RUS ENG

Журнал "Биология внутренних вод"

№ 1 за 2010 год

В.Г. Харитонов*, С.И. Генкал**

Центрические диатомовые водоросли (Centrophyceae) ультраолиготрофного озера Эльгыгытгын и водоемов его бассейна (Чукотка, Россия).

*Институт биологических проблем Севера ДВО РАН, 685000 г. Магадан, ул. Портовая, 16
**Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: genkal@ibiw.yaroslavl.ru

При изучении водорослей из оз. Эльгыгытгын и водоемов его бассейна с помощью сканирующей электронной микроскопии обнаружен 21 таксон центрических диатомовых водорослей видового и внутривидового рангов. Выявлено девять новых видов и разновидностей, в том числе редкие для флоры России Aulacoseira distans var. nivaloides, A. distans var. septentrionalis, Discostella guslyakovyi, эндемик (?) Pliocaenicus seckinae, а также шесть интересных форм из рода Aulacoseira, определенных только до рода. Расширен список Centrophyceae Берингии.

Ключевые слова: Чукотка, оз. Эльгыгытгын, флора, диатомовые водоросли, Сentrophyceae.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Балонов И.М. Подготовка диатомовых и золотистых водорослей к электронной микроскопии // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 87-89.
2. Белый В.Ф. Впадина озера Эльгыгытгын – метеоритный кратер или геологическая структура новейшего этапа развития центральной Чукотки // Тихоокеан. геология. 1982. № 5. С. 85-91.
3. Белый В.Ф. Впадина озера Эльгыгытгын и некоторые, связанные с ней, геологические проблемы // Природа впадины озера Эльгыгытгын. Магадан: Cеверо-Восточный комплексный НИИ ДВО РАН, 1993. С. 10-25.
4. Бондаренко Н.А., Генкал С.И. О находке байкальских эндемичных водорослей в горных озерах Забайкалья // Ботан. журн. 2005. Т. 90. № 9. С. 1389-1401.
5. Генкал С.И. О систематическом положении Stephanodiscus dubius var. arcticus Seczkina // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1990. № 88. С. 28-32.
6. Генкал С.И. О распространении в волжских водохранилищах некоторых представителей диатомовых водорослей рода Aulacosira Thw. // Тез. докл. четвертой Всерос. конф. по водным растениям. Борок, 1995. C. 86-87.
7. Генкал С.И. Bacillariophyta в гидробиологических исследованиях: о некоторых проблемах // Тез. докл. VIII съезда Гидробиол. о-ва РАН. Калининград, 2001. Т. 1. С. 159-160.
8. Генкал С.И., Бондаренко Н.А., Поповская Г.И. О новом виде рода Discostella Houk et Kltt (Bacillariophyta) из Забайкалья (Россия) // Альгология. 2008. Т. 18. № 1. С. 99-104.
9. Генкал С.И., Лупикина Е.Г., Лепская Е.В. Cyclotella tripartita (Bacillariophyta) из озер Камчатки и Забайкалья // Ботан. журн. 2004. Т. 89. № 3. С. 426-435.
10. Генкал С.И., Поповская Г.И. О морфологической изменчивости Cyclotella ocellata Pantocsek (Bacillariophyta) // Биология внутр. вод. 2007. № 1. С. 3-12.
11. Генкал С.И., Поповская Г.И., Бондаренко Н.А. К морфологии и таксономии Pliocaenicus costatus (Log., Lupik. еt Churs.) Flower Ozornina et Kuzmina (Bacillariophyta) // Биология внутр. вод. 2001. № 2. С. 53-64.
12. Генкал С.И., Трифонова И.С. Интересные и новые для России представители рода Aulacosira (Bacillariophyta) // Ботан. журн. 2002. T. 87. № 6. С. 117-122, 174, 175.
13. Генкал С.И., Трифонова И.С. К изучению центрических водорослей (Centrophyceae, Bacillariophyta) Ладожского озера // Альгология. 2003. T. 13. № 3. С. 293-304.
14. Генкал С.И., Харитонов В.Г. Cyclotella arctica (Bacillariophyta) – новый вид из оз. Эльгыгытгын (Чукотский полуостров) // Ботан. журн. 1996. Т. 81. № 10. С. 69-73.
15. Генкал С.И., Харитонов В.Г. О морфологической изменчивости Cyclotella arctica (Bacillariophyta) // Ботан. журн. 2005. Т. 90. № 1. С. 19-22.
16. Глотов В.Е., Зуев И.А. Гидрогеологические особенности озера Эльгыгытгын // Колыма. 1995. № 3-4. С. 18-23.
17. Гуров Е.П., Вальтер А.А., Гурова Е.П., Серебренников А.И. Взрывной метеоритный кратер Эльгыгытгын на Чукотке // Докл. АН СССР. 1978. Т. 240. № 6. С. 1407-1410.
18. Жузе Ф.П., Сечкина Т.В. Диатомовые водоросли в донных отложениях озера Эльгыгытгын (Анадырское плоскогорье) // Тр. Лаб. озероведения АН СССР. 1960. Т. 10. С. 55-62.
19. Некрасов И.А. О происхождении и истории котловины озера Эльгыгытгын // Геология и геофизика. 1963. № 1. С. 57-59.
20. Прошкина-Лавренко А.И. Диатомовые водоросли современных морей и озер // Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и современные). Л.: Наука, 1974. Т. 1. С. 274-352.
