12. D’Arrigo R., Wilson R., Jacoby G. On the long-term context for late twentieth century warming // J. Geophys. Res. 2006. doi:111:10.1029/2005JD006352.
13. Enushchenko I.V., Melgunov M.S., Fedotov A.P. Reconstruction of summer temperatures in East Siberia (Russia) for the last 850 years, inferred from records in lake sediments of non-biting midges (Diptera: Chironomidae) // Int. J. Environ. Stud. 2014. V. 71. № 5. P. 647–655.
14. Fedotov A.P., Trunova V.A., Zvereva V.V. et al. Reconstruction of glacier fluctuation (East Siberia, Russia) during the last 160 years based on high-resolution geochemical proxies from proglacial lake bottom sediments of the Baikalsky Ridge // Int. J. Environ. Stud. 2012. V. 69. № 5. P. 806–815.
15. Hofman W. Stratigraphie subfossiler Cladocera (Crustaceae) und Chironomidae (Diptera) in zwei Sedimentprofilen des Meerfelder Maares // Courier Forschungs Institut Senckenberg. 1984. V. 65. P. 67–80.
16. Jones P.D., Briffa K.R., Osborn T.J. et al. High-resolution palaeoclimatology of the last millennium: a review of current status and future prospects // Holocene. 2009. V. 19. P. 3–49.
17. Saether O.A. Chironomid communities as water quality indicators // Holarctic Ecol. 1979. V. 2. P. 65–74.
18. Vorobyeva S.S., Trunova V.A., Stepanova O.G. et al. Impact of glacier changes on ecosystem of proglacial lakes in high mountain regions of East Siberia (Russia) // Environ. Earth Sci. 2015. № 74. P. 2055–2063.
19. Walker I.R., Smol J.P., Engstrom D.R., Briks H.J.B. An assessment of Chironomidae as quantitative indicators of past climatic change // Can. J. Fish and Aquat. Sci. 1991. № 48. P. 975–987.
20. Walker I.R., MacDonald G.M. Distributions of Chironomidae (Insecta: Diptera) and other freshwater midges with respect to tree line, Northwest Territories, Canada // Arctic and Alpine Res. 1995. № 3. P. 258–263.
Ю. В. Герасимов1, Э. С. Борисенко1, М. И. Базаров1, *, И. А. Столбунов1
ПЛОТНОСТЬ И РАСПРЕДЕЛЕНИЕ РЫБ В РЕКЕ, С ЯРКО ВЫРАЖЕННОЙ ГЕТЕРОГЕННОСТЬЮ СРЕДЫ, ПО РЕЗУЛЬТАТАМ ГИДРОАКУСТИЧЕСКОЙ СЪЕМКИ
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
e-mail: bazarov2009@gmail.com
Эхолотом горизонтального зондирования исследовано пространственное распределение рыб на нижнем участке р. Савалы (приток реки Хопер, Воронежская обл.). В пределах участка сравнивали плотность рыб на отрезках русла с разной степенью меандрированности. Показано, что морфология русла оказывает влияние на пространственное распределение рыб при высоком уровне воды весной. Осенью, при уменьшении плотности рыб, связанного с понижением уровня воды в реке и скатом рыб после завершения нереста, разница в плотности скоплений рыб на участках с разной
степенью меандрированности русла уменьшалась, а максимальные плотности наблюдались на наиболее глубоких участках реки.
Ключевые слова: средняя река, гидроакустика, степень меандрированности, глубина, распределение рыб.
Cписок литературы
Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2003. Т. 1. 379 с.
2. Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2003. Т. 2. 253 с.
3. Дмитриева В.А. Гидрологическая изученность Воронежской области. Каталог водотоков. Воронеж: Издат.-полиграф. центр Воронеж. гос. ун-та, 2008. 225 с.
4. Ефремов Д.А. Распределение и поведение реофильных видов рыб в реках Восточной Фенноскандии. Автореф. дис. … канд. биол. наук. Петрозаводск, 2012. 24 с.
5. Коблицкая А.Ф. Определитель молоди пресноводных рыб. М.: Лёгк. и пищ. пром-сть, 1981. 208 с.
6. Мартинсен Ю.В. Влияние течений на поведение рыб // Рыб. хоз-во. 1940. № 12. С. 23–27.
7. Мартинсен Ю.В. Движение рыб в реке // Рыб. хоз-во. 1937. № 2. С. 27–30.
8. Новожилов Е.П. Влияние коэффициента уловистости орудий рыболовства на точность определения состояния запасов гидробионтов // Изв. Калиниград. гос. тех. ун-та. 2014. № 32. С. 250–254.
9. Павлов Д.С., Барекян А.Ш., Рипинский И.И. и др. Экологический способ защиты рыб на повороте струёй открытого потока. М.: Наука, 1982. 112 с.
10. Поддубный С.А., Герасимов Ю.В., Новиков Д.А. Структура течений и распределение рыб в речных плесах верхневолжских водохранилищ // Биология внутр. вод. 2003. № 1. С. 89–97.
11. Попов П.А. О характере распределения рыб на территории Горного Алтая // Вестн. Томск. гос. ун-та. Сер. Биол. 2013. № 2(22). С. 141–149.
12. Biggs B.J.F., Nikora V.I., Snelder Т.Н. Linking scales of variability to lotic ecosystem structure and function // River Res. Appl. 2005. V. 21. P. 283–298.
13. Borisenko E.S., Gusar A.G., Goncharov S.M. The target strength dependence of some freshwater species on their length-weiht characteristics // Proceedings of the Institute of Acoustics. England: Lowestoft UK., 1989. V. 11. Pt 3. P. 27–34.
14. Borisenko E.S., Degtev A.I., Mochek A.D., Pavlov D.S. Hydroacoustic characteristics of mass fishes of Ob-Irtish basin // J. Ichthyol. 2006. V. 46. Suppl. 2. Р. S227–S234.
15. Bunn S.E., Arthington A.H. Basic principles and ecolog¬ical consequences of altered flow regimes for aquatic biodiversity // Environ. Manag. 2002. V. 30. P. 492–507.
16. Fausch K.D., Torgersen C.E., Baxter C.V., Li H.W. Landscapes to riverscapes: bridging the gap between research and conservation of stream fishes // BioScience. 2002. V. 52. P. 483–498.
17. Kennard M.J., Olden J.D., Arthington A.H. et al. Multiscale effects of flow regime and habitat and their interaction on fish assemblage structure in eastern Australia // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 2007. V. 64. P. 1346–1359.
18. Lowe W.H., Likens G.E., Power M.E. Linking scales in stream ecology // BioScience. 2006. V. 56. P. 591–597.
19. Poff N.L., Allan J.D., Bain M.B. et al. The natural flow regime: a paradigm for riverine conservation and restoration // BioScience. 1997. V. 47. P. 769–784.
