Журнал "Биология внутренних вод"
№ 3 за 2019 год
В. В. Бульон1, *
Моделирование биотического потока энергии в планктонном сообществе экосистемы озерного типа при участии микробиальных организмов
1Зоологический институт РАН,
199034 Санкт-Петербург, Университетская наб., 1
e-mail: vboulion@mail.ru
Для экосистемы озерного типа построена масс-балансовая модель биотического потока энергии в планктонном сообществе с участием микробиальных организмов. Входные абиотические параметры модели: географическая широта, средняя глубина, цветность воды и содержание в воде общего фосфора. Модель сконструирована на базе опубликованных данных для Рыбинского водохранилища и озер Монголии. Анализ модели показал, что при подключении микробиальной “петли” к “традиционной” линейной трофической цепи биомасса и продукция метазойного планктона и планктоноядных рыб снижаются почти вдвое. Предполагается, что величина конечной продукции экосистемы (продукции рыб) тесно связана со степенью выраженности микробиальной “петли” на протяжении вегетационного сезона.
Ключевые слова: традиционная пищевая цепь, микробиальная “петля”, биотический поток энергии, биотический баланс водной экосистемы, моделирование .
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бульон В.В. Новый взгляд на парадигму фосфорного контроля в лимнологии // Успехи соврем. биол. 2016. Т. 136. № 3. С. 311–318.
2. Бульон В.В. Автохтонное и аллохтонное органическое вещество в трофической цепи озерных экосистем // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2017. Т. 321. № 2. С. 115–128.
3. Герасимов Ю.В. Популяционная динамика рыб Рыбинского водохранилища за период его существования: роль естественных и антропогенных факторов // Тр. Всерос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 2015. Т. 156. С. 67–90.
4. Даценко Ю.С., Пуклаков В.В., Эдельштейн К.К. Анализ влияния абиотических факторов на развитие фитопланктона в малопроточном стратифицированном водохранилище // Тр. Карельск. науч. центра РАН. 2017. № 10. С. 73–85.
5. Дебольский В.К., Григорьева И.Л., Комиссаров А.Б. и др. Современная гидрохимическая характеристика реки Волга и её водохранилищ // Вода: химия и экология. 2010. № 11. С. 2–12.
6. Копылов А.И., Косолапов Д.Б., Романенко А.В. и др. Микробная “петля” в планктонных сообществах озер разного трофического статуса // Журн. общ. биологии. 2007. Т. 68. № 5. С. 350–360.
7. Копылов А.И., Лазарева В.И., Пырина И.Л. и др. Микробная петля в планктонной трофической сети крупного равнинного водохранилища // Успехи соврем. биол. 2010. Т. 130. № 6. С. 544–556.
8. Копылов A.И., Косолапов Д.Б. Микробная “петля” в планктонных сообществах морских и пресноводных экосистем. Ижевск: КнигоГрад, 2011. 332 с.
9. Минеева Н.М. Первичная продукция в водохранилищах Волги. Ярославль: Принтхаус, 2009. 279 с.
10. Проект ОДУ в Рыбинском водохранилище на 2014 год // www.yarregion.ru.
11. Скопинцев Б.А., Бакулина А.Г. Органическое вещество в водах Рыбинского водохранилища // Тр. Ин-та биологии внутр. вод АН СССР. 1966. Вып. 13(16). С. 3–32.
12. Baines S.B., Pace M.L. The production of dissolved organic matter by phytoplankton and its importance to bacteria: Patterns across marine and freshwater systems // Limnol., Oceanogr. 1991. V. 36. № 6. P. 1078–1090.
13. Bratbak G. Carbon flow in an experimental microbial ecosystem // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1987. V. 36. P. 267–276.
14. Häkanson L., Boulion V.V. The lake foodweb – modelling predation and abiotic/biotic interactions. Leiden: Backhuys Publ., 2002. 344 p.
15. Jahnke R.A., Craven D.B. Quantifying the role of heterotrophic bacteria in the carbon cycle // Limnol., Oceanogr. 1995. V. 40. № 2. P. 436–441.
16. Kopylov A.I., Maslennikova T.S., Zabotkina E.A. et al. Structural and functional characteristics of planktonic microbial communities of the Rybinsk Reservoir in the impact area of a large industrial center// Inland Water Biol. 2012. V. 5. № 1. P. 36–45.
17. Nagata T., Takai K., Kawabata K. et al. The trophic transfer via a picoplankon – flagellate – copepods food chain during a picocyanobacterial bloom in Lake Biwa // Arch. Hydrobiol. 1996. V. 137. № 2. P. 145–160.
18. Nardini E., Kisand V., Letteri T. Microbial Biodiversity and molecular approach. Ispra: JRS, 2010. 49 p.
19. Nürnberg G.K., Shaw H. Productivity of clear and humic lakes: nutrients, phytoplankton, bacteria // Hydrobiologia. 1998. V. 382. № 1–3. P. 97–112.
20. Pace M.L. Heterotrophic microbial processes // The trophic cascade in lakes. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1993. P. 252–277.
21. Pace M.L., McManus G.B., Findlay S.E.G. Plankton community structure the fate of bacterial production in a temperate lake // Limnol., Oceanogr. 1990. V. 35. № 4. P. 795–808.
22. Pace M.L., Vaque D. The importance of Daphnia in determining mortality rates of protozoans and rotifers in lakes // Limnol., Oceanogr. 1994. V. 39. № 5. P. 985–996.
23. Pomeroy L.R., Williams P.J., Azam F., Hobbie J.E. The microbial loop // Oceanography. 2007. V. 20. № 2. P. 28–33.
24. Porter K.G., Paerl H.W., Hodson R.E. et al. Microbial interactions in lake food webs // Complex interactions in lake ecosystems. N.Y.: Springer Verlag, 1988. P. 209–227.
25. Stockner J.G., Porter K.C. Microbial food web in freshwater planktonic ecosystems // Complex interactions in lake ecosystems. N.Y.: Springer Verlag, 1988. P. 69–83.
26. Stockner J.G., Shortreed K.S. Algal picoplankton production and contribution to food webs in oligotrophic British Columbia lakes // Hydrobiologia. 1989. V. 173. № 2. P. 151–166.
27. Stone L., Weisburd R.S.J. Positive feedback in aquatic ecosystems // Trends in ecology and evolution. 1992. V. 7. № 8. P. 263–267.
28. Vezina A.F., Pace M.L. An inverse model analysis of planktonic food webs in experimental lakes // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 1994. V. 51. № 9. P. 2034–2044.
C. И. Генкал1, *, М. И. Ярушина2
Флора диатомовых водорослей (Bacillariophyta) водоемов и водотоков Тазовского полуострова (Западная Сибирь)
¹Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
2Институт экологии растений и животных УрО РАН,
620144 Екатеринбург, ул. 8 Марта, 202
e-mail: genkal@ibiw.yaroslavl.ru
Изучение фитопланктона водотоков и водоемов Тазовского п-ова (в основном бассейны рек Пойловаяха, Нюдя-Адлюдръёпоко, Монгоюрибей) с помощью сканирующей электронной микроскопии позволило в значительной степени расширить таксономический спектр Bacillariophyta на родовом и видовом уровнях – с 181 таксона из 28 родов до 338 видов и внутривидовых форм из 62 родов. Обнаружено 25 видов и разновидностей новых для флоры России, 36 форм из 17 родов определены только до рода. Максимальное таксономическое разнообразие отмечено в безымянном озере в верховье р. Собетъяха (106) и в низовье р. Собетъяха (91). Наиболее распространены в исследованных водных объектах Tabellaria flocculosa, Neidium ampliatum, Achnanthidium helveticum, Nitzsсhia alpina, Pinnularia sinistra.
Ключевые слова: Тазовский полуостров, водоемы, водотоки, фитопланктон, Bacillariophyta, электронная микроскопия.
Показать список литературы
Cписок литературы
. Балонов И.М. Подготовка водорослей к электронной микроскопии // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 87–90.
2. Водоросли: Справочник. Киев: Наук. думка, 1989. 608 с.
3. Генкал С.И., Ярушина М.И. Bacillariophyta водных экосистем арктических тундр западного Ямала (бассейн р. Харасавэйяха) // Альгология. 2014. № 2. С. 195–208.
4. Лезин В.А. Реки Тюменской области. Справочное пособие. Тюмень: Изд-во “Вектор Бук”, 2000. 142 с.
5. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
6. Московченко Д.В. Гидрохимические особенности низовий рек Мессояха и Монго юрибей (Ямало-Ненецкий автономный округ) // Вестн. экологии, лесоведения и ландшафтоведения. Тюмень: Изд-во ИПОС СО РАН, 2003. Вып. 4. С. 137–144.
7. Науменко Ю.И., Семенова Л.А. К изучению водоролей некоторых водоемов полуострова Ямал (Западная Сибирь) // Новости системат. низш. раст. СПб., 1996. № 31. С. 46–52.
8. Ресурсы поверхностных вод СССР. Гидрологическая изученность. Т. 15: Алтай и Западная Сибирь. Вып. 3: Нижний Иртыш и Нижняя Обь. Л.: Гидрометеоиздат, 1964. С. 353–354.
9. Стенина А.С. Диатомовые водоросли в озерах востока Большеземельской тундры. Сыктывкар: Коми НЦ УрО РАН, 2009. 176 с.
10. Ямало-Гыданская область (физико-географическая характеристика). Л.: Гидрометеоиздат, 1977. 309 с.
11. Ярушина М.И. К изучению водорослей фитопланктона водоемов Тазовской Субарктики // Науч. вестн. Ямало-Ненецкого автономного округа. Экосистемы Субарктики: структура, динамика, проблемы охраны. Салехард: Красный Север, 2007. Вып. 6 (50). Ч. 1. С. 53–62.
12. Ярушина М.И. Диатомовые водоросли водоемов Тазовского полуострова (Западная Сибирь) // Матер. ХIII Междунар. науч. конф. альгологов “Диатомовые водоросли: современное состояние и перспективы исследований”. Борок, 2013. С. 151–152.
13. Krammer K. Die cymbelloiden Diatomeen. Teil 1. Allgemeines und Encyonema part. // Bibl. Diatomologica. 1997. Bd 36. 382 S.
14. Krammer K. Pinnularia. Diatoms of Europe. 2000. V. 1. S. 1–703.
15. Krammer K. Diatoms of Europe. Cymbopleura, Delicata, Navicymbula, Gomphocymbellopsis, Afrocymbella. 2003. V. 4. S. 1–530.
16. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 1: Naviculaceae // Die Susswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart: Gustav Fisher Verlag, 1986. Bd 2/1. S. 1–876.