21. Сечкина Т.В. Новые диатомовые из грунтов оз. Эльгыгытгын Анадырского района // Ботан. матер. отд. споровых растений Ботан. ин-та АН СССР. Л., 1956. Т. 2. С. 42-49.
22. Харитонов В.Г. Диатомовые водоросли озера Эльгыгытгын (Анадырский р-н) // Ботан. журн. 1980. Т. 65. № 11. С. 1622-1628.
23. Харитонов В.Г. К флоре диатомовых водорослей оз. Эльгыгытгын // Природа впадины оз. Эльгыгытгын. Магадан: Cеверо-Восточный комплексный НИИ ДВО РАН, 1993. С. 95-104.
24. Харитонов В.Г. Особенности формирования структуры танатоценоза в оз. Эльгыгытгын // Морфология, экология и биогеография диатомовых водорослей: Матер. VIII школы диатомологов России и стран СНГ. Борок, 2002. С. 34-35.
25. Харитонов В.Г. Представители Centrales (Bacillariophyta) в водоемах Берингии // Ботан. журн. 2005. Т. 90. № 3. C. 336-350.
26. Харитонов В.Г. К флоре диатомовых водорослей окрестностей оз. Эльгыгытгын (Чукотка) // Матер. Дальневосточной региональной конф., посвященной памяти А.П. Васьковского (95-летие). Магадан, 2006. С. 445-450.
27. Харитонов В.Г. Диатомовые водоросли (Bacillariophyceae) озера Эльгыгытгын и водоемов его бассейна (Чукотский автономный округ) // Вестн. ДВНЦ РАН. 2009 (принята в печать).
28. Черепанова М.В., Минюк П.С., Брайэм-Гретте Дж. Диатомовые водоросли из донных отложений оз. Эльгыгытгын (Северо-Восток России) как индикаторы палеоклиматических изменений // Геодинамика, магматизм и минерагения континентальных окраин Севера Пацифики: Матер. Всерос. совещ., посвященного 90-летию академика Н. А. Шило. Магадан, 2003. Т. 1. С. 266-269.
29. Черешнев И.А., Скопец М.Б. Биология гольцовых рыб озера Эльгыгытгын // Природа впадины озера Эльгыгытгын. Магадан: Cеверо-Восточный комплексный НИИ ДВО РАН, 1993. С. 105-127.
30. Babanazarova O.V., Likhoshway Ye.V., Sherbakov D.Yu. On the morphological variability of Aulacoseira baicalensis and Aulacoseira islandica (Bacillariophyta) of Lake Baikal, Russia // Phycologia. 1996. V. 35 (2). P. 113-123.
31. Cherepanova M.V., Snyder J.A., Brigham-Grette J. Diatom stratigraphy of the last 250ka at Lake El’gygytgyn, northeast Siberia // J. Paleolimnol. 2007. V. 37. P. 155-162.
32. Cremer H., Bart van De Vijver. On Pliocaenicus costatus (Bacillariophyceae) in Lake El’gygytgyn, East Siberia // Eur. J. Phycol. 2006. V. 41. № 20. P. 169-178.
33. Cremer H., Wagner B., Lushus O., Melles M. A microscopical study of diatom phytoplankton in deep crater Lake El’gygytgyn Norteast Siberia // Algol. Stud. 2005. V. 116. P. 147-169.
34. Cremer H., Wagner B. The diatom flora in the ultra-oligotrophic Lake El’gygytgyn, Chukotka // Polar. Biol. 2003. V. 26. № 2. P. 105-114.
35. Genkal S.I. Problems in identifying centric diatoms for monitoring the water quality of large rivers // Use of algae for monitoring rivers III. Douai: Agence de l’Eau Artois-Picardie, 1999. P. 182-187.
36. Genkal S.I., Bondarenko N.A. Are the Lake Baikal diatoms endemic // Hydrobiologia. 2006. V. 568. Suppl. 1. P. 143-153.
37. Genkal S.I., Lupikina E.G., Lepskaya K. Cyclotella tripartita Håkansson from the lakes in Kamchatka, Russia // Proceedings of the 17th Int. Diat. Symp. (Michel Poulin ed.) Ottawa: Bristol Biopress Limited, 2004. P. 103-120.
38. Genkal S.I., Popovskaya G.I. New data on the frustule morphology of Aulacosira islandica (Bacillariophyta) // Diatom Res. 1991. V. 6. № 2. P. 255-266.
39. Håkansson H. A compilation and evaluation of species in the general Stephanodiscus, Cyclostephanos and Cyclotella with a new genus in the family Stephanodiscaceae // Diatom Res. 2002. V. 17. № 1. P. 1-139.
40. Hegewald E., Hindakova A. Variability of a natural population and clones of the Cyclotella ocellata-complex (Bacillariophyceae) from the Gallbetg-pond, NW-Germany // Algol. Stud. 1997. V. 86. P. 17-37.
41. Stachura-Suchoples K., Genkal S., Khursevich G. Pliocaenicus sezkinae sp. nov., from lake El’gygytgyn in Chukotka (NE Russia) // Diatom Res. 2008. V. 23. № 1. P. 171-184.
42. Teubner K. A light microscopical investigation and multivariate statistical analyses of hetereovalvar cells of Cyclotella-species (Bacillariophyceae) from lakes of the Berlin-Brandenburg region // Diatom Res. 1995. V. 10. № 1. P. 191-205.
43. Yarushina M.I., Genkal S.I. A contribution to studies of the flora of centric diatoms (Centrophyceae) in reservoirs of the eastern mountainside of the Polar Urals (Russia) // Int. J. Algae. 2006. V. 8. № 4. P. 308-322.