Ж. Н. Дугаров1, *, М. Д. Батуева1, Т. Г. Бурдуковская1, Д. Р. Балданова1, О. Е. Мазур1, О. Б. Жепхолова1, Л. Д. Сондуева1, А. Н. Матвеев2
ОСОБЕННОСТИ ФАУНЫ ПАРАЗИТОВ ОБЫКНОВЕННОГО ЕРША Gymnocephalus cernuus (L.) В ЦИПО-ЦИПИКАНСКИХ ОЗЕРАХ (ЗАБАЙКАЛЬЕ
1Институт общей и экспериментальной биологии Сибирского отделения Российской академии наук,
670047 Улан-Удэ, ул. Сахьяновой, д. 6, Россия
2Иркутский государственный университет, 664011 Иркутск, Сухэ-Батора, д. 5, Россия
e-mail: zhar-dug@biol.bscnet.ru
В фауне паразитов обыкновенного ерша Gymnocephalus cernuus (Linnaeus, 1758) из Ципо-Ципиканских озер в Забайкалье (Баунт и Большое Капылюши) выявлено 19 видов, из них 12 – в оз. Баунт и 15 – в оз. Большое Капылюши. Фауна паразитов ерша в оз. Баунт изучена впервые. 10 видов паразитов (инфузории Apiosoma campanulatum и Trichodina sp., моногенеи Dactylogyrus hemiamphibothrium и Gyrodactylus sp., цестоды Cyathocephalus truncatus и Proteocephalus cernuae, трематоды Diplostomum volvens и Tylodelphys clavata, нематода Raphidascaris acus, скребень Pseudoechinorynchus borealis) впервые зарегистрированы у ерша Ципо-Ципиканских озер.
Ключевые слова: фауна паразитов, обыкновенный ерш, Ципо-Ципиканские озера, бассейн р. Лены.
Cписок литературы
1. Беклемишев В.Н. Термины и понятия, необходимые при количественном изучении популяций эктопаразитов и нидиколов // Зоол. журн. 1961. Т. 40. № 2. С. 149–158.
2. Бобков А.И., Калягин Л.Ф., Калягина Н.Ф. Ихтиофауна и рыбохозяйственная оценка озера Баунт // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1987. Вып. 272. С. 52–66.
3. Будаева Л.И., Павлицкая В.П. Питание рыб озера Баунт // Сб. науч. тр. Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1987. Вып. 272. С. 44–51.
4. Быстрова А.Н., Рюмшина Г.И. Продуктивность зообентоса озера Баунт // Сб. науч. тр. Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1987. Вып. 272. С. 31–43.
5. Быховская-Павловская И.Е. Паразиты рыб. Руководство по изучению. Л.: Наука, 1985. 121 c.
6. Вознесенская Н.Г. Гельминтофауна рыб озер Орон и Капылючикан Ципо-Ципиканской озерной системы // Болезни и паразиты рыб Ледовитоморской провинции (в пределах СССР). Свердловск: Средне-Уральск. кн. изд-во, 1976. С. 43–49.
7. Жохов А.Е. Список паразитических Protozoa и Metazoa обыкновенного ерша (Gymnocephalus cernuus) // Журн. Сиб. фед. ун-та. Серия: биология. 2010. Т. 3. Вып. 1. С. 57–81.
8. Жохов А.Е. Паразиты и болезни ерша // Обыкновенный ерш Gymnocеphalus cernuus (Linnaeus, 1758). Систематика, морфология, образ жизни и роль ерша в экосистемах. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2016. С. 199–206.
9. Иешко Е.П. Популяционная биология гельминтов рыб. Л.: Наука, 1988. 118 с.
10. Кияшко В.И., Попова О.А., Решетников Ю.С. Питание и трофические связи ерша // Обыкновенный ерш Gymnocеphalus cernuus (Linnaeus, 1758). Систематика, морфология, образ жизни и роль ерша в экосистемах. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2016. С. 92–118.
11. Кузьмич В.Н., Будаева Л.И. Продуктивность зообентоса озер Большое и Малое Капылюши // Сб. науч. тр. Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1987. Вып. 272. С. 77–96.
12. Линдберг Г.У. Четвертичный период в свете биогеографических данных. Л.: Изд-во АН СССР, 1955. 334 с.
13. Однокурцев В.А. Паразитофауна рыб пресноводных водоёмов Якутии. Новосибирск: Наука, 2010. 152 с.
14. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 1: Паразитические простейшие. Л.: Наука, 1984. 428 с.
15. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 2: Паразитические многоклеточные. Л.: Наука, 1985. Ч. 1. 425 с.
16. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 3: Паразитические многоклеточные. Л.: Наука, 1987. Ч. 2. 583 с.
17. Павлицкая В.П. Пелагический зоопланктон озера Баунт // Сб. науч. тр. Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1987. Вып. 272. С. 20–30.
18. Петросян В.Г., Попова О.А., Решетников Ю.С. Ерш в новых местах обитания // Обыкновенный ерш Gymnocеphalus cernuus (Linnaeus, 1758). Систематика, морфология, образ жизни и роль ерша в экосистемах. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2016. С. 47–52.
19. Попова О.А., Решетников Ю.С. Естественный ареал в России и сопредельных странах // Обыкновенный ерш Gymnocеphalus cernuus (Linnaeus, 1758). Систематика, морфология, образ жизни и роль ерша в экосистемах. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2016. С. 43–47.
20. Пронин Н.М., Бурдуковская Т.Г., Батуева М.Д.-Д и др. Паразитофауна сиговых рыб рода Coregonus из водоёмов Ципо-Ципиканской системы (Забайкалье) // Вопр. ихтиологии. 2015. Т. 55. № 5. С. 603–610. doi: 10.7868/S0042875215040141.
21. Пронин Н.М., Ринчино В.Л. Cyathocephalus truncatus (Pallas, 1781): общая характеристика гельминта и особенности его биологии в оз. Байкал // Динамика зараженности животных гельминтами. Улан-Удэ: Бурятск. науч. центр СО АН СССР, 1991. С. 76–80.
22. Пронин Н.М., Ринчино В.Л., Кудряшов А.С., Бекман М.Ю. О промежуточных хозяевах цестоды Cyatocephalus truncatus в водоемах Байкало-Ангарского бассейна // Тр. Гельминтол. лаборатории АН СССР. 1986. Т. 34. С. 72–79.
23. Пугачев О.Н. Генезис паразитофауны лососевых рыб Евразии // Паразитология. 1980. Т. 14. Вып. 5. С. 403–410.
24. Пугачев О.Н. Каталог паразитов пресноводных рыб Северной Азии. Простейшие. СПб.: Зоол. ин-т РАН, 2001. 242 с.
25. Пугачев О.Н. Каталог паразитов пресноводных рыб Северной Азии. Книдарии, моногенеи, цестоды. СПб.: Зоол. ин-т РАН, 2002. 248 с.