17. Krammer K., Lange- Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 2: Epithemiaceae, Bacillariaceae, Surirellaceae // Die Susswasserflora von Mitteleuropa. Stuttgart: Gustav Fisher Verlag, 1988. Bd 2/2. S. 1–536.
18. Lange-Bertalot H. Diatoms of Europe. Navicula sensu stricto, 10 genera separated from Navicula sensu lato Frustulia. 2001. V. 2. S. 1–526.
19. Lange-Bertalot H., Bak M., Witkowski A. Diatoms of Europe. Eunotia and some related genera. 2011. V. 6. S. 1–747.
20. Van de Vijver B., Beyens L., Lange-Bertalot H. The Genus Stauroneis in the Arctic and (Sub-) Antarctic Regions // Bibliotheca Diatomologica. 2004. Bd 51. P. 1–317.
К. И. Прокина1, 2, *
ГЕТЕРОТРОФНЫЕ ЖГУТИКОНОСЦЫ СФАГНОВЫХ БОЛОТ, ТЕРРАСНЫХ ЛЕСНЫХ И ПОЙМЕННЫХ ВОДОЕМОВ СРЕДНЕРУССКОЙ ЛЕСОСТЕПИ
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
2Лаборатория клеточной и молекулярной протистологии,
Зоологический институт РАН,
199034 Санкт-Петербург, Университетская набережная, 1
e-mail: kristin892@mail.ru
Изучены видовой состав и внешняя морфология гетеротрофных жгутиконосцев из сфагновых болот, озер и р. Усманка. Обнаружено 67 видов, из них 40 – новые для Воронежской обл. Максимальным видовым богатством характеризуются два террасных лесных озера – Чистое и Черепашье, минимальным – сфагновые болота. Наибольшее сходство фаун гетеротрофных жгутиконосцев отмечено для террасных лесных озер Маклок и Черепашье (64%), пойменного оз. Восьмерка и р. Усманка (58%). Даны морфологические описания и фотографии 15 видов: Codosiga botrytis, Bicosoeca petiolata, Clathromonas eiffelii, Paraphysomonas bandaiensis, Stokesiella acuminata, Actinomonas mirabilis, Actinomonas sp., Tremula vibrans, Protaspa sp., Naegleria gruberi, Distigma proteus, Heteronema polymorphum, Notosolenus rhombicus, Urceolus cyclostomus и Cryptomonas paramecium.
Ключевые слова: гетеротрофные жгутиконосцы, простейшие, видовой состав, морфология, озера, сфагновые болота, река.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Ветрова З.И. Бесцветные эвгленовые водоросли Украины. Киев: Наук. думка, 1980. 184 с.
2. Жуков Б.Ф. Атлас пресноводных гетеротрофных жгутиконосцев (биология, экология, систематика). Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод РАН, 1993. 160 с.
3. Жуков Б.Ф. Определитель бесцветных свободноживущих жгутиконосцев подотряда Bodonina Hollande // Тр. Ин-та биологии внутр. вод АН СССР. 1971. Вып. 21(24). С. 241–284.
4. Жуков Б.Ф., Мыльников А.П. Фауна зоофлагеллят очистных сооружений // Простейшие активного ила. Л.: Наука, 1983. С. 27–41.
5. Карпов С.А. Особенности развития культуры Codonosiga botrytis (Erh.) Stein (Choanoflagellida Kent, Protozoa) // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л.: Наука, 1981. № 52. С. 19–23.
6. Косолапов Д.Б., Косолапова Н.Г. Гетеротрофные жгутиконосцы и бактерии в планктоне загрязненной нефтью таежной реки // Сиб. экол. журн. 2008. № 1. С. 3–10.
7. Копылов А.И., Мыльников А.П., Амгаабазар Э. Гетеротрофные флагелляты в реках и озерах Монголии: видовой состав, численность, биомасса и продукция // Биология внутр. вод. 2006. № 1. С. 57–66.
8. Мазей Ю.А., Тихоненков Д.В., Мыльников А.П. Распределение гетеротрофных жгутиконосцев в малых пресных водоемах Ярославской области // Биология внутр. вод. 2005. № 4. С. 33–39.
9. Мыльников А.П., Косолапова Н.Г. Фауна гетеротрофных жгутиконосцев небольшого заболоченного озера // Биология внутр. вод. 2004. № 4. С. 18–28.
10. Мыльников А.П., Мыльникова З.М. Внешнее строение пресноводного жгутиконосца Bicosoeca petiolata Bourreliy (Bicosoecida, Protista) // Биология внутр. вод. 2006. № 4. С. 42–46.
11. Мыльников А.П., Тихоненков Д.В., Симдянов Т.Г. Фауна и морфология гетеротрофных жгутиконосцев из Воронцовской пещеры (Краснодарский край) // Зоол. журн. 2006. Т. 85. № 10. С. 1164–1175.
12. Уморин П.П. Взаимоотношение бактерий и жгутиконосцев при разрушении органического вещества // Журн. общ. биологии. 1976. Т. 37. № 6. С. 831–835.
13. Хлызова Н.Ю., Прокин А.А., Стародубцева Е.А. и др. Материалы к изучению террасных водоемов Усманского и Хреновского боров (I): распространение, происхождение, антропогенная трансформация, типология, цикличность гидрологического режима // Тр. Воронеж. гос. заповед. 2007. Вып. 24. С. 234–289.
14. Adl S.M., Simpson A.G.B., Lane C.E. et al. The revised classification of eukaryotes // J. Eukar. Microbiol. 2012. V. 59. P. 429–493.
15. Aydin E.E., Demirsoy A. The systematics of free-living heterotrophic flagellates of Beytepe Pond // Hacettepe J. Biol. and Chem. 2012. Special Issue. P. 337–342.
16. Dürrschmidt M., Cronberg G. Contribution to the knowledge of tropical chrysophytes: Mallomonadaceae and Paraphysomonadaceae from Sri Lanka. Algological Studies // Archiv für Hydrobiol. 1989. Suppl. vol. P. 15–37.
17. Fulton C. Cell differentiation in Naegleria gruberi // Ann. Rev. Microbiol. 1977. V. 31. № 1. P. 597–627.
18. Hammer Ø., Harper D.A.T., Ryan P.D. PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis // Palaeontol. Electron. 2001. V. 4. № 1. 9 p.
19. Hoef-Emden K., Melkonian M. Revision of the genus Cryptomonas (Cryptophyceae): a combination of molecular phylogeny and morphology provides insights into a long-hidden dimorphism // Protist. 2003. V. 154. № 3–4. P. 371–409.
20. Howe A.T., Bass D., Scoble J.M. et al. Novel cultured protists identity deep-branching environmental DNA clades of Cercozoa: new genera Tremula, Micrometopion, Minimassisteria, Budifila, Peregrinia // Protist. 2011. V. 162. P. 332–372.
21. Kiss A.K., Acs E., Kiss K.T., Török J.K. Structure and seasonal dynamics of the protozoan community (heterotrophic flagellates, ciliates, amoeboid protozoa) in the plankton of a large river (River Danube, Hungary) // Eur. J. Protist. 2008. V. 45 № 2. P. 121–138.
22. Kosolapova N.G., Kosolapov D.B. The diversity and distribution of heterotrophic nannoflagellates in the eutrophic lake Nero // Inland Water Biol. 2009. V. 2. № 1. P. 42–49.
23. Larsen J., Patterson D.J. Some flagellates (Protista) from tropical marine sediments // J. Nat. Hist. 1990. V. 24. P. 801–937.
24. Leadbeater B.S., Morton C. A microscopical study of a marine species of Codosiga James‐Clark (Choanoflagellata) with special reference to the ingestion of bacteria // Biol. J. Linn. Soc. 1974. V. 6. № 4. P. 337–347.
25. Lee W.J. Small free-living heterotrophic flagellates from marine sediments of Gippsland basin, South-Eastern Australia // Acta Protozool. 2015. V. 54. P. 53–76.
26. Lee W.J., Simpson A.G.B., Patterson D.J. Free-living heterotrophic flagellates from freshwater sites in Tasmania (Australia), a field survey // Acta Protozool. 2005. V. 44. P. 321–350.
27. Moestrup Ø., Thomsen H.A. Preparations of shadow cast whole mounts // Handbook of Phycological Methods. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1980. P. 385–390.
28. Nicholls K.H. Eight Chrysophyceae new to North America // Phycologia. 1984. V. 23. № 2. P. 213–221.
29. Patterson D.J., Larsen J. Biology of free-living heterotrophic flagellates. Oxford: Univ. Press, 1991. 503 p.
30. Preisig H.R., Hibberd D.J. Ultrastructure and taxonomy of Paraphysomonas (Chrysophyceae) and related genera 1 // Nord. J. Bot. 1982. V. 2. P. 397–420.
31. Preisig H.R., Hibberd D.J. Ultrastructure and taxonomy of Paraphysomonas (Chrysophyceae) and related genera 2 // Nord. J. Bot. 1982. V. 2. P. 601–638.
32. Pringsheim E.V. Contributions to our knowledge of saprophytic algae and flagellate. III. Astasia, Distigma, Menoidium and Rhabdomonas // New Phytologist. 1942. V. 41. № 3. P. 171–205.
33. Prokina K.I., Mylnikov A.P. Heterotrophic flagellates of Sphagnum bogs and lakes in Usman Pine Forest, Voronezh oblast, Russia // Inland Water Biol. 2017. V. 10. № 2. P. 182–191.
34. Schroeckh S., Lee W.J., Patterson D.J. Free-living heterotrophic euglenids from freshwater sites in mainland Australia // Hydrobiologia. 2003. V. 493. P. 131–166.
35. Thomsen H.A., Zimmermann B., Moestrup Ø., Kristiansen J. Some new freshwater species of Paraphysomonas (Chrysophyceae) // Nordic J. Bot. 1981. V. 1. № 4. P. 559–581.
36. Tikhonenkov D.V. Species diversity of heterotrophic flagellates in Rdeisky reserve weetlands // Protistology. 2007/2008. V. 5. № 2/3. P. 213–230.
37. Tikhonenkov D.V., Mylnikov A.P., Gong Y.C. et al. Heterotrophic flagellates from freshwater and soil habitats in subtropical China (Wuhan Area, Hubei Province) // Acta Protozool. 2012. V. 51. P. 63–77.
38. Vørs N. Heterotrophic amoebae, flagellates and heliozoan from the Tvarminne area, gulf of Finland, in 1988 – 1990 // Ophelia. 1992. V. 36. № 1. P. 1–109.