V.G. Kharitonov*, S.I. Genkal**

Centric Diatoms (Centrophyceae) of the Ultraoligotrophic Lake Elgygytgyn and Waterbodies of its Basin (Chukotka, Russia).

*Institute of Biological Problems of the North FEB RAS, 685000 Magadan, ul. Portovaja, 16
**Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The study of materials from Lake Elgygytgyn and waterbodies of its basin by the help of scanning alectron microscopy has revealed 21 taxa of centric diatoms. In the lake and its basin 9 new species and varieties including rare for the flora of Russia Aulacoseira distans var. nivaloides, A. distans var. septentrionalis, Discostella guslyakovyi, endemic species (?) Pliocaenicus seckinae and 6 interesting forms from genus Aulacoseira identified only to the genus have been found. The list of Centrophyceae of Beringiya has been broadened.

Keywords: Chukotka, Lake Elgygytgyn, flora, diatom algae, Centrophyceae.

О.А. Лоскутова*, Н.И. Зеленцов**, Г.Х. Щербина**

Амфибиотические насекомые горных озер и малых водотоков урала.

*Институт биологии Коми научного центра Уральского отделения РАН, 167982 Сыктывкар, ул. Коммунистическая, 28
**Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: loskutova@ib.komisc.ru

В горных озерах и малых водотоках Северного и Приполярного Урала обнаружено 127 видов веснянок, поденок, ручейников и хирономид. Наибольшим видовым разнообразием (78 видов) и высокой численностью выделялись хирономиды. В составе фауны наряду с широко распространенными выявлены сибирские и арктические виды. Впервые для территории Республики Коми отмечены арктическая веснянка Capnia zaicevi Klap. и 24 вида хирономид. Приведены списки зарегистрированных видов насекомых и данные об их встречаемости, численности и биомассе.