26. Пугачев О.Н. Каталог паразитов пресноводных рыб Северной Азии. Трематоды. СПб.: Зоол. ин-т РАН, 2003. 224 с.
27. Пугачев О.Н. Каталог паразитов пресноводных рыб Северной Азии. Нематоды, скребни, пиявки, моллюски, ракообразные, клещи. СПб.: Зоол. ин-т РАН, 2004. 250 с.
28. Рыбы в заповедниках России. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. Т. 1. 627 с.
29. Скрябин А.Г. Рыбы Баунтовских озер Забайкалья. Новосибирск: Изд-во Наука, Сиб. отд. 1977. 232 с.
30. Соколов А.В. Рыбохозяйственная оценка и состояние промысла Баунтовских озер // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1987. Вып. 272. С. 154–158.
31. Соколов А.В., Бобков А.И., Соколова В.Ф. Структурная и функциональная характеристика ихтиоценозов озер Большое и Малое Капылюши // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1987. Вып. 272. С. 97–113.
32. Соколов С.Г., Цейтлин Д.Г., Афанасьев К.И. и др. Сравнительное изучение двух симпатрических подвидов трематод Bunodera luciopercae luciopercae (Müller, 1776) и B. l. acerinae Roitman et Sokolov, 1999 (Trematoda: Bunoderidae) // Зоология беспозвоночных. 2006. Т. 3. Вып. 2. С. 209–223.
33. Соколов С.Г., Протасова Е.Н., Черевичко А.В. Новый таксономический статус трематод Bunodera luciopercae s. str. и Bunodera acerinae stat. n. (Trematoda, Allocreadiidae) и второй промежуточный хозяин Bunodera luciopercae s. str. // Зоол. журн. 2013. Т. 92. № 2. С. 184–193. doi: 10.7868/S0044513413020165.
34. Cокольников Ю.А. Пелагический зоопланктон озер Большое и Малое Капылюши // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1987. Вып. 272. С. 67–76.
35. Халбаева Т.В., Дробот Л.В., Коннова Р.П. Физико-географическая, гидрохимическая характеристика и первичная продукция озер Баунтовской системы // Сб. науч. тр. Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1987. Вып. 272. С. 4–19.
36. Bochkarev N.A., Zuykova E.I., Abramov S.A. et al. Morphological, ecological and mtDNA sequence variation in coregonid fish from the Baunt Lake system (the Vitim River basin) // Adv. Limnol. 2013. V. 64. P. 257–277. doi: 10.1127/1612-166X/2013/0064-0025.
37. Collette B.B., Bănărescu P. Systematics and zoogeography of the fishes of the family Percidae // J. Fish. Res. Board Can. 1977. V. 34. № 10. P. 1450–1463.
38. Dugarov Z.N., Pronin N.M., Batueva M.D. et al. Fauna of parasites of burbot Lota lota (L.) (Gadiformes: Lotidae) from reservoirs of Baikal Rift Zone // Inland Water Biol. 2016. Vol. 9. No. 4. P. 341–349. doi: 10.1134/S1995082916030044.
39. Faltýnková A., Karvonen A., Jyrkkä M., Valtonen E.T. Being successful in the world of narrow opportunities: transmission patterns of the trematode Ichthyocotylurus pileatus // Parasitology. 2009. V. 136. № 11. P. 1375–1382. doi:10.1017/S0031182009990862.
40. Holčík J., Hensel K. A new species of Gymnocephalus (Pisces: Percidae) from the Danube, with remarks on the genus // Copeia. 1974. № 2. P. 471–486.
41. Kennedy C.R. A checklist of British and Irish freshwater fish parasites with notes on their distribution // J. Fish. Biol. 1974. V. 6. P. 613–644.
42. Petkevičiūté R., Stanevičiūté G. Comparative karyological analysis of three members of Allocreadiidae (Digenea): taxonomic and phylogenetic implications // Parasitol. Res. 2008. V. 103. P. 1105–1110. doi: 10.1007/s00436-008-1101-6.
43. Petkevičiūté R., Stunžėnas V., Stanevičiūté G., Sokolov S. Comparison of the developmental stages of some European allocreadiid trematode species and a clarication of their life cycles based on ITS2 and 28S sequences // Syst. Parasitol. 2010. V. 76. P. 169–178.doi: 10.1007/s11230-010-9249-8.
44. Petkevičiūtė R., Stunžėnas V., Stanevičiūtė G., Zhokhov A.E. European Phyllodistomum (Digenea, Gorgoderidae) and phylogenetic affinities of Cercaria duplicata based on rDNA and karyotypes // Zool. Scr. 2015. V. 44. № 2. P. 191–202. doi:10.1111/zsc.12080.
45. Ráb P., Roth P., and Mayr B. Karyotype study of eight species of European percid fishes (Pisces, Percidae) // Caryologia. 1987. V. 40. № 4. P. 307–318.
46. Stunžėnas V., Petkevičiūtė R., Poddubnaya L.G. et al. Host specificity, molecular phylogeny and morphological differences of Phyllodistomum pseudofolium Nybelin, 1926 and Phyllodistomum angulatum Linstow, 1907 (Trematoda: Gorgoderidae) with notes on Eurasian ruffe as final host for Phyllodistomum spp. // Parasit. Vectors. 2017. 10:286. doi.org/10.1186/s13071-017-2210-9.
47. Yakhnenko V.M., Mamontov A.M., Luczynski M. East-Siberian coregonid fishes: their occurrence, evolution and present status // Environ. Biotechnol. 2008. V. 4. № 2. P. 41–53.
И. Л. Голованова1, *, А. И. Аминов2
ФИЗИОЛОГО-БИОХИМИЧЕСКИЙ СТАТУС РЫБ ПОД ДЕЙСТВИЕМ ГЛИФОСАТСОДЕРЖАЩИХ ГЕРБИЦИДОВ (ОБЗОР)
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н, Россия
2Ярославский государственный медицинский университет,
150000 Ярославль, ул. Революционная, д. 5, Россия
e-mail: golovanova5353@mail.ru
Приведен краткий обзор литературных сведений о влиянии глифосатсодержащих гербицидов на морфологические и физиолого-биохимические показатели рыб. Продемонстрирована зависимость силы и направленности этого влияния от вида, возраста и экологии рыб, концентрации гербицида и условий эксперимента, а также от действия ряда антропогенных факторов.
Ключевые слова: гербициды, глифосат, Раундап, рыбы.
Cписок литературы
1. Барбухо О.В. Екотоксикологічна оцінка впливу гліфосату (препарат “Раундап”) на риб та їхні мікробоценози: Автореф. дис. ... канд. біол. наук. Київ: Київський національний університет ім. Тараса Шевченка, 2014. 24 с.