В. И. Лазарева1,*
Новые находки понто-каспийской хищной кладоцеры Cercopagis pengoi (Ostroumov, 1891) (Crustacea, Onychopoda) в водохранилищах рек Камы и Волги
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: lazareva_v57@mail.ru
По материалам комплексных работ летом 2015 и 2016 гг. на водохранилищах рек Волги и Камы выявлены новые местообитания понто-каспийской кладоцеры Cercopagis pengoi в Тетюшинском, Ульяновском, Волго-Камском и Камском плесах Куйбышевского водохранилища, а также на верхнем участке Воткинского и нижнем участке Камского водохранилищ (вблизи г. Пермь). Самая северная находка вселенца зарегистрирована в р. Кама у г. Добрянка (58°26′ с.ш.), по р. Кама вид расселился на ≥3° севернее, чем по р. Волге (54°57′ с.ш.). Во всех водоемах он обитал в верхнем 5-метровом слое воды и был представлен типичной формой C. (С.) pengoi. В августе в водоемах присутствовали молодые особи и партеногенетические самки (длина тела 1.2–2.0 мм), несущие 2–7 эмбрионов, единично отмечены самцы. Численность вселенца (≤100 экз./м3) сопоставима с таковой таксономически близкой гибридной формы рода Bythotrephes (B. brevimanus x B. cederströmii), обитающей совместно с C. pengoi. Обсуждаются пути расселения вида, особенности его пространственного распределения и экологии.
Ключевые слова: реки Кама и Волга, водохранилища, Cercopagis pengoi, новые местообитания, распространение, особенности экологии..
Показать список литературы
Cписок литературы
Балабанова З.М. Гидрохимическая характеристика Камского водохранилища (1954–1959 гг.) // Камское водохранилище как рыбохозяйственный водоем. Тр. Уральского отделения Гос. НИИ озер., реч. рыб. хоз-ва. Т. 5. Свердловск, 1961. С. 38–104.
2. Биологические инвазии в водных и наземных экосистемах. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2004. 436 с.
3. Бычек Е.А. Новые виды Polyphemoidea для волжских водохранилищ // Рос. журн. биол. инвазий. 2008. № 1. С. 2–5.
4. Волга и ее жизнь. Л.: Наука, 1978. 348 с.
5. Вольвич Л.И. Понто-каспийские Polyphemidae в Веселовском и Пролетарском водохранилищах // Гидробиол. журн. 1978. Т. 14. № 5. С. 24–25.
6. Вьюшкова В.П. Находка Corniger maeoticus в Волгоградском водохранилище // Зоол. журн. 1971. Т. 50. № 12. С. 1875–1876.
7. Гусейнова С.А., Абдурахманов Г.М. Современные особенности распределения зоопланктона некоторых районов Каспийского моря // Юг России: экология, развитие. 2009. № 4. С. 185–189.
8. Дзюбан Н.А. О районировании Куйбышевского водохранилища // Бюл. Ин-та биологии водохранилищ. 1960. № 8–9. С. 53–56.
9. Зотова Е.А., Малинина Ю.А. Виды-вселенцы зоопланктона водохранилищ Нижней Волги // Биоресурсы и биоразнообразие экосистем Поволжья: прошлое, настоящее, будущее. Саратов: Изд-во Саратов. ун-та, 2005. С. 221–223.
10. Лазарева В.И., Сабитова Р.З., Соколова Е.А. Особенности структуры и распределения позднелетнего (август) зоопланктона в водохранилищах Волги // Тр. Ин-та биологии внутр. вод им. И.Д. Папанина РАН. 2018. Вып. 82(85). С. 28–51.
11. Мордухай-Болтовской Ф.Д., Дзюбан Н.А. Изменения в составе и распределении фауны Волги в результате антропогенных воздействий // Биологические продукционные процессы в бассейне Волги. Л.: Наука, 1976. С. 67–81.
12. Мордухай-Болтовской Ф.Д., Ривьер И.К. Хищные ветвистоусые фауны мира. Л.: Наука, 1987. 182 с.
13. Науменко Е.Н., Телеш И.В. Влияние вселенца Cercopagis pengoi (Ostroumov) на структуру и функционирование сообщества зоопланктона Вислинского залива Балтийского моря // Изв. Самар. науч. центра РАН. 2008. Т. 10. № 5/1. С. 244–252.
14. Печеркин И.А., Двинских С.А., Тихонов В.П., Китаев А.Б. Факторы загрязнения водных масс Камского водохранилища и пути его предотвращения // Биологические ресурсы водоемов Западного Урала. Пермь: Пермск. ун-т, 1980. С. 9–14.
15. Попов А.И. Зоопланктон Саратовского водохранилища: общие сведения и роль биоинвазийных видов // Изв. Самар. науч. центра РАН. 2006. Т. 8. № 1. С. 263–272.
16. Попов А.И. Некоторые данные по видовому составу и структуре зоопланктона Саратовского водохранилища // Изв. Самар. науч. центра РАН. 2007. Т. 9. № 4. С. 1013–1019.
17. Попов А.И. Некоторые данные о состоянии зоопланктона Саратовского водохранилища в 2011 г. // Татищевские чтения: актуальные проблемы науки и практики: Матер. 9 Междунар. науч.-практ. конф. Тольятти: Волжский ун-т, 2012. С. 159–164.
18. Романова Е.П. Многолетняя динамика видового обилия зоопланктона Куйбышевского водохранилища // Теория ареалов: виды, сообщества, экосистемы (V Любищевские чтения). Тольятти: Ин-т экологии волжск. бассейна РАН, 2010. С. 159–164.
19. Шакирова Ф.М. Гребневик Mnemiopsis leidyi A. Agassiz, 1865 в прибрежных водах восточного Каспия (туркменский сектор) // Рос. журн. биол. инвазий. 2011. № 4. С. 88–97.
20. Шиганова Т.А., Камакин А.М., Жукова О.П. и др. Вселенец в Каспийское море – гребневик Mnemiopsis и первые результаты его воздействия на пелагическую экосистему // Океанология. 2001. Т. 41. № 4. С. 542–549.
21. Эдельштейн К.К. Водохранилища России: экологические проблемы и пути их решения. М.: ГЕОС, 1998. 277 с.
22. Gorokhova E., Aladin N., Dumont H.J. Further expansion of the genus Cercopagis (Crustacea, Branchiopoda, Onychopoda) in the Baltic Sea, with notes on the taxa present and their ecology // Hydrobiologia. 2000. V. 429. P. 207–218.
23. Korovchisky N.M. Morphological assessment of the North Eurasian interspecific hybrid forms of the genus Bythotrephes Leydig, 1860 (Crustacea: Cladocera: Cercopagididae) // Zootaxa. 2019. V. 4550. № 3. P. 340–356.
24. Krylov P.I., Bychenkov D.E., Panov V.E., Rodionova N.V., Telesh I.V. Distribution and seasonal dynamics of the Ponto-Caspian invader Cercopagis pengoi (Crustacea, Cladocera) in the Neva Estuary (Gulf of Finland) // Hydrobiologia. 1999. V. 393. P. 227–232.
25. MacIsaac H.J., Grigorovich I.A., Hoyle J.A. et al. Invasion of Lake Ontario by the Ponto-Caspian cladoceran predator Cercopagis pengoi // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 1999. V. 56. P. 1–5.
26. Makarewicz J.C., Grigorovich I.A., Mills E. et al. Distribution, fecundity, and genetics of Cercopagis pengoi (Ostroumov) (Crustacea, Cladocera) in Lake Ontario // J. Great Lakes Res. 2001. V. 27. P. 19–32.
27. Ojaveer H., Lumberg A. On the role of Cercopagis pengoi (Ostroumov) in Parnu Bay and the NE part of the Gulf of Riga ecosystem // Proc. Eston. Acad. Sci. Ecol. 1995. V. 5. № 1/2. P. 20–25.
28. Panov V.E., Rodionova N.V., Bolshagin P.V., Bychek E.A. Invasion biology of Ponto-Caspian onychopod cladocerans (Crustacea: Cladocera: Onychopoda) // Hydrobiologia. 2007. V. 590. P. 3–14.
29. Popov A.I. Alien species of zooplankton in Saratov Reservoir (Russia, Volga River) // Рос. журн. биол. инвазий. 2011. № 1. С. 86–90.
30. Therriault T.W., Grigorovich I.A., Kane D.D. et al. Range expansion of the exotic zooplankter Cercopagis pengoi (Ostroumov) into western Lake Erie and Muskegon Lake // J. Great Lakes Res. 2002. V. 28. P. 698–701.
А. В. Крылов1,*, А. О. Айрапетян2, А. И. Цветков1, Ю. В. Герасимов1, М. И. Малин1, Б. К. Габриелян2
МЕЖГОДОВЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ КОЛИЧЕСТВЕННЫХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ И СТРУКТУРЫ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ ЛИТОРАЛЬНОЙ ЗОНЫ И ПЕЛАГИАЛИ ОЗ. CЕВАН (AРМЕНИЯ) ПРИ КОЛЕБАНИЯХ МЕТЕОРОЛОГИЧЕСИХ УСЛОВИЙ И БИОМАССЫ РЫБ. I. ЛЕТНИЙ ЗООПЛАНКТОН
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
2Институт гидроэкологии и ихтиологии НАН РА,
Армения, 0014 г. Ереван, ул. Паруйра Севака, 7
e-mail: krylov@ibiw.yaroslavl.ru
На основе анализа межгодовых изменений летнего зоопланктона литоральной зоны и пелагиали оз. Севан показана связь его количественных характеристик с уровенным режимом, количеством атмосферных осадков, среднемесячной с апреля по июль температурой воздуха и ихтиомассой. Колебания уровня воды положительно коррелируют с количеством атмосферных осадков. При повышении уровня выявлен эффект “разбавления”, косвенно свидетельствующий, что количество накопленных биогенных веществ в водоеме превышает таковое, поступающих с водосбора. Положительное влияние на большинство показателей зоопланктона оказывало повышение среднемесячной температуры воздуха в период с апреля по июль, а также увеличение биомассы серебряного карася на фоне снижения биомассы сигов. Наиболее богатое сообщество зоопланктона формировалось в условиях сочетания низкой биомассы сигов, высокой температуры воздуха и минимального подъема уровня воды. Однако ведущий фактор, определяющий состояние зоопланктона оз. Севан, – контроль со стороны планктофагов. Об этом свидетельствует значительное сокращение количественных показателей планктонных беспозвоночных за счет ракообразных при повышении биомассы сига и снижении биомассы серебряного карася в годы с разными температурным и уровенным режимами.