Ключевые слова: амфибиотические насекомые, Урал, горные озера, малые водотоки.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Богданов В.Д., Богданова Е.Н., Гаврилов А.Л. и др. Биоресурсы водных экосистем Полярного Урала. Екатеринбург: Уральск. отд. РАН, 2004. 167 с.
2. Жильцова Л.А. Отряд Plecoptera – веснянки // Определитель насекомых Европейской части СССР. М.; Л.: Наука, 1964. Т. 1. С. 177-201.
3. Жильцова Л.А., Тесленко В.А. Веснянки (Plecoptera) // Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 3. Спб.: Зоол. ин-т РАН, 1997. С. 248-264.
4. Зверева О.С. Особенности биологии главных рек Коми АССР. Л.: Наука, 1969. 279 с.
5. Иванов В.Д., Григоренко В.Н., Арефина Т.И. Ручейники (Trichoptera) // Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Спб.: Зоол. ин-т РАН, 2001. Т. 5. С. 7-72.
6. Кикнадзе И.И., Шилова А.И., Керкис И.Е. и др. Кариотипы и морфология личинок трибы Chironomini. Атлас. Новосибирск: Наука, 1991. 115 с.
7. Клюге Н.Ю. Поденки (Ephemeroptera) // Определитель пресноводных беспозвоночных России сопредельных территорий. Спб.: Зоол. ин-т РАН, 1997. Т. 3. С. 176-220.
8. Кузьмина Я.С., Шилова А.И., Зеленцов Н.И. Фауна хирономид (Diptera, Chironomidae) рек Тиманского кряжа // Энтомол. обозрение. 2003. № 3. Т. 82. C. 590-597.
9. Лоскутова О.А. Веснянки // Фауна европейского Северо-Востока России. Спб.: Наука, 2006. Т. 9. 224 с.
10. Макарченко Е.А. Семейство Chironomidae – комары-звонцы // Определитель насекомых Дальнего Востока России. Т. 6: Двукрылые и блохи. Владивосток: Дальнаука, 2006. Ч. 4. С. 204-734.
11. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсемейства Orthocladiinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae = Tendipedidae) // Определитель по фауне CCCР. Л.: Наука, 1970. Вып. 102. 344 с.
12. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсемейств Podonominae и Tanypodinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae = Tendipedidae) // Определитель по фауне СССР. Л.: Наука, 1977. Вып. 112. 154 с.
13. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсемейства Chironominae фауны СССР (Diptera, Chironomidae = Tendipedidae) // Определители по фауне СССР, издаваемые Зоологическим институтом АН СССР. Л.: Наука, 1983. Вып. 134. 296 с.
14. Пономарев В.И., Лоскутова О.А. Ихтиофауна и бентос предгорных озер западных склонов Северного Урала // Первый Всероссийский конгресс ихтиологов: Тез. докл. М.: Всерос. НИИ озер. х-ва и океаногр., 1997. С. 128.
15. Пономарев В.И., Лоскутова О.А. Ихтиофауна и бентос Межгорных озер (Приполярный Урал, бассейн р. Печора) // Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды: Матер. Международ. науч. конф. по озерным экосистемам. Минск, 2000. С. 361-366.
16. Пономарев В.И., Лоскутова О.А. Горные озера особо охраняемых природных территорий западных склонов Северного и Приполярного Урала: общая характеристика, перспективы изучения и уставного использования // Современное состояние и перспективы развития особо охраняемых территорий европейского Севера и Урала (к 75-летию Печоро-Илычского заповедника): Матер. докл. науч.-практ. конф. (Сыктывкар, 7-10 ноября 2005 г.). Сыктывкар, 2006. С. 148-160.
17. Пономарев В.И., Лоскутова О.А., Фефилова Е.Б., Юркин О.М. Гидробионты Пономаревского озера (Приполярный Урал) // Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: Тез. докл. международ. конф. Петрозаводск, 1995. С. 107-108.
18. Седых К.Ф. Животный мир Коми АССР. Беспозвоночные. Сыктывкар: Коми книж. изд-во, 1974. 191 с.
19. Флора и фауна водоемов Европейского Севера (на примере озер Большеземельской тундры). Л.: Наука, 1978. 192 с.
20. Шилова А.И. Хирономиды Рыбинского водохранилища. Л.: Наука, 1976. 251 с.
21. Шубина В.Н. Гидробиология лососевой реки Северного Урала. Л.: Наука, 1986. 157 с.
22. Шубина В.Н. Зообентос лососевых рек Урала и Тимана. Спб.: Наука, 2006. 401 с.
23. Cranston P.S. A key to the larvae of the British Orthocladiinae (Chironomidae) // Freshwater biol. Association.1982. № 45. 152 p.
24. Hirvenoja M. Revision der Gattung Cricotopus van der Wulp und Verwandten (Diptera, Chironomidae) // Ann. zool. fenn. 1973. № 10. 363 S.
25. Kuzmina Y. Distribution, phenology and habitat characteristics of Chironomidae (Diptera) of the northeastern part of European Rusia // Norw. J. Entomol. 2001. V. 48. P. 199-212.
26. Lillehammer A. Stoneflies (Plecoptera) of Fennoscandia and Denmark // Fauna Entomologica Scandinavica. 1988. V. 21. 165 p.
27. Oliver D.R. Life history of the Chironomidae // Ann. Rev. Ent. 1971. V. 16. P. 211-230.
28. Ponomarev V.I., Loskutova O.A., Patova E.N., Sivkov M.D. Hydrobionts diversity in Subarctic Ural mountain lakes area and its transformation caused by human activities // European Large Lakes Symp. (ELLS): Abstracts. Tartu, 2006. P. 77.
29. Schräder S. Űber die Moglichkeit einer quantitativen Untersuchung der Boden- and Ufertierwelt flieβender Gewässer, zugleich fischereibiologische Untersuchungen im Wesergebiet // Z. Fisch. 1932. Bd 30. S. 105-127.
30. Sørensen T. A method of establishing groups of equal amplitude in plant sociology based on similarity of species content and its application to analyses of the vegetation on Danish commons // Biol. skr. Kgl. dan. vid. scesk. 1948. V. 5. P. 1-34.
31. Wiederholm T. Chironomidae of the Holarctic region // Keys and diagnoses. Part. 1: Larvae. Entomol. Scand. Suppl. 1983. № 19. 451 p.
32. Wiederholm T. Chironomidae of the Holarctic region // Keys and diagnoses. Part. 2: Pupae. Entomol. Scand. Suppl. 1986. № 28. 482 p.