2. Голованова И.Л., Аминов А.И. Влияние гербицида Раундап на активность гликозидаз в кишечнике рыб разных экологических групп // Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы. Ярославль: Филигрань, 2017. С. 9–19.
3. Голованова И.Л., Аминов А.И. Влияние гербицида Раундап на активность гликозидаз молоди рыб и их кормовых объектов при различных значениях температуры и pH // Вестн. Астрахан. гос. тех. ун-та. Серия: Рыб. хоз-во. 2013. № 1. С. 129–134.
4. Голованова И.Л., Аминов А.И. Влияние некоторых экологических факторов на чувствительность гликозидаз рыб к действию гербицида Раундап in vitro // Тр. Карельск. науч. центра РАН. Серия: Экологические исследования. 2016. № 12. С. 96–105.
5. Голованова И.Л., Аминов А.И., Капшай Д.С., Голованов В.К. Физиолого-биохимические и температурные характеристики сеголетков ротана при хроническом действии Раундапа // Вестн. Астрахан. гос. тех. ун-та. Серия: Рыб. хоз-во. 2013. № 3. С. 98–103.
6. Голованова И.Л., Аминов А.И., Урванцева Г.А., Смирнов М.С. Влияние сверхнизких концентраций Раундапа на активность гликозидаз у молоди рыб // Вестн. Астрахан. гос. тех. ун-та. Серия: Рыб. хоз-во. 2016. № 2. С. 100–107.
7. Жиденко А.А. Влияние гербицидов на структурный метаболизм карпа (Cyprinus carpio L.) разного возраста // Вісник Харківського національного університету ім. В.Н. Каразіна. Серія: біологія. 2007. Вып. 6. № 788. С. 86‒92.
8. Жиденко А.А. Динамика гематологических показателей молоди карпа под действием гербицидов // Гидробиол. журн. 2008. Т. 44. № 3. С. 8088.
9. Жиденко А.А., Бибчук Е.В., Мехед О.Б., Кривопиша В.В. Влияние гербицидов различной химической структуры на углеводный обмен в организме карпа // Гидробиол. журн. 2009. Т. 45. № 5. С. 7080.
10. Жиденко А.А., Мищенко Т.В., Кривопиша В.В. Реакция карповых рыб на действие глифосата // Наук. зап. Терноп. нац. пед. ун-та. Сер. Биол. 2015. Т. 64. № 34. С. 227230.
11. Заботкина Е.А., Голованов В.К., Голованова И.Л. Изменение ультраструктуры иммунокомпетентных клеток в почках, селезенке и печени головешки-ротана Perccottus glenii под влиянием пестицида Раундап // Тр. Всерос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва: Промысловые виды и их биология. 2016. Т. 162. С. 7381.
12. Перечень рыбохозяйственных нормативов, предельно допустимых концентраций (ПДК) и ориентировочно безопасных уровней воздействия (ОБУВ) вредных веществ для воды водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение. М.: Изд-во Всерос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1999. 304 с.
13. Aminov A.I., Golovanova I.L., Filippov A.A. Effect of the Herbicide Roundup on the Activity of Glycosidases of Invertebrates and Juvenile Fish // Inland Water Biol. 2013. V. 6. № 4. P. 335–340. doi: 10.1134/S1995082913040032.
14. Annet R., Habibi H.R., Hontela A. Impact of glyphosate and glyphosate-based herbicide on freshwater environment // J. Appl. Toxicol. 2014. V. 34. № 5. P. 458‒479. doi: 10.1002/jat.2997.
15. Aparicio V.C., De Geronimo E., Marino D. et al. Environmental fate of glyphosate and aminomethylphosphonic acid in surface waters and soil of agricultural basins // Chemosphere. 2013. V. 93. P. 1866-1873. doi: 10.1016/j.chemosphere.2013.06.041.
16. Ayoola S.O. Histopathological effects of glyphosate on juvenile african catfish (Clarias gariepinus) // Am.-Euras. J. Agric. Environ. Sci. 2008. V. 4. № 3. P. 362367.
17. Benbrook C.M. Trends in glyphosate herbicide use in the United States and globally // Environ. Sci. Eur. 2016. V. 28. № 3. P. 1-15. doi: 10.1186/s12302-016-0070-0.
18. Cattaneo R., Clasen B., Loro V.L. et al. Toxicological responses of Cyprinus carpio exposed to a commercial formulation containing glyphosate // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 87. № 6. P. 597‒602. doi: 10.1007/s00128-011-0396-7.
19. Cavalcante D.G.S.M., Martinez C.B.R., Sofia S.H. Genotoxic effects of Roundup on the fish Prochilodus lineatus // Mutat. Res. 2008. V. 655. P. 41‒46. doi: 10.1016/j.mrgentox.2008.06.010.
20. Cox С. Glyphosate // J. Pesticide reform. Autumn. 1998. V. 18. № 3. P. 3‒16.
21. Da Cruz C., Carraschi S.P., Shiogiri N.S. et al. Sensitivity, ecotoxicity and histopathological effects on neotropical fish exposed to glyphosate alone and associated to surfactant // J. Environ. Chem. Ecotoxicol. 2016. V. 8. № 3. P. 25-33. doi: 10.5897/JECE2015.0362.
22. De Menezes C.C., da Fonseca M.B., Loro V.L. et al. Roundup effects on oxidative stress parameters and recovery pattern of Rhamdia quelen // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 60. P. 665‒671. doi: 10.1007/s00244-010-9574-6.
23. De Moura F.R., Brentegani K.R., Gemelli A. et al. Oxidative stress in the hybrid fish jundiara (Leiarius marmoratus x Pseudoplatystoma reticulatum) exposed to Roundup Original® // Chemosphere. 2017. V. 185. P. 445-451. doi: 10.1016/j.chemosphere.2017.07.030.
24. De Souza Filho J., Sousa C.C., Da Silva C.C. et al. Mutagenicity and genotoxicity in gill erythrocyte cells of Poecilia reticulata exposed to a glyphosate formulation // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2013. V. 91. № 5. P. 583‒587. doi: 10.1007/s00128-013-1103-7.
25. Dos Santos A.P.R., Rocha T.L., Borges C.L. et al. A glyphosate-based herbicide induces histomorphological and protein expression changes in the liver of the female guppy Poecilia reticulata // Chemosphere. 2017. V. 168. P. 933-943. doi: 10.1016/j.chemosphere.2016.10.116.
26. Eberbach P. Applying non-steady-state compartmental analysis to investigate the simultaneous degradation of soluble and sorbed glyphosate (N-(Phosphonomethyl)glycine) in four soils // Pestic. Sci. 1998. V. 52. № 3. P. 229‒240. doi: 10.1002/(SICI)1096-9063(199803)52:33.0.CO;2-O.