Ключевые слова: ОЗЕРО СЕВАН, ЗООПЛАНКТОН, УРОВЕНЬ ВОДЫ, ТЕМПЕРАТУРА ВОЗДУХА, АТМОСФЕРНЫЕ ОСАДКИ, ИХТИОМАССА, LAKE SEVAN, ZOOPLANKTON, WATER LEVEL, AIR TEMPERATURE, ATMOSPHERIC PRECIPITATION, ICHTHYOMASS.
Показать список литературы
Cписок литературы
Балушкина Е.Б., Винберг Г.Г. Зависимость между массой и длиной тела у планктонных животных // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука, 1979. С. 169–172.
2. Даценко Ю.С., Пуклаков В.В., Эдельштейн К.К. Анализ влияния абиотических факторов на развитие фитопланктона в малопроточном стратифицированном водохранилище // Тр. Карельск. науч. центра РАН. 2017. № 10. С. 73–85.
3. Дзюбан Н.А. О формировании зоопланктона водохранилищ // Тр. VI совещания по проблемам биологии внутренних вод. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1959. C. 597–602.
4. Крупа Е.Г. Зоопланктон лимнических и лотических экосистем Казахстана. Структура, закономерности формирования. Saarbrücken: Palmarium Acad. Publ., 2012. 392 с.
5. Крупа Е.Г., Цой В.Н., Лопарева Т.А. и др. Многолетняя динамика гидробионтов озера Балхаш и ее связь с факторами среды // Вестн. АГТУ. Серия: Рыб. хоз-во. 2013. № 2. С. 85–96.
6. Крылов А.В., Мэндсайхан Б., Аюушсурэн Ч., Цветков А.И. Зоопланктон прибрежных участков разнотипных водохранилищ аридной зоны: влияние уровенного режима и метеорологических условий // Трансформация экосистем. 2018. № 1. С. 66–85.
7. Крылов А.В., Мэндсайхан Б., Аюушсурэн Ч., Цветков А.И. Зоопланктон русловой зоны разнотипных водохранилищ аридной зоны: влияние уровенного режима и метеорологических условий // Трансформация экосистем. 2019. № 2(1). С. 1–16.
8. Лазарева В.И. Структура и динамика зоопланктона Рыбинского водохранилища. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2010. 183 с.
9. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
10. Монаков А.В. Зоопланктон волжского устьевого участка Рыбинского водохранилища за период 1947–1954 гг. // Тр. Биол. ст. “Борок-3”. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1958. С. 214–225.
11. Мордухай-Болтовской Ф.Д., Дзюбан Н.А. Формирование фауны беспозвоночных крупных водохранилищ // Экология водных организмов. М.: Наука, 1966. С. 98–102.
12. Налбандян М.А. Экологическая оценка выноса биогенных элементов с различных почв водосборного бассейна Большого Севана: Автореф. дис. … на соискание уч. степени канд. биол. наук. Эчмиадзин, 1993. 22 с.
13. Озеро Севан. Экологическое состояние в период изменения уровня воды. Ярославль: Филигрань, 2016. 328 с.
14. Экология озера Севан в период повышения его уровня. Результаты исследований Российско-Армянской биологической экспедиции по гидроэкологическому обследованию озера Севан (Армения) (2005–2009 гг.). Махачкала: Наука ДНЦ, 2010. 348 с.
15. Asatryan V.L., Barseghyan N.E., Vardanyan T.V. et al. Analysis of biocenoses conditions formed in shallow areas of Maly Sevan (Armenia) during the period of water level rise // Inland Water Biol. 2016. V. 9. № 1. P. 1–7.
16. Gliwicz Z.M. On the different nature of top-down and bottom-up effects in pelagic food webs // Freshwater Biol. 2002. V. 47. P. 2296–2312.
17. Murdoch W.W. Switching in general predators: experiments on predator specificity and stability of prey populations // Ecol. Monographs. 1969. V. 39. P. 335–354.
18. Murdoch W.W., Avery S., Smyth M.E.B. Switching in predatory fish // Ecology. 1975. V. 56. P. 1094–1105.
19. Statistical Committee of the Republic of Armenia. [сайт]. http://armstatbank.am.
Д. В. Усламин1, *, О. А. Алешина1, С. Н. Гашев1, А. В. Градова1
Таксономический состав и структура макрозообентоса в таежных озерах нефтедобывающих районов Западной Сибири
Тюменский государственный университет,
625003 Тюмень, ул. Семакова, 10
e-mail: uslamin.d.w@gmail.com
Исследован макрозообентос в 14 таежных озерах с разным содержанием тяжелых металлов и нефтепродуктов в донных отложениях (от слабо до экстремально загрязненных). Обнаружено 65 видов и таксонов рангом ниже рода беспозвоночных. По видовому богатству и частоте встречаемости в большинстве озер лидируют хирономиды. Фаунистическое сходство обследованных озер по коэффициенту Чекановского–Съеренсена варьировало от 10 до 63%. В группе озер с экстремальным содержанием нефтепродуктов не отмечено угнетения донных сообществ, структурообразующий комплекс представлен олигохетами, моллюсками и хирономидами. Индекс Матковского не выявил существенного отклонения этой группы озер от фоновых. Не обнаружены достоверные корреляции структурных показателей макрозообентоса (общего числа видов, числа видов в таксономических группах) с содержанием нефтепродуктов, но установлены для тяжелых металлов.
Ключевые слова: макрозообентос, видовой состав, таксономическая структура, нефтепродукты, тяжелые металлы, корреляция .
Показать список литературы
Cписок литературы
Алекин О.А. Основы гидрохимии. Л.: Гидрометеоиздат, 1970. 443 с.
2. Биохимическая трансформация нефтяных углеводородов в водах Западной Сибири // Вестн. Тюмен. гос. ун-та. 2012. № 12. С. 38–48.
3. Воробьев Д.С. Влияние нефти и нефтепродуктов на макрозообентос // Изв. Томск. политех. ун-та. 2006. Т. 309. № 3. С. 42–45.
4. Гашев С.Н., Бетляева Ф.Х., Лупинос М.Ю. Математические методы в биологии: анализ биологических данных в системе STATISTICA. Тюмень: Изд-во Тюмен. гос. ун-та, 2014. 207 с.
5. Гидрохимические показатели состояния окружающей среды. Справочные материалы. М.: Эколайн, 2000. 87 с.
6. Голубков С.М. Водные экосистемы в условиях экстремальных факторов внешней среды: влияние высокой солености воды и других видов экологического стресса // IX Съезд Гидробиол. об-ва РАН: Тез. докл. Тольятти, 2006. Т. 1. С. 109.
7. ГОСТ 17.1-1.02-77 Охрана природы. Гидросфера. Классификация водных объектов, действует на всей территори РФ с изменениями от 1.07.2013 г. 1977. 13 c.
8. Ершов Ю.В., Баканов А.И. Бисеров В.И., Бикбулатова Е.М. Органическое вещество, битумоиды и углеводороды в донных отложениях водохранилищ Волги и их влияние на макрозообентос // Органическое вещество донных отложений волжских водохранилищ. СПб.: Гидрометеоиздат, 1994. С. 74–92.
9. Жукова О.Н., Безматерных Д.М. Состав и структура макрозообентоса Карасукской озерно-речной системы (Западная Сибирь) // Мир науки, культуры, образования. 2010. № 2. С. 285–289.
10. Исаченко-Боме Е.А. Оценка современного состояния водных экосистем бассейна реки Туры по структуре макрозообентоса в условиях хронического антропогенного воздействия: Дис. … канд. биол. наук. Борок, 2004. 268 c.
11. Кожахметова А.Н. Биондикационное исследование аккумуляции нефтепроизводных, тяжелых металлов в организме гидробионтов казахстанской зоны Каспия Фундаментальные исследования. 2015. № 2. Ч. 1. С. 58–62.
12. Киреева И.Ю. Особенности мониторинга биоразнообразия водных экосистем // Научный альманах. 2015. № 5(7). С. 158–165.
13. Козин В.В. Кондо-Ваховская ландшафтная область // Большая Тюменская энциклопедия. 2004. Т. 2. С. 120–121.
14. Ковальчук Л.А., Чёрная Л.В., Тарханова А.Э., Нохрина Е.С. Основной обмен и содержание микроэлементов в тканях медицинских пиявок из природных популяций и выращенных в искусственных условиях биофабрики // Вестн. Урал. мед. акад. науки. 2007. № 4. С. 49–53.
15. Комплексное гидрохимическое и биологическое исследование качества вод и состояния водных и околоводных экосистем. Методическое руководство. Ч. 1: Полевые исследования ТюмГУ. Тюмень: Изд-во Тюмен. гос. ун-та, 2011. 128 с.
16. Кузикова В.Б. Зообентос водоемов Обского бассейна и его использование для оценки качества водной среды // Гидробионты Обского бассейна в условиях антропогенного воздействия. СПб.: Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1995. Вып. 327. С. 49–55.
17. Литвинов А.С., Баканов А.И., Законнов В.В., Кочеткова М.Ю. О связи показателей донных сообществ с некоторыми характеристиками среды обитания // Вод. ресурсы. 2004. Т. 31. № 5. С. 611–618.
18. Матковский А.К. Один из подходов оценки предельно допустимого вредного воздействия (ПДВВ) на водоем // Контроль и реабилитация окружающей среды: Матер. IV Междунар. симп. Томск, 2004. С. 145–146.
19. Махлун А.В. Микроэлементный состав донных сообществ авандельты Волги и западной части Северного Каспия: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Севастополь, 2017. 23 с.
20. Моисеенко Т.И. Водная экотоксикология: теоретические и прикладные аспекты. М.: Наука, 2009. 400 с.
21. Моисеенко Т.И., Гашев С.Н., Шалабодов А.Д. Качество вод и устойчивость экосистем: теоретические и прикладные аспекты исследований // Вестн. Тюмен. гос. ун-та. 2012. № 12. С. 6–16.
22. Московченко Д.В., Валеева Э.И. Исследование состава донных отложений рек бассейна нижней Оби (в пределах Ханты-Мансийского автономного округа) // Вестн. экологии, лесоведения и ландшафтоведения. 2001. № 2. С. 138–142.
23. Московченко Д.В., Бабушкин А.Г. Экогеохимия гидросферы на участках нефтедобычи Западной Сибири. Saarbrüсken: LAP Lambert Acad. Publ., 2012. 116 с.
24. Немировская И.А. Нефтяные углеводороды в океане // Природа. 2008. № 3. С. 17–27.