О.А. Loskutova*, N.I. Zelentsov**, G.Kh. Shcherbina**

Aquatic Insects in Mountain Lakes and Small Streams of the Urals.

*Institute of Biology, Komi Scientific Centre of UD RAS, 167982 Syktyvkar, ul. Kommunisticheskaya, 28, Russia
**Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The species composition, occurrence, abundance, and biomass of aquatic insects were studied in mountain lake ecosystems and small streams of the Urals. 127 species of stoneflies, mayflies, caddisflies, and chironomids were identified, the latter having the greatest species diversity (78 species) and the highest abundance. Along with widespread species the fauna was represented by Siberian and Arctic species. Stoneflies Capnia zaicevi Klap. were first identified in the lakes of the Sub-Polar Urals (Komi Republic). 24 chironomid species also were marked as "new" on the territory of the Republic. Lists of registered species of insects are given.

Keywords: aquatic insects, the Urals, mountain lakes, small streams.

З. М. Мыльникова, А. П. Мыльников

Биология и морфология пресноводного хищного жгутиконосца Colponema aff. loxodes Stein (Colponemida, Alveolata).

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: mylnikov@ibiw.yaroslavl.ru

Рассмотрены биология, морфология и ультраструктура пресноводного хищного жгутиконосца Colponema aff. loxodes, нападающего на бодонид и хризомонад. В клетке жгутиконосца обнаружены трехмембранная альвеолярная пелликула, пузырьковидное ядро, два гетеродинамичных жгутика, две микротрубочковые ленты, армирующие продольную бороздку, митохондрии с трубчатыми кристами. Цитоплазма содержит стрекательные органеллы – токсицисты. Задний жгутик несет в своей проксимальной части складку. Микропоры отсутствуют. Во время питания клетка жертвы поглощается в районе продольной бороздки. Жизненный цикл включает вегетативные плавающие клетки. Цисты покоя и размножения отсутствуют. Обсуждено сходство Colponema aff. loxodes с другими колпонемами и протистами.