27. Fan J.Y., Geng J.J., Ren H.Q. et al. Herbicide Roundup and its constituents cause oxidative stress and inhibit acetylcholinesterase in liver of Carassius auratus // J. Environ. Sci. Health. 2013. Part B. V. 48. № 10. P. 844850. doi: 10.1080/03601234.2013.795841.
28. Filippov A.A., Aminov A.I., Golovanova I.L. et al. Effect of magnetic storm on the sensitivity of juvenile roach intestinal glycosidase to heavy metals (Cu, Zn) and the herbicide Roundup // Inland Water Biol. 2015. V. 8. № 4. P. 417–420. doi: 10.1134/S1995082915040070.
29. Filizadeh Y., Rajabi Islami H. Toxicity determination of three sturgeon species exposed to glyphosate // Iran. J. Fish. Sci. 2011. V. 10. № 3. P. 383-392.
30. Fiorino E., Sehonova P., Plhalova L. et al. Effects of glyphosate on early life stages: comparison between Cyprinus carpio and Danio rerio // Environ. Sci. Pollut. Res. 2018. V. 25. № 9. P. 8542-8549. doi: 10.1007/s11356-017-1141-5.
31. Folmar L.C., Sanders H.O., Julin A.M. Toxicity of the herbicide glyphosate and several of its formulations to fish and aquatic invertebrates // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1979. V. 8. № 3. P. 269‒278. doi: 10.1007/BF01056243.
32. Ghisi N.C., Cestari M.M. Genotoxic effects of the herbicide Roundup in the fish Corydoras paleatus (Jenyns 1842) after short-term, environmentally low concentration exposure // Environ. Monit. Assess. 2013. V. 185. P. 3201‒3207. doi: 10.1007/s10661-012-2783-x.
33. Gholami-Seyedkolaei S.J., Mirvaghefi A., Farahmand H., Asghar Kosari A. Effect of a glyphosate-based herbicide in Cyprinus carpio: Assessment of acetylcholinesterase activity, hematological responses and serum biochemical parameters // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2013. V. 98. P. 135‒141. doi: 10.1016/j.ecoenv.2013.09.011.
34. Gholami-Seyedkolaei S.J., Mirvaghefi A., Farahmand H., Asghar Kosari A. Optimization of recovery patterns in common carp exposed to roundup using response surface methodology: Evaluation of neurotoxicity and genotoxicity effects and biochemical parameters // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2013. V. 98. P. 152‒161. doi: 10.1016/j.ecoenv.2013.09.009.
35. Giesy J.P., Dobson S., Solomon K.R. Ecotoxicological risk assessment for Roundup herbicide // Rev. Environ. Contam. Toxicol. 2000. V. 167. P. 35-120.
36. Gill J.P.K., Sethi N., Mohan A. et al. Glyphosate toxicity for animals // Environ. Chem. Letters. 2018. V. 16. № 2. P. 401‒426. doi: 10.1007/s10311-017-0689-0.
37. Glusczak L., Loro V.L., Pretto A. et al. Acute exposure to glyphosate herbicide affects oxidative parameters in piava (Leporinus obtusidens) // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 61. P. 624‒630. doi: 10.1007/s00244-011-9652-4.
38. Glusczak L., Miron D.S., Crestani M. et al. Effect of glyphosate herbicide on acetylcholinesterase activity and metabolic and hematological parameters in piava (Leporinus obtusidens) // Ecotoxicol. Еnviron. Safety. 2006. V. 65. P. 237‒241. doi: 10.1016/j.ecoenv.2005.07.017.
39. Glusczak L., Miron D.S., Moraes B.S. et al. Acute effects of glyphosate herbicide on metabolic and enzymatic parameters of silver catfish (Rhamdia quelen) // Comp. Biochem. Physiol. Part C. 2007. V. 146. P. 519‒524. doi: 10.1016/j.cbpc.2007.06.004.
40. Goulart T.L.S., Boyle R.T., Souza M.M. Cytotoxicity of the association of pesticides Roundup Transorb and Furadan 350 SCТ on the zebrafish cell line, ZF-L // Toxicology in vitro. 2015. V. 29. P. 1377‒1384. doi: 10.1016/j.tiv.2015.06.007.
41. Grisolia C.K. A comparison between mouse and fish micronucleus test using cyclophosphamide, mitomycin C and various pesticides // Mutat. Res. 2002. V. 518. P. 145150. doi: 10.1016/S1383-5718(02)00086-4.
42. Guilherme S., Gaivao I., Santos M.A., Pacheco M. European eel (Anguilla anguilla) genotoxic and pro-oxidant responses following short-term exposure to Roundup a glyphosate-based herbicide // Mutagenesis. 2010. V. 25. № 5. P. 523530. doi: 10.1093/mutage/geq038.
43. Guilherme S., Santos M.A., Barroso C. et al. Differential genotoxicity of Roundup formulation and its constituents in blood cells of fish (Anguilla anguilla): considerations on chemical interactions and DNA damaging mechanisms // Ecotoxicology. 2012. V. 21. № 5. P. 1381‒1390. doi: 10.1007/s10646-012-0892-5.
44. Harayashiki C.A.Y., Varela J.A.S., Machado A.A.S. et al. Toxic effects of the herbicide Roundup in the guppy Poecilia vivipara acclimated to fresh water // Aquat. Toxicol. 2013. V. 142143. P. 176184. doi: 10.1016/j.aquatox.2013.08.006.
45. Hued A.C., Oberhofer S., de los Ángeles Bistoni M. Exposure to a Commercial Glyphosate Formulation (Roundup®) Alters Normal Gill and Liver Histology and Affects Male Sexual Activity of Jenynsia multidentata (Anablepidae, Cyprinodontiformes) // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2012. V. 62. № 1. P. 107–117. doi: 10.1007/s00244-011-9686-7.
46. Jiraungkoorskul W., Upatham E.S., Kruatrachue M. et al. Histopathological effects of Roundup, a glyphosate herbicide, on Nile tilapia (Oreochromis niloticus) // Science Asia. 2002. V. 28. P. 121127. doi: 10.2306/scienceasia1513-1874.2002.28.121.
47. Kier L.D., Kirkland D.J. Review of genotoxicity studies of glyphosate and glyphosate-based formulations // Crit. Rev. Toxicol. 2013. V. 43. № 4. P. 283‒315. doi: 10.3109/10408444.2013.770820.
48. Kreutz L.C., Barcellos L.J.G., Valle S.F. et al. Altered hematological and immunological parametets in silver catfish (Rhamdia quelen) following short term exposure to sublethal concentration of glyphosate // Fish Shellfish Immun. 2011. V. 30. № 1. P. 51‒57. doi: 10.1016/j.fsi.2010.09.012.
49. Kuz’mina V.V., Tarleva A.F., Sheptitskii V.A. Influence of Roundup Herbicide on the Activities of Peptidases in the Intestines of Various Fish Species // J. Ichthyology. 2017. V. 57. № 5. P. 761–767. doi: 10.1134/S0032945217050095.