25. Одум Ю. Экология. М.: Мир, 1986. Т. 2. 376 с. (Odum E.P. Basic ecology. Philadelphia: CBS College Publ., 1983. V. 2. 376 p).
26. Песенко Ю.А. Принципы и методы количественного анализа в фаунистических исследованиях. М.: Наука, 1982. 287 с.
27. Постановление № 441п Правительства ХМАО-Югры от 10.10.2004 г. “Об утверждении регионального норматива “Предельно допустимый уровень содержания нефти и нефтепродуктов в донных отложениях поверхностных водных объектов на территории Ханты-Мансийского автономного округа – Югры” (с изменениями на: 22.07.2016). Ханты-Мансийск: Правительство ХМАО, 2016. 3 с.
28. Родь Ю.С. Влияние нефтегазового сектора на экономику Ханты-Мансийского автономного округа – ЮГРЫ // Экономика и социум. 2014. № 3(12). С. 116–120.
29. Рузанова А.И., Воробьев Д.С. Трансформация донных сообществ в условиях нефтяного загрязнения // Экология пойм сибирских рек и Арктики. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 1999. С. 71–78.
30. Сапрыкина А.Ю. Технология снижения содержания нефтепродуктов в воде малых и средних рек: Автореф. дис. … канд. техн. наук. Екатеринбург, 2004. 32 с.
31. Степанова В.Б., Шарапова Т.А. Фауна хирономид Западной Сибири // Вестн. экологии, лесоведения и ландшафтоведения. Тюмень: Изд-во Ин-та проблем освоения Севера РАН, 2001. С. 117–124.
32. Уварова В.И. Гидрохимическая характеристика водотоков Нижней Оби // Вестн. экологии лесоведения и ландшафтоведения. 2011. № 11. С. 132–142.
33. Шарапова Т.А. Зообентос и зооперифитон р. Иртыш // Гидробиол. журн. 1998. № 4. С. 32–44.
34. Шарапова Т.А. К изучению зообентоса бассейна р. Демьянки // Вестн. экологии лесоведения и ландшафтоведения. 2012. № 12. С. 111–118.
35. Элементный состав нефти и рассеянного органического вещества и методы их изучения; учебно-методическое пособие. Казань: Казан. ун-т, 2012. 25 с.
36. Юхнева B.C. Бентос нижней Оби и использование его рыбами: Тез. докл. 11 съезда ВГБО. Кишинев, 1970. С. 423–424.
37. Яныгина Л.В. Структура зообентоса и оценка экологического состояния р. Ишим // Мир науки, культуры, образования. 2009. № 6. С. 21–22.
38. Чемагин А.А. Биотическая аккумуляция тяжелых металлов макрозообентосом нижнего Иртыша // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 5. http://www.science-education.ru/ru/article/view?id=21455.
39. Черная Л.В. Эколого-физиологические особенности кровососущих и хищных пиявок (Hirudinea, Hirudinidae): Автореф. дис. … на соиск. уч. степени д.б.н. Тюмень, 2015. 36 с.
40. Чернышова И.В. Функциональное значение моллюсков в миграции тяжелых металлов: Автореф. дис. … на соиск. уч. степени к.б.н. М., 1992. 28 с.
41. Bury N.R. Nutritive metal uptake in teleost fish // J. Exp. Biol. 2003. V. 206. № 1. P. 11–23.
Т. Г. Шихова1, *, И. Ю. Митрофанова2
Пресноводные моллюски верхнего участка Вятско-Камского междуречья © 2019 г. Т. Г. Шихова1, *, И. Ю. Митрофанова2
1ВНИИ охотничьего хозяйства и звероводства им. проф. Б.М. Житкова,
610000 Киров, ул. Преображенская, 79
2Пермское отделение “ГосНИОРХ”,
614002 Пермь, ул. Чернышевского, 3
e-mail: biota.vniioz@mail.ru
Обобщены сведения по структуре малакоценозов рек верхнего участка Вятско-Камского бассейна в условиях незарегулированного стока. Малакофауна сформирована преимущественно видами с европейским и европейско-западносибирским типами ареалов (58 видов из девяти семейств). Моллюски характерны для всех бентических комплексов р. Вятка. Максимальное видовое разнообразие зарегистрировано в верховьях реки и представлено в основном Gastropoda (53%). Ниже по течению преобладают Bivalvia (58–71%). Состав Unionidae меняется по продольному профилю реки: в зарастающих верховьях обычны Unio crassus и Pseudanodonta kletti, в русле свободного течения – Unio tumidus и U. pictorum. Состав Sphaeriidae относительно стабилен – преобладают Sphaerium radiatum, Pisidium amnicum и Sphaerium rivicola. В большинстве бентоценозов рек Вятка и Кама по численности и биомассе доминируют Bivalvia.
Ключевые слова: : пресноводная малакофауна, количественные показатели, река Вятка, река Кама..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Богатов В.В., Кияшко П.В. Класс двустворчатые моллюски // Определитель зоопланктона и зообентоса пресных вод Европейской России. Т. 2: Зообентос. М.; СПб.: Товарищество науч. изданий КМК, 2016. С. 285–334.
2. Кияшко П.В., Солдатенко Е.В., Винарский М.В. Класс брюхоногие моллюски // Определитель зоопланктона и зообентоса пресных вод Европейской России. Т. 2: Зообентос. М.; СПб.: Товарищество науч. изданий КМК, 2016. С. 335–438.
3. Корнюшин А.В. Двустворчатые моллюски надсемейства Pisidioidae Палеарктики (фауна, систематика, филогения). Киев: Ин-т зоологии НАН Украины, 1996. 175 с.
4. Леви Э.К. Тип моллюски // Животный мир Кировской области. Киров: Киров. гос. пед. ин-т, 1971. Т. 1. С. 177–189.
5. Лешко Ю.В. Моллюски // Фауна европейского Северо-Востока России. СПб.: Наука, 1998. Т. 5. Ч. 1. 168 с.
6. Лешко Ю.В. Бентос реки Вятки // Тр. Коми НЦ УрО РАН. Сыктывкар, 2005. № 177. С. 248–257.
7. Лешко Ю.В., Шадрин Н.Ю., Паньков Н.Н. Фауна и зоогеографическая характеристика Западного Урала и Тимана // Тр. Коми НЦ УрО РАН. Сыктывкар, 2001. № 166. С. 152–164.
8. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
9. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. Зообентос и его продукция. Л.: Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1984. 51 с.
10. Митрофанова И.Ю., Антонова Е.Л. Бентофауна реки Вятки // Тр. Пермск. отд. Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. Пермь, 2007. Т. 6. С. 80–100.
11. Овчанкова Н.Б., Паньков Н.Н., Шадрин Н.Ю. Фауна и зоогеографическая характеристика моллюсков надсемейства Pisidioidae севера и востока Европейской России // Вестн. Удмурт. ун-та. Биология. Науки о земле, 2015. Т. 25. Вып. 2. С. 126–134.
12. Паньков Н.Н. Зообентос текучих вод Прикамья. Пермь: Гармония, 2000. 192 с.
13. Паньков Н.Н., Овчанкова Н.Б., Шадрин Н.Ю. Фауна прудовиков (Gastropoda: Lymnaeidae) востока Европейской России и Урала // Вестн. Пермск. ун-та. 2015. Вып. 4 Биология. С. 317–326.
14. Поздеев И.В. Донная фауна некоторых водоемов и водотоков Удмуртии // Вестн. Удмурт. ун-та. 2011. Вып. 3. С. 75–83.
15. Поздеев И.В. Роль личинок хирономид в структуре донных сообществ рек бассейна верхней и средней Камы: Автореф. дис. … канд. биол. наук. СПб., 2006. 22 с.
16. Ресурсы поверхностных вод СССР. Средний Урал и Приуралье. Л.: Гидрометеоиздат, 1973. Т. 11. 847 с.
17. Старобогатов Я.И. Фауна моллюсков и зоогеографическое районирование континентальных водоемов земного шара. Л.: Наука, 1970. 372 с.
18. Старобогатов Я.И., Прозорова Л.А., Богатов В.В., Саенко Е.М. Моллюски // Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 6: Моллюски, Полихеты, Немертины. СПб.: Наука, 2004. С. 9–498.
19. Шадрин Н.Ю. К фауне моллюсков верхней Камы // Актуальные проблемы биологии и экологии: Тез. докл. науч. конф. Сыктывкар: Ин-т биологии Коми науч. центра УрО РАН, 2000. С. 259–260.
20. Шадрин Н.Ю., Паньков Н.Н. Фауна пресноводных моллюсков Пермской области // Вестн. Пермск. ун-та. 2000. Вып. 2. С. 255–264.
21. Шитиков В.К., Зинченко Т.Д. Изменение индексов таксономического разнообразия сообществ макрозообентоса по продольному градиенту рек // Принципы экологии. 2013. № 2. С. 46–56. doi: 10.15393/j1.art.2013.2561.
22. Шихова Т.Г. Тип Моллюски // Животный мир Кировской области (беспозвоночные). Киров: Вятск. гос. пед. ун-т, 2001. Т. 5. С. 67–83.
23. Шихова Т.Г. Фауна моллюсков бассейна реки Вятки и Вятско-Двинской водораздельной области: Автореф. дис. … канд. биол. наук. СПб., 2004. 26 с.
24. Шихова Т.Г. Пресноводная малакофауна бассейна р. Чепца // Актуальные вопросы современной малакологии: Сб. науч. тр. Всерос. науч. конф., посвящ. 100-летнему юбилею И.М. Лихарева и П.В. Матёкина. Белгород: ИД “Белгород”, 2017. С. 107–113.
25. Banarescu P. Zoogeography of fresh waters. 2. Distribution and dispersal of freshwater animals in North America and Eurasia. Wiesbaden: Aula-Verlag, 1992. P. 519–1091.
26. Klishko O., Lopes-Lima M., Froufe E. еt al. Taxonomic reassessment of the freshwater mussel genus Unio (Bivalvia: Unionidae) in Russia and Ukraine based on morphological and molecular data // Zootaxa. 2017. V. 4286. № 1. P. 93–112. doi 10.11646/zootaxa.4286.1.4.
27. Klishko О.К., Lopes-Lima M., Bogan A.E. et al. Morphological and molecular analyses of Anodontinae species (Bivalvia, Unionidae) of Lake Baikal and Transbaikalia // PLoS ONE. 2018. V. 13. № 4. doi 10.1371/journal.pone.0194944.