Ключевые слова: колпонемиды, альвеолаты, ультраструктура, морфология.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Жуков Б.Ф., Мыльников А.П. Новые и редкие виды бесцветных жгутиконосцев в фауне Европейской части СССР // Фауна и биология пресноводных организмов. Л.: Наука, 1987. С. 70-86.
2. Карпов С.А. Строение покровов жгутиконосцев // Цитология. 1986. Т. 28. С. 139-150.
3. Карпов С.А. Строение аксонемы и наружных элементов жгутика у подвижных клеток водорослей и у бесцветных жгутиконосцев // Ботан. журн. 1987. Т. 72. С. 3-14.
4. Карпов С.А. Строение жгутиковых корешков у подвижных клеток водорослей, грибов и бесцветных жгутиконосцев // Цитология. 1988. Т. 30. С. 371-389.
5. Мыльников А.П. Тонкое строение и систематическое положение Histiona aroides (Bicoecales) // Ботан. журн. 1989. Т. 74. № 2. С. 184-189.
6. Мыльников А.П. Новый хищный морской жгутиконосец Colpodella pontica // Зоол. журн. 2000. Т. 79. С. 261-266.
7. Brooker B.E. Mastigonemes in a bodonid flagellate // Exp. Cell Res. 1965. V. 37. P. 300-305.
8. Brugerolle G. Colpodella vorax: ultrastructure, predation, life-cycle, mitosis, and phylogenetic relationships // Eur. J. Protistol. 2002. V. 38. P. 113-125.
9. Cavalier-Smith T. Kingdom Protozoa and its 18 Phyla // Microbiol. Rev. 1993. V. 57. P. 953-994.
10. Cavalier-Smith T., Chao E.E. Protalveolate phylogeny and systematics and the origins of Sporozoa and dinoflagellates (phylum Myzozoa nom. nov.) // Eur. J. Protistol. 2004. V. 40. P. 185-212.
11. Chadefaud M. Sur une chloromonadine incolore: Colponema loxodes Stein // La Rev. Sci. 1944. V. 82. P. 43-45.
12. Dodge J.D. A general ultrastructure // Biology of dinoflagellates. Oxford etc. Blackwell, 1987. P. 92-119.
13. Gaines G., Taylor F.J.R. Form and function of the dinoflagellate transverse flagellum // J. Protozool. 1985. V. 32. P. 290-295.
14. Hara Y., Chihara M. Ultrastructure and taxonomy of Fibrocapsa japonica (class Raphydophyceae) // Arch. Protistenk. 1985. Bd 130. S. 133-141.
15. Hausmann K. Extrusive organelles in protists // Int. Rev. Cytol. 1978. V. 52. P. 197-276.
16. Hilenski L.L., Walne P.L. Ultrastructure of the flagella of the colourless phagotroph Peranema trichophorum (Euglenophyceae). I. Flagellar mastigonemes // J. Phycol. 1985. V. 21. P. 114-125.
17. Kugrens P., Lee R.E. Organisation of cryptomonads // The biology of free-living heterotrophic flagellates. Oxford: Clarendon Press, 1991. P. 219-234.
18. Lemmermann E. Flagellatae I. Pantostomatinae, Promastiginae, Distomatinae // Die Süsswaserflora Deutschlande, Österreichs und der Schweiz. Jena: Fischer Verlag, 1914. S. 1-138.
19. Mignot J.-P., Brugerolle G. Étude ultrastructurale du flagellé phagotrophe Colponema loxodes Stein // Protistologica. 1975. V. 11. P. 429-444.
20. Mignot J.-P., Joyon L., Pringsheim E.G. Quelques particularités structurales de Cyanophora paradoxa Korsch. // J. Protozool. 1969. V. 16. P. 138-145.
21. Moestrup Ø. Flagellar structure in algae: a review with new observations particulary on the Chrysophyceae, Phaeophyceae (Fucophyceae), Euglenophyceae, and Reckertia // Phycologia. 1982. V. 21. P. 427-528.
22. Morrill L.C., Loeblich A.R. Ultrastructure of the dinoflagellate amphiesma // Int. Rev. Cytol. 1983. V. 82. P. 151-180.
23. Patterson D.J. Jakoba libera (Ruinen, 1938), a heterotrophic flagellate from deep oceanic sediments // J. Mar. Biol. 1990. V. 70. P. 381-393.
24. Roberts K.R. The flagellar apparatus and cytoskeleton of dinoflagellates: organization and use in systematics // The biology of free-living heterotrophic flagellates. Oxford: Clarendon Press, 1991. P. 285-302.

Z.М. Mylnikova, A.P. Mylnikov

The Biology and Morphology of Freshwater Carnivorous Flagellate Colponema aff. loxodes Stein. (Colponemida, Alveolata).