50. Langiano V.C., Martinez C.B.R. Toxicity and effects of glyphosate-based herbicide on the Neotropical fish Prochilodus lineatus // Comp. Biochem. Physiol. Part C. 2008. V. 147. № 2. P. 222231. doi: 10.1016/j.cbpc.2007.09.009.
51. Lopes F.M., Junior A.S.V., Corcini C.D. et al. Effect of glyphosate on the sperm quality of zebrafish Danio rerio // Aquat. Toxicol. 2014. V. 155. P. 322‒326. doi: 10.1016/j.aquatox.2014.07.006.
52. Lushchak O.V., Kubrak O.I., Storey J.M. et al. Low toxic herbicide Roundup induces mild oxidative stress in goldfish tissues // Chemosphere. 2009. V. 52. № 7. P. 932‒937. doi: 10.1016/j.chemosphere.2009.04.045.
53. Menendez-Helman R.J., Ferreyroa G.V., Afonso A.S., Salibian A. Glyphosate as an acetylcholinesterase inhibitor in Cnesterodon decemmaculatus // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2012. V. 88. № 1. P. 6‒9. doi: 10.1007/s00128-011-0423-8.
54. Menendez-Helman R.J., Miranda L.A., Afonso M.S., Salibian A. Subcellular energy balance of Odontesthes bonariensis exposed to a glyphosate-based herbicide // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2015. V. 114. P. 157‒163. doi: 10.1016/j.ecoenv.2015.01.014.
55. Modesto K.A., Martinez C.B.R. Effects of Roundup Transorb on fish: hematology, antioxidant defences and acetylcholinesterase activity // Chemosphere. 2010. V. 81. P. 781‒787. doi: 10.1016/j.chemosphere.2010.07.005.
56. Modesto K.A., Martinez C.B.R. Roundup causes oxidative stress in liver and inhibits acetylcholinesterase in muscle and brain of the fish Prochilodus lineatus // Chemosphere. 2010. V. 78. P. 294‒299. doi: 10.1016/j.chemosphere.2009.10.047.
57. Moreno N.C., Sofia S.H., Martinez C.B.R. Genotoxic effects of the herbicide Roundup Transorb and its active ingredient glyphosate on the fish Prochilodus lineatus // Environ. Toxicol. Pharmacol. 2014. V. 37. № 1. P. 448‒454. doi: 10.1016/j.etap.2013.12.012.
58. Murussi C.R., Costa M.D., Leitemperger J.W. et al. Exposure to different glyphosate formulations on the oxidative and histological status of Rhamdia quelen // Fish Physiol. Biochem. 2016. V. 42. № 2. P. 445455. doi: 10.1007/s10695-015-0150-x.
59. Nwani C.D., Nagpure N.S., Kumar R. et al. DNA damage and oxidative stress modulatory effects of glyphosate-based herbicide in freshwater fish, Channa punctatus // Environ. Toxicol. Pharmacol. 2013. V. 36. P. 539‒547. doi: 10.1016/j.etap.2013.06.001.
60. Ortiz-Ordonez E., Uria-Galicia E., Ruiz-Picos R.A. et al. Effect of Yerbimat herbicide on lipid peroxidation, catalase activity, and histological damage in gills and liver of the freshwater fish Goodea atripinnis // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 1 № 3. P. 443‒452. doi: 10.1007/s00244-011-9648-0.
61. Peruzzo P.J., Porta A.A., Ronco A.E. Levels of glyphosate in surface waters, sediments and soil associated with direct sowing soybean cultivation in north pampasic region of Argentina // Environ. Pollut. 2008. V. 156. № 1. P. 61-66. doi: 10.1016/j.envpol.2008.01.015.
62. Richard S., Prevot-D’Alvise N., Bunet R. et al. Effect of a glyphosate-based herbicide on gene expressions of the Cytokines Interleukin-1β and Interleukin-10 and Heme Oxygenase-1 in European sea bass, Dicentrarchus labrax L. // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2014. V. 92. № 3. P. 294299. doi: 10.1007/s00128-013-1180-7.
63. Rossi C.R., da Silva M.D., Piancini L.D.S. et al. Sublethal effects of waterborne herbicides in tropical freshwater fish // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 87. № 6. P. 603-607. doi: 10.1007/s00128-011-0397-6.
64. Rzymski P., Klimaszyk P., Kubacki T., Poniedzialek B. The effect of glyphosate-based herbicide on aquatic organisms case study // Limnol. Rev. 2010. V. 13. № 4. P. 215‒220. doi: 10.2478/limre-2013-0024.
65. Salbego J., Pretto A., da Silva V.M.M. et al. Glifosato sobre a atividade de enzimas digestivas em piavas (Leporinus obtusidens) // Ciência Rural, Santa Maria. 2014. V. 44. № 9. P. 1603-1607. doi: 10.1590/S0103-84782006000500043.
66. Salbego J., Pretto A., Gioda C.R. et al. Herbicide formulation with glyphosate affects growth, acetylcholinesterase activity and metabolic and hematological parameters in piava (Leporinus obtusidens) // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2010. V. 58. P. 740‒745. doi: 10.1007/s00244-009-9464-y.
67. Samanta P., Pal S., Mukherjee A.K., Ghosh A.R. Biochemical effects of glyphosate based herbicide Excel Mera 71 on enzyme activities of acetylcholinesterase (AChE), lipid peroxidation (LPO), catalase (CAT), glutathione-S-transferase (GST) and protein content on teleostean fishes // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2014. V. 107. P. 120‒125.
68. Sánchez J.A.A., Varela Junior A.S., Corcini C.D. et al. Effects of Roundup formulations on biochemical biomarkers and male sperm quality of the livebearing Jenynsia multidentata // Chemosphere. 2017. V. 177. P. 200–210.
69. Sandrini J.Z., Rola R.C., Lopes F.M. et al. Effects of glyphosate on cholinesterase activity of the mussel Perna perna and the fish Danio rerio and Jenynsia multidentata: In vitro studies // Aquat. Toxicol. 2013. V. 130‒131. P. 171‒173. doi: 10.1016/j.aquatox.2013.01.006.
70. Shiogiri N.S., Paulino M.G., Carraschi S.P. et al. Acute exposure of a glyphosate-based herbicide affects the gills and liver of the neotropical fish, Piaractus mesopotamicus // Environ. Toxicol. Pharmacol. 2012. V. 34. № 2. P. 388-396. doi: 10.1016/j.etap.2012.05.007.
71. Sinhorin V.D.G., Sinhorin A.P., Teixeira J.M.S. et al. Effects of acute exposition to glyphosate-base herbicide on oxidative stress parameters and antioxidant responses in a hybrid Amazon fish surubim (Pseudoplatystoma sp.) // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2014. V. 106. P. 181‒187.