28. Kruglov N.D., Starobogatov Ya.I. Guidae to Recent molluscs of northern Eurasia. 3. Annotated and illustrated catalogue of species of the family Lymnaeidae (Gastropoda, Pulmonata, Lymnaeiformes) of Palaearctic and adjacent river drainage areas. Part 1 // Ruthenica. 1993. V. 3. № 1. P. 65–92.
29. Sorensen T. A method of establishing groups of equal amplitude in plant sociology based on similarity of species content // Kongelige Danske Videnskabernes Selskab. Biol. krifter. 1948. Bd 4. P. 1–34.
30. Vinarski M.V., Kantor Yu.I. Analytical catalogue of fresh and brackish water molluscs of Russia and adjacent countries. M.: A.N. Severtsov Institute of Ecology and Evolution of RAS, 2016. 544 p.
О. А. Розенцвет1, *, В. Н. Нестеров2, Е. С. Богданова1, 2, О. Н. Макурина2
Влияние NaCl на фотосинтетические показатели и структурные компоненты мембран макрофита Hydrilla verticillata (L.f.) Royle
1Институт экологии Волжского бассейна РАН,
445003 Тольятти, ул. Комзина, 10
2Самарский национальный исследовательский университет им. академика С.П. Королева,
443011 Самара, ул. Потапова, 64
e-mail: olgarozen55@mail.ru
Исследовано влияние разных концентраций NaCl на фотосинтетические показатели и структурные компоненты мембран Hydrilla verticillata (L.f.) Royle. Действие NaCl в диапазоне концентраций 5–10 г/л в течение 24 ч приводило к увеличению фотосинтеза, содержания пигментов и перестройке липидных компонентов. Концентрация NaCl 20 г/л оказывала выраженный негативный эффект на мембранную проницаемость и фотосинтез растений. В гликолипидах отмечено снижение относительного содержания моногалактозилдиацил-глицерина, увеличение дигалактозилдиацилглицерина и сульфолипида. В фосфолипидах с увеличением концентрации NaCl уменьшалось относительное содержание фосфатидилхолина, -этаноламина, -инозита и повышался вклад фосфатидилглицерина. Изменение стеринового компонента связано со снижением концентрации стигмастерина и увеличением – β-ситостерина. Адаптивные перестройки в составе пигментов и структуре мембран свидетельствуют о высокой функциональной активности фотосинтетического аппарата H. verticillata, что позволяет данному виду реализовать устойчивость в засоленных экотопах.
Ключевые слова: Hydrilla verticillata, засоление среды, адаптация, фотосинтез, клеточные мембраны, липиды. .
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Валитова Ю.Н. Связывание стеринов влияет на функционирование мембран и состав сфинголипидов в корнях пшеницы // Биохимия. 2010. Т. 75. № 5. С. 644–653.
2. Гавриленко В.Ф., Жигалова Т.В. Большой практикум по фотосинтезу. М.: Академия, 2003. 256 с.
3. Гришенкова А.С., Лукаткин Н.Н. Определение устойчивости растительных тканей к абиотическим стрессам с использованием кондуктометрического метода // Поволж. экол. журн. 2005. № 1. С. 3–11.
4. Грищенко Л.И., Акбаев М.Ш., Васильков Г.В. Болезни рыб и основы рыболовства. М.: Колос, 1999. 456 с.
5. Ковда В.А. Проблемы опустынивания почв аридных регионов мира. М.: Наука, 2008. 415 с.
6. Матвеев В.И., Соловьева В.В., Саксонов С.В. Экология водных растений. Самара: Изд-во Самар. науч. центра РАН, 2005. 282 с.
7. Нестеров В.Н., Розенцвет О.А., Богданова Е.С. Влияние абиотических факторов на состав жирных кислот Ulva intestinalis // Сиб. экол. журн. 2013. № 4. С. 587–594.
8. Нестеров В.Н., Розенцвет О.А., Мурзаева С.В. Изменение состава липидов у пресноводного растения Hydrilla verticillata (L. f.) Royle в условиях аккумуляции и элиминации ионов тяжелых металлов // Физиол. растений. 2009. Т. 56. № 1. С. 85–93.
9. Розенцвет О.А., Нестеров В.Н., Богданова Е.С. Структурные и физиолого-биохимические аспекты солеустойчивости галофитов // Физиол. растений. 2017. Т. 64. № 4. С. 251–265.
10. Al-Hasan R.H., Ali A.M., Ka'wash H.H., Radwan S.S. Effect of salinity on the lipid and fatty acid composition of the halophyte Navicula sp.: potential in mariculture // J. Appl. Phycol. 1990. V. 2. P. 215–222.
11. Bowes G. Single-cell C4 photosynthesis in aquatic plants // C4 photosynthesis and related CO2 concentrating mechanisms. Dordrecht; Netherlands: Springer, 2011. P. 63–80.
12. Chen V., Zhang L.-L., Tuo Y.-C. et al. Treatability thresholds for cadmium-contaminated water in the wetland macrophyte Hydrilla verticillata (L.f.) Royle // Ecol. Eng. 2016. V. 96. P. 178–186.
13. Dogan M., Demirors Saygideger S. Physiological effects of NaCl on Ceratophyllum demersum L., a submerged rootless aquatic macrophyte // Iran. J. Fish. Sci. 2018.V. 17. P. 346–356.
14. Kobayashi I.K., Endo K., Wada H. Roles of lipids in photosynthesis // Lipids in plant and algae development. Switzerland: Springer Int. Publ., 2016. P. 21–49.
15. Kumar J.I.N., Soni H., Kumar R.N., Bhatt I. Macrophytes in phytoremediation of heavy metal contaminated water and sediments in Pariyej community reserve, Gujarat, India // Turk. J. Fish. Aquat. Sci. 2008. V. 8. P. 193–200.
16. Leegood R.C. C4 photosynthesis: principles of CO2 concentration and prospects for its introduction into C3 plants // J. Exp. Bot. 2002. V. 53. P. 581–590.
17. Lichtenthaler K., Welburn A.R. Determination of total carotenoids and chlorophylls a and b of leaf extracts in different solvents // Biochem. Soc. Transact. 1983. V. 11. P. 591–592.
18. Madeira P.T., Jacono C.C., Van T.K. Monitoring Hydrilla using two RAPD procedures and the nonindigenous aquatic species database // J. Aquat. Plant Manag. 2000. V. 38. P. 33–40.
19. True-Meadows S., Haug E.J., Richardson R.J. Monoecious Hydrilla – A review of the literature // J. Aquat. Plant Manag. 2016. V. 54. P. 1–11.
20. Twilley R.R., Barko J.W. The growth of submersed macrophytes under experimental salinity and light conditions // Estuaries. 1990. V. 13. P. 311–321.
21. Upadhyay R.K., Panda S.K. Salt tolerance of two aquatic macrophytes, Pistia stratiotes and Salvinia molesta // Biol. Plantar. 2005. V. 49. P. 157–159.
22. Xu X.-Q., Beardall J. Effect of salinity on fatty acid composition of a green microalga from an antarctic hypersaline lake // Phytochemistry. 1997. V. 45. P. 655–658.
Е. В. Ганжа1, Е. Д. Павлов1,*
Суточная динамика тиреоидных и половых стероидных гормонов в крови молоди радужной форели
1Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН,
119071 Москва, Ленинский проспект, 33
e-mail: *e-mail: p-a-v@nxt.ru
Исследована суточная динамика содержания тиреоидных и половых стероидных гормонов в крови годовиков радужной форели. Выявлены половые различия суточной динамики исследованных гормонов и показателя отношения тестостерона к эстрадиолу-17β. Показано, что максимумы и минимумы концентраций тиреоидных гормонов в течение суток у самок и самцов находятся в противофазе.
Ключевые слова: радужная форель Oncorhynchus mykiss, тироксин, трийодтиронин, тестостерон, эстрадиол-17β.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Ганжа Е.В., Павлов Е.Д., Костин В.В. Павлов Д.С. Суточная динамика тиреоидных и половых стероидных гормонов в крови годовиков жилой формы черноморской кумжи Salmo trutta labrax // Изв. РАН. Сер. биол. 2015. № 1. С. 90–94.
2. Павлов Е.Д., Ганжа Е.В., Нгуен Вьет Туи, Нгуен Ти Хуан Ту. Состояние половых желёз годовиков триплоидной радужной форели в высокогорных условиях южного Вьетнама при воздействии андрогенного гормона // Вопр. ихтиологии. 2013. Т. 53. № 6. C. 726–740.
3. Павлов Е.Д., Нгуен Вьет Туи, Нгуен Ти Хуан Ту. Состояние половых желёз молоди триплоидной форели Oncorhynchus mykiss в условиях южного Вьетнама после искусственной инверсии пола // Вопр. ихтиологии. 2010. Т. 50. № 5. С. 675–684.
4. Comeau L.A., Campana S.E. Correlations between thyroidal and reproductive endocrine status in wild Atlantic cod // Can. Techn. Rept. Fish. Aquat. Sci. 2006. № 2682. 14 p.
5. Cyr D.G., Eales J.G. Interrelationships between thyroidal and reproductive endocrine systems in fish // Fish Biol. and Fisher. 1996. V. 6. P. 165–200.
6. Dolomatov S.I., Kubyshkin А.V., Kutia S.A., Zukow W. Role of thyroid hormones in fishes // J. Health Sci. 2013. V. 3. № 9. P. 279–296.
7. Ebbesson L.O.E., Bjornsson B.T., Ekstrom P., Stefansson S.O. Daily endocrine profiles in parr and smolt Atlantic salmon // Comp. Biochem. Physiol. 2008. V. 151. № 4. P. 698–704.
8. https://www. fishbase.org/Summary/SpeciesSummary.php?ID=239&AT=rainbow+trout.
9. Hulbert A.J. Thyroid hormones and their effects a new perspective // Biological review. 2000. V. 75. P. 519–631.
10. Loter T.C., MacKenzie D.S., McLeese J., Eales J.G. Seasonal changes in channel catfish thyroid hormones reflect increased magnitude of daily thyroid hormone cycles // Aquaculture. 2007. V. 262. P. 451–460.
11. MacCrimmon H.R., Gordon J.D. Salmonid spawning runs and estimated ova production in Normandale Creek of Lake Erie // J. Great Lakes Res. 1981. V. 7. P. 155–161.
12. MacCrimmon H.R., Gots B.L. Rainbow trout in the Great Lakes // Ontario Ministry of Natural Resources. 1972. 66 p.
13. Nelson E.R., Allan E.R., Pang F.Y., Habibi H.R. Thyroid hormone and reproduction: regulation of estrogen receptors in goldfish gonads // Mol. Reprod. Dev. 2010. V. 77. № 9. P. 784–794.