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The biology, morphology and ultrastructure of freshwater carnivorous flagellate Colponema aff. loxodes, which attacks bodonids and chrysomonads is considered. The three-membrane alveolar pellicle, vesicular nucleus, two heterodynamic flagella, two microtubular bands, armored longitudinal groove, mitochondria with tubular cristae have been found in the flagellate cell. The cytoplasm contains extrusive organelles – toxicysts. The posterior flagellum bears a fold in its proximal part. The micropores are absent. During nutrition a prey is uptaken inside the longitudinal groove. The life cycle has vegetative swimming cells. The cysts of the rest and reproduction are absent. The resemblance of Colponema aff. loxodes with other colponemids and protests is discussed.

Keywords: colponemids, alveolates, ultrastructure, morphology.

Г.В. Березкина

Морфология яйцевых капсул и синкапсул пресноводных Pectinibranchia (Mollusca: Gastropoda).

Смоленский государственный университет, 214000 г. Смоленск, ул. Пржевальского, 4
e-mail: gvberyoz50@mail.ru

Приведены описание и изображение яйцевых капсул и синкапсул наиболее распространенных в Европейской России 13 видов пресноводных Pectinibranchia, принадлежащих к семействам Neritidae, Lithoglyphidae, Valvatidae, Bithyniidae и Viviparidae. Впервые даны подробные сведения о морфологии кладок яиц Bithynia producta, B. decipiens, Cincinna macrostoma, C. ambigua и яйцевых капсул Lithoglyphus naticoides, Viviparus ater и Contectiana listeri. Выявленная изменчивость морфологических характеристик яйцевых капсул и синкапсул Cincinna, Bithynia, Viviparus и Contectiana не позволяет использовать их для видовой идентификации.

Ключевые слова: моллюски, пресноводные Pectinibranchia, кладки яиц.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Андреева С.И., Лазуткина Е.А. Морфологические особенности кладок яиц моллюсков семейства Bithyniidae (Gastropoda, Pectinibranchia) водоемов г. Омска и его окрестностей // Естественные науки и экология: Ежегодник Омcк. гос. пед. ун-та. Омск, 2004. Вып. 8. С. 155-159.
2. Березкина Г.В. Внутрипопуляционная изменчивость кладок яиц у некоторых Lymnaeidae // Научные чтения памяти профессора В.В. Станчинского. Смоленск: Смоленск. гос. пед. ун-т, 2004. Вып. 4. С. 329-334.
3. Березкина Г.В. Внутрипопуляционная изменчивость морфологии кладок яиц Planorbarius corneus (Linnaeus, 1758) (Gastropoda, Pulmonata) // Ruthenica. 2005. Т. 15. № 2. С. 149-156.
4. Березкина Г.В., Старобогатов Я.И. Морфология кладок яиц некоторых моллюсков рода Lymnaea (Gastropoda, Pulmonata) // Зоол. журн. 1981. Т. 60. Вып. 12. С. 1756-1768.
5. Березкина Г.В., Старобогатов Я.И. Экология размножения и кладки яиц пресноводных легочных моллюсков // Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 1988. Т. 174. 307 с.
6. Ивантер Э.В. Основы практической биометрии. Петрозаводск: Карелия, 1979. 96 с.
7. Козминский Е.В. Сезонная динамика размножения и репродуктивные показатели Bithynia tentaculata (Gastropoda, Prosobranchia) // Зоол. журн. 2003. Т. 82. № 3. С. 325-331.
8. Круглов Н. Д., Фроленкова О. А. Сравнительное изучение морфологии яйцевых капсул пресноводных гастропод Европейской части СССР. I. Подкласс Pectinibranchia (Planilabiata, Ectobranchia, Discopoda). II. Подкласс Pulmonata (Hygrophila) // Экология животных Смоленской и сопредельных областей. Смо­ленск: Смоленск. гос. пед. ин-т, 1980. С. 49-70.
9. Круглов Н.Д., Фроленкова О.А. Строение кладок яиц моллюсков семейства Valvatidae (Pectinibranchia, Ectobranchia) // Вестн. зоол. 1981. № 1. С. 52-58.
10. Лазуткина Е.А., Андреева С.И. Морфология кладок яиц моллюсков семейства Valvatidae (Gastropoda, Pectinibranchia) // Естественные науки и экология: Ежегодник Омск. гос. пед. ун-та. Омск, 2004. Вып. 8. С. 15-162.
11. Некрасов А.Д. Наблюдения над кладками пресноводных животных. II. Срав­нительная морфология кладок пресноводных Gastropoda // Рус. зоол. журн. 1927. Т. 7. Вып. 4. С. 153-179.
12. Некрасов А.Д. Наблюдения над кладками пресноводных животных. V. Кладки рода Valvata // Рус. зоол. журн. 1928. Т. 8. Вып. 1. С. 119-128.
13. Павлюченкова О.В. Особенности морфологии яйцевых капсул некоторых видов моллюсков семейства Viviparidae (Gastropoda, Pectinibranchia, Vivipariformes) // Моллюски: результаты и перспективы их исследований: Автореф. докл. Восьмого Всесоюз. совещ. по изуч. моллюсков. Л., 1987. С. 238-240.
14. Прозорова Л.А. Морфология кладок брюхоногих моллюсков Приморского края // Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 1991. Т. 228. С. 74-110.
15. Ситникова Т.Я. Результаты исследований кладок эндемичных байкальских моллюсков // Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 1991. Т. 228. С. 61-73.
16. Хлебович В.В. Размножение и развитие некоторых моллюсков в связи с особенностями их осморегуляции // Моллюски. Вопросы теории и прикладной малакологии: Тез. докл. М.; Л., 1965. Сб. 2. С. 31-32.
17. Lilly M.M. The mode of life and the structure and functioning of the reproductive ducts of Bithynia tentaculata (L.) // Proc. Malacol. Soc. London. 1953. V. 30. P. 87-110.
18. Nekrassow A.D. Vergleichende Morphologie der Laiche von Süsswasser-gastropoden // Z. Morphol. Ökol. Tiere. 1928. Abt. A. Вd 13. S. 1-35.