72. Sinhorin V.D.G., Sinhorin A.P., Teixeira J.M.S. et al. Metabolic and behavior changes in surubim acutely exposed to a glyphosate-based herbicide // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2014. V. 67. № 4. P. 659‒667.
73. Struger J., Thompson D., Staznik B. et al. Occurrence of glyphosate in surface waters of Southern Ontario // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2008. V. 80. № 4. P. 378-384. doi: 10.1007/s00128-008-9373-1.
74. Sviridov A.V., Shushkova T.V., Ermakova I.T. et al. Microbial degradation of glyphosate herbicides (review) // Appl. Biochem. Microbiol. 2015. V. 51. № 2. P. 188–195.
75. Szarek J., Siwicki A., Andrzejewska A. et al. Effects of the herbicide Roundup on the ultrastructural pattern of hepatocytes in carp (Cyprinus carpio) // Mar. Environ. Res. 2000. V. 50. P. 263266. doi: 10.1016/S0141-1136(00)00088-X.
76. Trotter D.M., Wong M.P., Kent R.A. Canadian water quality guidelines for glyphosate. Scientific Series № 170. Inland Waters Directorate, Water Quality Branch, Environment Canada. Ottawa, Ontario, 1990. 27 p.
77. Tsui M.T.K., Chu L.M. Aquatic toxicity of glyphosate-based formulations: comparison between different organisms and the effects of environmental factors // Chemosphere. 2003. V. 52. № 7. P. 1189‒1197. doi: 10.1016/S0045-6535(03)00306-0.
78. Tsui M.T.K., Chu L.M. Environmental fate and non-target impact of glyphosate-based herbicide (Roundup) in a subtropical wetland // Chemosphere. 2008. V. 71. № 3. P. 439‒446.
79. USEPA (U.S. Environmental Protection Agency) edition of the drinking water Standards and Health Advisories. 2003. 12 p.
80. Webster T.M.U., Laing L.V., Florance H., Santos E.M. Effects of glyphosate and its formulation, Roundup, on reproduction in Zebrafish (Danio rerio) // Environ. Sci. Technol. 2014. V. 48. P. 1271‒1979. doi: 10.1021/es404258h.
81. Webster T.M.U., Santos E.M. Global transcriptomic profiling demonstrates induction of oxidative stress and of compensatory cellular stress responses in brown trout exposed to glyphosate and Roundup // BMC Genomic. 2015. V. 16. № 32. P. 1‒14.
82. Williams G.M., Kroes R., Munro I.C. Safety evaluation and risk assessment of herbicide Roundup and its active ingredient, glyphosate, for humans // Regul. Toxicol. Pharmacol. 2000. V. 31. № 2. P. 117‒165. doi: 10.1006/rtph.1999.1371.
83. Zabotkina E.A., Golovanov V.K., Golovanova I.L. Effects of Roundup herbicide and increase in water temperature on the parameters of peripheral blood cells in Amur sleeper Perccottus glenii Dybowski // Inland Water Biol. 2018. V. 11. №. 2. P. 207–213.
84. Zebral Y.D., Lansini L.R., Costa P.G. et al. A glyphosate-based herbicide reduces fertility, embryonic upper thermal tolerance and alters embryonic diapause of the threatened annual fish Austrolebias nigrofasciatus // Chemosphere. 2018. V. 196. P. 260‒269.
85. Zhang S., Xu J., Kuang X. et al. Biological impacts of glyphosate on morphology, embryo b
Е. Г. Пряничникова1, *, И. С. Ворошилова1, Р. З. Сабитова1
ВСЕЛЕНИЕ Corbicula fluminea (Muller, 1774) (Mollusca: Bivalvia: Corbiculidae) В БАССЕЙН р. ВОЛГИ
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-он, Россия
e-mail: pryanichnikova_e@mail.ru
В Горьковском водохранилище в зоне действия подогретых вод водоема-охладителя Костромской ГРЭС обнаружена популяция нового для бассейна р. Волги инвазивного моллюска рода Corbicula. По морфологическим признакам и нуклеотидной последовательности фрагмента митохондриального гена первой субъединицы цитохром с-оксидазы (COI) моллюск идентифицирован как Corbicula fluminea (Muller, 1774). К настоящему времени C. fluminea натурализовалась в водоеме и может стать источником дальнейшего распространения вида.
Ключевые слова: Corbicula, новые местонахождения, моллюски, вид-вселенец, р. Волга.
Cписок литературы
Ворошилова И.С., Артамонова В.С., Махров А.А., Слынько Ю.В. Гибридизация двух видов дрейссен Dreissena polymorpha (Pallas, 1771) и Dreissena bugensis (Andrusov, 1897) в естественных условиях // Изв. РАН. Сер. биол. 2010. № 5. С. 631–636.
2. Жадин В.И. Моллюски пресных и солоноватых вод СССР. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1952. 376 с.
3. Набоженко М.В., Набоженко С.В. Corbicula fluminalis (Mueller, 1774) – новый для Российского сектора Каспийского бассейна вид двустворчатых моллюсков // Наука Юга России. 2016. Т. 12. № 1. С. 61–64.
4. Об обнаружении нового для бассейна Нижнего Дона двустворчатого моллюска // Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства Федеральное государственное бюджетное научное учреждение [Электронный ресурс]. http://azniirkh.ru/novosti/ob-obnaruzhenii-novogo-dlya-basseyna-nizhnego-dona-dvustvorchatogo-mollyuska.
5. Сон М.О. Моллюски-вселенцы в пресных и солоноватых водах Северного Причерноморья. Одесса: Друк, 2007. 132 с.
6. Araujo R., Moreno D., Ramos M.A. The asiatic clam Corbicula fluminea (Müller, 1774) (Bivalvia: Corbiculidae) in Europe // Am. Malacol. Bull. 1993. № 10. P. 39–49.
7. Bespalaya Y.V., Bolotov I.N., Aksenova O.V. et al. The first records of androgenic hybrid Corbicula lineages in Extreme North of Russia // Book of abstracts. EUROMAL 8th European Congress of Malacological Societies. Krakow, Poland, 2017. P. 88.
8. Counts C.L. Corbicula fluminea (Bivalvia: Corbiculidae) in British Columbia // Nautilus. 1981. V. 95. P. 12–13.
9. Karatayev A.Y., Burlakova L.E., Padilla D.K. Contrasting distribution and impacts of two freshwater exotic suspension feeders, Dreissena polymorpha and Corbicula fluminea // The Comparative Roles of Suspension-feeders in Ecosystems. Dordrecht: Springer, 2005. С. 239–262.
10. Korniushin A.V. A revision of some Asian and African freshwater clams assigned to Corbicula fluminalis (Müller, 1774) (Mollusca: Bivalvia: Corbiculidae), with a review of anatomical characters and reproductive features based on museum collections // Hydrobiologia. 2004. V. 529. № 1. P. 255–270.