14. Pavlov D.S., Ganzha E.V., Nemova N.N. et al. The Level of Thyroid and Sex Steroid Hormones in the Brown Trout Salmo trutta in Three Rivers of Karelia // Inland Water Biol., 2019. V. 12. № 2. P. 00–00.
15. Shields C.A., Eales J.G. Thyroxine 5’-monodeiodinase activity in hepatocytes of rainbow trout, Salmo gairdneri: distribution, effects of starvation, and exogenous inhibitors // Gen. Comp. Endocrinol. 1986. V. 63. P. 334–343.
16. Stolz J., Schnell J. Trout. Pennsylvania: Stackpole Books, 1991. 370 p.
И. И. Томилина1, *, Л. П. Гребенюк1
Индукция деформаций жестких ротовых структур личинок Chironomus riparius Meigen при различном содержании стойких органических веществ в донных отложениях
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: i_tomilina@mail.ru
Показано, что количество деформаций структур ротового аппарата личинок Chironomus riparius Meigen отражает потенциальную опасность загрязненных донных отложений и может служить хорошим биомаркером при проведении мониторинга экологического состояния пресноводных экосистем. Апробирован метод количественного расчета степени деформаций сильнохитинизированных структур (ментума и мандибул). Установлено, что суммарное количество полихлорированных бифенилов в донных отложениях влияет на долю личинок с множественными деформациями и относительную численность личинок с деформациями ментума и мандибул. Приведены примеры расчета индекса морфологического ответа сильнохитинизированных структур ротового аппарата личинок хирономид при экспонировании на донных отложениях с различным содержанием стойких органических веществ.
Ключевые слова: хирономиды, донные отложения, стойкие органические вещества, морфологические деформации ротовых структур, количественная оценка..
Показать список литературы
Cписок литературы
Гребенюк Л.П., Томилина И.И. Изменение физиологических и морфологических показателей личинок Chironomus riparius Meigen (Diptera: Chironomidae) при действии токсических веществ различной природы // Биология внутр. вод. 2006. № 3. С. 81–90.
2. Зинченко Т.Д. Биоиндикация как поиск информативных компонентов водных экосистем (на примере хирономид – Diptera, Chironomidae) // Чтения памяти Владимира Яковлевича Леванидова. 2005. Вып. 3. С. 338–355.
3. Извекова Э.И. К вопросу о роли хирономид-фильтраторов в процессах самоочищения водоемов // Комплексные исследования водохранилищ. Т. 1. М.: Изд-во МГУ, 1971. С. 204−207.
4. Козловская В.И., Герман А.В. Полихлорированные бифенилы и полиароматические углеводороды в экосистеме Рыбинского водохранилища // Вод. ресурсы. 1997. Т. 24. № 5. С. 563–569.
5. Константинов А.С. Биология хирономид и их разведение // Тр. Саратов. отд. Всесоюз. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. Саратов, 1958. Т. 5. 362 с.
6. Назарова Л.Б. Морфологические деформации личинок комаров-звонцов (Diptera, Chironomidae) в гидробиологических исследованиях // Успехи соврем. биологии. 2002. Т. 122. № 5. С. 505–512.
7. Назарова Л.Б. Морфологические деформации комаров-звонцов Diptera, Chironomidae в связи с загрязнением водоёмов // Успехи соврем. биологии. 2002. Т. 122. № 5. С. 516–523.
8. Назарова Л.Б., Латыпова В.З., Тухвагулина Л.Г. Тератогенное действие меди на личинки хирономид // Токсикол. вестн. 1999. № 3. С. 50–56.
9. Флеров Б.А., Томилина И.И., Кливленд Л. и др. Комплексная оценка состояния донных отложений Рыбинского водохранилища // Биология внутр. вод. 2000. № 2. С. 148–155.
10. Шилова А.И. Хирономиды Рыбинского водохранилища. Л.: Наука, 1976. 251 с.
11. Bhattacharyay G., Sadhu A., Mazumdar A., Chaudhuri P. Antennal deformities of Chironomid larvae and their use in biomonitoring of trace metal pollutions in the river Damodar of West Bengal, India // Environ. Monit. and Assess. 2005. V. 108. P. 67–84.
12. Bird G.A. Use of chironomid deformities to assess environmental degradation in the Yamaska River, Quebec // Environ. Monit. Assess. 1994. V. 30. P. 163–175.
13. Chuiko G.M., Zakonnov V.V., Morozov A.A. et al. Spatial distribution and qualitative composition of polychlorinated biphenyls and organochlorine pesticides in bottom sediments and bream (Abramis brama L.) from the Rybinsk reservoir // Inland Water Biol. 2010. V. 3. № 2. P. 193–202.
14. Cushman R.M. Chironomid deformities as indicators of pollution from a synthetic, coal-derived oil // Freshwater Biol. 1984. V. 14. P. 179–182.
15. Dickman M., Rygiel G. Chironomid larval deformity frequencies, mortality, and diversity in heavy-metal contaminated sediments of a Canadian riverine wetland // Environ. Int. 1996. V. 22. P. 693–704.
16. Grebenjuk L.P., Tomilina I.I. Morphological Deformations of Hard Chitinized Mouthpart Structures in Larvae of the Genus Chironomus (Diptera, Chironomidae) as the Index of Organic Pollution in Freshwater Ecosystems // Inland Water Biol. 2014. V. 7. № 3. P. 273–285.
17. Hamillton A.C., Saether O.A. The occurrence of characteristic deformities in chironomid larvae of several Canadian lakes // Can. Entomol. 1971. V. 103. P. 363–368.
18. Hudson L.A., Ciborowski J.J.H. Teratogenic and genotoxic responses of larval Chironomus salinarius group (Diptera: Chironomidae) to contaminated sediments // Environ. Toxicol. Chem. 1996. V. 15. № 8. P. 1375–1381.
19. Janssens de Bisthoven L., Huysmans C., Goemans G. et al. Field and experimental morphological response of Chironomus larvae to xylene and toluene // Neth. J. Zool. 1997. V. 47. P. 227–239.
20. Kosalwat P., Knight A.W. Chronic toxicity of copper to a partial life cycle of the midge, Chironomus decorus // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1987. V. 16. P. 283–290.
21. Langer-Jaesrich M., Kohler H.-R., Gerhardt A. Can mouth part deformities of Chironomus riparius serve as indicators for water and sediment pollution? A laboratory approach // J. Soils Sediments. 2010. V. 10. P. 414–422.
22. Madden C.P., Suter P.J., Nicolson B.C., Austin A.D. Deformities in chironomid larvae as indicators of pollution (pesticide) stress // Neth. J. Aquat. Ecol. 1992. V. 26. № 2–4. P. 551–557.
23. Martinez E.A., Barry C., Moore J.S., Nairanjana D. Teratogenic Versus Mutagenic Abnormalities in Chironomid Larvae Exposed to Zinc and Lead // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2004. V. 47. P. 193–198.
24. Nasarova L., Riss W., Kahlheber A., Werding B. Some observations of buccal deformities in chironomid larvae (Diptera: Chironomidae) from the Cienaga Grande de Santa Marta, Colombia. Algunas observaciones sobre deformidades bucales en larvas de quironomidos (Diptera: Chironomidae) de la Cienaga Grande de Santa Marta, Colombia // Caldasia. 2004. V. 26. № 1. P. 275–290.
25. Odume O.N., Muller W.J., Palmer C.G., Arimoro F.O. Mentum deformities in Chironomidae communities as indicators of anthropogenic impacts in Swartkops River // Phys. and Chem. Earth. 2012. V. 50–52. P. 140–148.
26. Servia M., Corbo F., Gonzalez M. Seasonal and interannual variations in the frequency and severity of deformities in larvae of Chironomus riparius (Meigen, 1804) and Prodiamesa olivacea (Meigen, 1818) (Diptera, Chironomidae) collected in a polluted site // Environ. Monit. and Assess. 2000. V. 64. P. 617–626.
27. Sokal R.R., Rohlf F.J. Biometry: the principles and practice of statistics in biological research. N.Y.: W.H. Freeman and Comp., 1995. 887 p.
28. Tomilina I.I., Grebenyuk L.P., Chuiko G.M. Toxicological and Teratogenic Assessment of Bottom Sediments from the Rybinsk Reservoir // Inland Water Biol. 2011. V. 4. № 3. P. 373–382.
29. Warwick W.F. Morphological deformities in Chironomidae (Diptera) larvae as biological indicators of toxic stress // Toxic Contaminants and Ecosystem Health. A Great Lakes Focus. N.Y.: John Wiley and Sons, 1988. P. 281–320.
30. Warwick W.F., Tisdale N.A. Morphological deformities in Chironomus, Cryptochironomus, and Procladius larvae (Diptera: Chironomidae) from two differentially stressed sites in Tobin Lake, Saskatchewan // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 1988. V. 45. № 7. P. 1123–1144.
Н. С. Челядина1, *, Л. Л. Смирнова2
Вариабельность содержания меди в культивируемой мидии Мytilus galloproincialis Lam. (Крым, Чёрное море)
1Институт морских биологических исследований им. А.О. Ковалевского,
299011 Севастополь, Нахимова, 2
2Институт природно-технических систем Российской академии наук,
299011 Севастополь, ул. Ленина, 28
e-mail: chelydina2007@mail.ru
Показаны особенности индивидуального накопления Cu в раковинах и мягких тканях мидии Mytilus galloprovincialis Lam., культивируемой в прибрежной акватории г. Севастополь. Депонированная в раковинах Cu лимитирует линейный рост мидий с размером раковины 30.20±0.07, ограничивает выпуклость раковин моллюсков размером 50.30±0.14 мм, что может влиять на массу мягких тканей и экономические показатели мидийных ферм. Содержание Cu в раковине не увеличивается с возрастом моллюска и ≤8–12 мкг/г золы. В мягких тканях содержание Cu зависит от сезона, размера, пола и стадии зрелости гонад моллюска и в 8–10 раз выше, чем в раковине. Отмечено, что самки M. galloprovincialis накапливают Cu в мягкой ткани в большем количестве, чем самцы. Содержание Cu в тканях самок обеих размерных групп более вариабельно (Cv 53−57%), чем у самцов (25−36%). Полученные результаты могут быть использованы при оценке качества продукции мидийных ферм, изучении полиморфизма, аномалий в развитии мидий и инверсии пола в популяциях культивируемых мидий Mytilus galloprovincialis.