11. Lee T., Siripattrawan S., Ituarte C.F., Foighil O.D. Invasion of the clonal clams: Corbicula lineages in the New World // Amer. Malac. Bull. 2005. V. 20. P. 113–122.
12. McMahon R.F. The occurrence and spread of the introduced Asiatic freshwater clam, Corbicula fluminea (Müller, 1774), in North America: 1924–1982 // Nautilus. 1982. V. 96. P. 134–141.
13. Mouthon J. Sur la presence en France et en Portugal de Corbicula (Bivalvia: Corbiculidae) originaire d’Asie // Basteria. 1981. V. 45. P. 109–116.
14. Nichols S.J., Black M.G. Identification of larvae: the zebra mussel (Dreissena polymorpha), quagga mussel (Dreissena rostriformis bugensis), and Asian clam (Corbicula fluminea) // Can. J. Zool. 1994. V. 72. P. 406–417.
15. Paunovic M., Csanyi B., Knezevic S. et al. Distribution of Asian clams Corbicula fluminea (Müller, 1774) and C. fluminalis (Müller, 1774) in Serbia // Aquat. Invasions. 2007. V. 2. № 2. P. 99–106.
16. Perova S.N., Pryanichnikova E.G., Zhgareva N.N. Invasive species in the macrozoobenthos of Volga’s reservoirs // The 5th International Symposium Invasion of alien species in Holarctic: Book of Abstracts. Yaroslavl: Filigran, 2017. С. 88.
17. Pigneur L.M., Etoundi E., Aldridge D.C. et al. Genetic uniformity and long-distance clonal dispersal in the invasive androgenetic Corbicula clams // Mol. Ecol. 2014. V. 23. P. 5102–5116.
18. Popa O.P. Contributions to the knowledge of the mollusks from the Romanian Sector of the Danube between Calafat and Olteniba // Travaux du Museum National d’Histoire Naturelle Grigore Antipa. 2005. V. 48. P. 7–19.
19. Siripattrawan S., Park J.-K., Foighil D. Two lineages of the introduced Asian freshwater clam Corbicula occur in North America // J. Moll. Stud. 2000. V. 66. P. 423–429.
20. Skolka M., Gomoiu M.T. Alien invertebrates species in Romanian waters // Ovidius University, Annals of Natural Sciences, Biology. Ecology Series. 2001. V. 5. P. 51–55.
21. Sousa R., Antunes C., Guilhermino L. Ecology of the invasive Asian clam Corbicula fluminea (Müller, 1774) in aquatic ecosystems: an overview // Int. J. Limnol. 2008. V. 44. P. 85–94.
22. Vaate B.D., Hulea A.O. Range extension of the Asiatic clam Corbicula fluminea (Müller, 1774) in the River Danube: first record from Romania // Lauterbornia. 2000. V. 38. P. 23–26.
Н. А. Халько1, Л. И. Терещенко1, *, Ю. И. Малина1, М. И. Базаров1
СЕЗОННЫЕ И МЕЖГОДОВЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ СПЕКТРА ПИТАНИЯ ЕВРОПЕЙСКОЙ РЯПУШКИ Coregonus albula (L.) В оз. ПЛЕЩЕЕВО
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-он, Россия
e-mail: terluba@ibiw.yaroslavl.ru
Приведен список кормовых объектов ряпушки Coregonus albula (L.) в оз. Плещеево (Ярославская обл.) в 2013–2015 гг. Выявлены сезонные изменения частоты встречаемости их в пище и максимальной численности в желудке. Весной ряпушка питалась преимущественно копеподами, летом в питании доминировали кладоцеры, в осеннее время роль кладоцер и копепод была примерно одинакова. Межгодовые различия касались второстепенных видов.
Ключевые слова: ряпушка, питание, озеро Плещеево.
Cписок литературы
Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2002. Т. 1. 379 с.
2. Беляева К.И. Ряпушка (Coregonus albula L.) Топозера // Тр. Карело-Финского отд. Всесоюз. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. Т. 2. Петрозаводск, 1951. С. 69–88.
3. Боруцкий Е.В. Определитель свободноживущих пресноводных веслоногих раков СССР и сопредельных стран по фрагментам в кишечниках рыб. М.: Изд-во АН СССР, 1960. 118 с.
4. Дворянкин Г.А. Популяционные характеристики ряпушки Кенозерского национального парка // Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: Матер. Междунар. конф. Петрозаводск, 2009. С. 179–183.
5. Дрягин П.А. Ряпушка (Coregonus albula L.) Пустошинских озер Калининской области // Изв. Всесoюз. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1939. Т. 22. С. 161–183.
6. Кияшко В.И., Половкова С.Н. Питание и пищевые взаимоотношения рыб оз. Плещеево // Функционирование озерных экосистем. Рыбинск: Ин-т биологии внутренних вод АН СССР, 1983. С. 112–125.
7. Красная книга Российской Федерации: Животные. М.: АСТ; Астрель, 2001. 860 с.
8. Кривопускова Е.В., Масюткина Е.А., Соколов А.В., Шибаева М.Н. Характеристика состава пищи ряпушки (Coregonus albula) оз. Виштынецкого (Калининградская область) в современных условиях // Изв. Калиниград. гос. тех. ун-та. 2014. № 32. С. 107–115.
9. Лагановская-Селкере Р.Ю. Ряпушка – Coregonus albula (L.) озер Латвийской ССР и ее биология: Дис. … канд. биол. наук. Рига, 1957. 20 с.
10. Лагановская Р.Ю. Питание ряпушки в озерах Латвийской ССР // Тр. Ин-та биологии АН Латвийской ССР. Рыб. хоз-во. 1960. Т. 5. С. 51–67.
11. Методическое пособие по изучению питания и пищевых отношений рыб в естественных условиях. М.: Наука, 1974. 254 с.
12. Определитель пресноводных беспозвоночных Европейской части СССР. Л.: Гидрометеоиздат, 1977. 511 с.
13. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 2: Ракообразные. СПб.: Зоол. ин-т РАН, 1995. 631 с.
14. Рохмистров В.Л. Плещеево озеро: гидрологический очерк. Ярославль: Изд-во ВВО РЭА, 2002. 90 с.
15. Филимонова З.И. К вопросу о питании рыб-планктонофагов озер Карелии (питание ряпушки) // Вопросы ихтиологии и гидробиологии внутренних водоемов. Лениздат: Изв. ГосНИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1967. Т. 62. С. 262–269.
16. Экосистема озера Плещеево. Л.: Наука, 1989. 264 с.
Viljanen M. Food and food selection of cisco (Coregonus albula L.) in dysoligotrophic lake // Hydrobiologia. 1983. V. 101. P. 129–138.