Ключевые слова: Чёрное море, культивируемые мидии, Cu, раковина, мягкие ткани, индивидуальная изменчивость.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Губанов В.И., Копытов Ю.П., Бобко Н.И. Оценка состояния загрязнения донных осадков тяжелыми металлами в прибрежных районах Крыма (Черное море) // Мор. экол. журн. 2010. № 4. Т. 9. С. 38–47.
2. Давыдова С.Л., Тагасов В.И. Тяжелые металлы как супертоксиканты XXI века: Уч. пособие. М.: Рос. ун-т дружбы народов, 2002. 140 с.
3. Дехта В.А., Каталевский Н.Н. Содержание химических элементов в раковинах и изменчивость их формы у мидий Mytilus galloprovincialis прибрежной зоны Чёрного моря // Геоэкологические исследования и охрана недр. 2000. № 3. С. 26–33.
4. Жуковская Е.А., Кодолова О.П., Переладов М.П. О временной динамике морфологической изменчивости черноморской мидии Mytilus galloprovincialis Lam // Изв. РАН. Сер. биол. 2002. № 3. С. 316–328.
5. Иванов В.Н., Трощенко О.А., Ломакин П.Д. и др. Марикультура мидий на Чёрном море. Севастополь: НПЦ ЭКОСИ-Гидрофизика, 2007. 314 с.
6. Кавун В.Я., Шулькин В.М. Изменение микроэлементного состава органов и тканей двустворчатого моллюска Crenomytilus grayanus при акклиматизации в биотопе, хронически загрязненном тяжелыми металлами // Биол. моря. 2005. Т. 31. № 2. С. 123–127.
7. Кулева Н.В., Сабиров М.А., Филимонов В.Б., Раилкин А.И. Влияние ионов меди на показатели окислительного стресса у беломорской мидии Mytilus edulis // Вестн. С.-Петербург. ун-та. Сер. 3. Биол. 2008. № 4. С. 83–87.
8. Методика выполнения измерений массовой концентрации Cd, Zn, Cu, Pb, As в пищевых продуктах. Атомно-абсорбционный метод с использованием электро-термической атомизации МВВ 081/12–16-98. Северодонецк: КНПП “Химавтоматика – аналитприбор”, 1998. 64 с.
9. Подгурская О.В., Кавун В.Я., Лукъянова О.Н. Аккумуляция и распределение тяжелых металлов в органах мидии Грея Crenomytilus grayanus из районов апвеллинга Японского и Охотского морей // Биол. моря. 2004. Т. 30. № 3. С. 219–226.
10. Поспелова Н.В., Егоров В.Н., Челядина Н.С., Нехорошев М.В. Содержание меди в органах и тканях Mytilus galloprovincialis Lamarck, 1819 и поток её седиментационного депонирования в донные осадки в хозяйствах черноморской аквакультуры // Мор. биол. журн. 2018. Т. 3. № 4. С. 64–75.
11. Смирнова Л.Л., Аннинская И.Н. Распределение соединений меди в морской среде и донных осадках портовых акваторий // Экологическая безопасность прибережной и шельфовой зон и комплексное использование ресурсов шельфа. 2003. Вып. 9. С. 106–111.
12. Холодов В.И., Пиркова А.В., Ладыгина Л.В. Выращивание мидий и устриц в Чёрном море Воронеж: ООО ИЗДАТ-ПРИНТ, 2017. 508 с.
13. Челядина Н.С. Фенотипическая и половая структура поселения мидии Mytilus galloprovincialis Lam., культивируемой на внешнем рейде г. Севастополя (Крым, Чёрное море) // Мор. биол. журн. 2018. Т. 3. № 3. С. 86–93.
14. Челядина Н.С., Попов М.А. Сравнительный анализ морфометрических характеристик мидии Мytilus galloprovincialis из различных районов обитания (Крым, Чёрное море) // Вестн. Воронеж. гос. ун-та. Сер. Химия. Биология. Фармация. 2018. № 2. С. 264–269.
15. Челядина Н.С., Вялова О.Ю., Смирнова Л.Л. Содержание Zn, Cu, Pb, Cd в гонадах культивируемых моллюсков Mytilus galloprovincialis // Мор. экол. журн. 2005. Т. 4. № 3. С. 119–125.
16. Чернова Е.Н. Изменение концентрации металлов в тканях мидии Мytilus еdulis из Белого моря в ходе репродуктивного цикла // Биол. моря. 2010. Т. 36. № 1. С. 63–69.
17. Черноморские моллюски: элементы сравнительной и экологической биохимии. Севастополь: НПЦ ЭКОСИ-Гидрофизика, 2014. 323 с.
18. Яп К.К., Измаил А., Тан С.Г. Зависимость между массой мягких тканей, толщиной раковины и накоплением тяжёлых металлов (Cd, Cu, Pb, Zn) у зелёной мидии Perna viridis // Биол. моря. 2003. Т. 29. № 5. С. 358–362.
19. Ярославцева Л.М., Сергеева Э.П. Влияние ионов меди на ранние стадии развития тихоокеанской мидии Mytilus trossulus // Биол. моря. 2005. Т. 31. № 4. С. 267–273.
20. Bretona S., Capta Ch., Guerraa D., Stewartb D. Sex determining mechanisms in Bivalves. Preprints 2017, 2017060127. doi 10.20944/preprints201706.0127.v1).209.
21. Liu G., Shu M., Chai X. et al. Effect of Chronic Sublethal Exposure of Major Heavy Metals on Filtration Rate, Sex Ratio, and Gonad Development of a Bivalve Species // Bull. Environ. Contam. and Toxicol. 2014. V. 92 (I). Р. 71–74.
22. Rainbow P.S., Fialkowski W., Sokolowski A. et al. Geographical and seasonal variation of trace metal bioavailabilities in the Gulf of Gdansk, Baltic Sea using mussels (Mytilus trossulus) and barnacles (Balanus improvisus) as biomonitors // Mar. Biol. 2004. V. 144. P. 271–285.
23. Raftopoulou E.K., Dimitriadis V.K. Сomparative study of the accumulation and detoxification of Cu (essential metal) and Hg (non essential metal) in the digestive gland and gills of mussels Мytilus galloproincialis, using analytical and his to chemical techniques // Chemosphere. 2011. V. 83. P. 1155–1165.
24. Sokolowski A., Bawazir A.S., Wolowicz M. Trace Metals in the Brown Mussel Perna perna from the Coastal Waters Off Yemen (Gulf of Aden): How Concentrations Are Affected by Weight, Sex, and Seasonal Cycle // Arch. Environ. Contam. and Toxicol. 2004. V. 46. № 1. Р. 67–80.
25. Ugur S. Trace metal levels in mussels (Mytilus galloprovincialis L. 1758) from Turkish Aegean Sea coast // Environ. Monitor. Assess. 2006. V. 114. № 1–3. P. 273–286.
Н. С. Шевченко1, И. В. Чалова1, О. Л. Цельмович1, Н. Н. Жгарева1, А. В. Крылов1, *, М. Е. Елизаров1
Экспериментальное изучение влияния времени нахождения на суше и поступления экскрементов околоводных птиц на количество Copepoda и плодовитость Cladocera
1Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН,
152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: krylov@ibiw.yaroslavl.ru
В ходе проведения лабораторного эксперимента в микрокосмах показано, что поступление экскрементов околоводных птиц в воду способствовало повышению численности Copepoda. При увеличении сроков высушивания экскрементов на воздухе ее численность сокращалась, но оставалась выше контрольных величин. Плодовитость Cladocera (по результатам биотестирования на Ceriodaphnia dubia Richard) возрастала при увеличении сроков пребывания экскрементов на воздухе. Предположено, что преобладание той или иной группы Crustacea определяется временем нахождения экскрементов на суше и поступления их в воду. Его увеличение приводит к снижению соотношения азота и фосфора в экскрементах, соответственно в воде и, как следствие, в кормовых объектах ракообразных.
Ключевые слова: Copepoda, Cladocera, экскременты птиц, микрокосмы.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Гапеева М.В., Разгулин С.М., Скопинцев Б.А. Ампульный персульфатный метод определения общего азота в природных водах // Гидрохим. материалы. 1984. Т. 87. С. 67–70.
2. Крылов А.В., Кулаков Д.В., Чалова И.В., Папченков В.Г. Зоопланктон пресных водоемов в условиях влияния гидрофильных птиц. Ижевск: Издатель Пермяков С.А., 2012. 204 с.
3. Крылов А.В., Махутова О.Н., Сахарова Е.Г. и др. Неоднозначное влияние поселений околоводных птиц на биохимический состав сестона, планктонных организмов и молоди рыб равнинного водохранилища // Журн. общ. биологии. 2018. Т. 79. № 6. С. 449–460.
4. Методика выполнения измерений массовой концентрации фосфора общего в пробах природных и очищенных сточных вод фотометрическим методом после окисления персульфатом. ПНД Ф 14.1:2.106-97. Ростов-на-Дону: АКВАРОС, 2004. 12 с.
5. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
6. Методика определения токсичности воды и водных вытяжек из почв, осадков сточных вод, отходов по смертности и изменению плодовитости цериодафний. ФР.1 39.2007.03221. М.: АКВАРОС, 2007. 56 с.
7. Толомеев А.П. Концепция “экологической стехиометрии” в водных экосистемах: литературный обзор // Сиб. экол. журн. 2006. № 1. С. 13–19.
8. Andersen T., Hessen D.O. Carbon, nitrogen, and phosphorus content of freshwater zooplankton // Limnol., Oceanogr. 1991. V. 36. P. 807–814.
9. Bazely D.R., Jefferies R.L. Goose Faeces: A source of nitrogen for plant growth in a grazed salt marsh // J. Appl. Ecol. 1985. V. 22. P. 693–703.
10. Gould D.J., Fletcher M.R. Gull droppings and their effects on water quality // Water Res. 1978. V. 12. P. 665–672.
11. Hahn S., Bauer S., Klaassen M. Estimating the contribution of carnivorous waterbirds to nutrient loading in freshwater habitats // Freshwater Biol. 2007. V. 52. P. 2421–2433.
12. Hahn S., Bauer S., Klaassen M. Quantification of allochthonous nutrient input into freshwater bodies by herbivorous water birds // Freshwater Biol. 2008. V. 53. P. 181–193.
13. Skrzypek G., Wojtuń B., Richter D. et al. Diversification of Nitrogen Sources in Various Tundra Vegetation Types in the High Arctic // PLoS ONE. 2015. V. 10. № 9. P. 3–21.
14. Sterner R.W., Schulz K.L. Zooplankton nutrition: recent progress and a reality check // Aquat. Ecol. 1998. V. 32. P. 261–279.