G.V. Beryozkina

The Morphology of Egg Capsules and Syncapsules in Freshwater Pectinibranchia (Mollusca: Gastropoda).

Smolensk State University, 214000 Smolensk, ul. Przewalsky, 4, Russia

Description and figures of egg capsules and syncapsules for 13 freshwater species of Pectinibranchia (Neritidae, Lithoglyphidae, Valvatidae, Bithyniidae and Viviparidae) widespread in the European part of Russia are given. For the first time the detailed morphology of egg masses of Bithynia producta, B. decipiens, Cincinna macrostoma, C. ambigua and egg capsules of Lithoglyphus naticoides, Viviparus ater and Contectiana listeri is described. It is shown that variability of morphological features of egg capsules and syncapsules cannot be used for species identification of Cincinna, Bithynia, Viviparus and Contectiana.

Keywords: molluscs, freshwater Pectinibranchia, egg masses.

Т. А. Ханаева*, Т. И. Земская*, Н. Л. Белькова*, О. М. Хлыстов*, Б. Б. Намсараев**

Разнообразие культивируемых прокариот в донных осадках Академического хребта оз. Байкал.

*Лимнологический институт Сибирского отделения РАН, 664033 Иркутск, ул. Улан-Баторская, 3
e-mail: tkhan@lin.irk.ru
**Институт общей и экспериментальной биологии, Бурятский научный центр Сибирского отделения РАН, 670047 Улан-Удэ, ул. Сахьяновой, 6

Проведено исследование микробных сообществ донных осадков оз. Байкал в районе Академического хребта в 100-метровом керне глубоководного бурения BDP-96. Показано распределение отдельных физиологических групп микроорганизмов по глубине керна. Филогенетический анализ культивируемых органотрофных микроорганизмов показал, что последовательности байкальских штаммов образуют кластеры вместе с культивируемыми бактериями, видовая принадлежность которых не определена.

Ключевые слова: донные отложения, озеро Байкал, прокариоты, филогенетический анализ.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Андреева И.С., Рябчикова Е.И., Печуркина Н.И. и др. Морфологический анализ аэробных микроорганизмов в керне глубокого бурения (оз. Байкал) // Геология и геофизика. 2001. Т. 42. № 1-2. С. 220-230.
2. Безрукова Е.В., Богданов Ю.А., Вильямс Д.Ф. и др. Глубокие изменения экосистемы Северного Байкала в голоцене // Докл. АН СССР. 1991. Т. 321. № 5. С. 1032-1037.
3. Белькова Н.Л. Таксономическое разнообразие микробного сообщества водной толщи озера Байкал: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Владивосток, 2004. 20 с.
4. Выхристюк Л.А. Органическое вещество донных осадков Байкала. Новосибирск: Наука, 1980. 80 с.
5. Земская Т.И., Намсараев Б.Б., Парфенова В.В. и др. Микроорганизмы донных осадков озера Байкал и экологические условия среды // Экология. 1997. № 1. С. 40-44.
6. Коллектив участников проекта “Байкал-Бурение” “Непрерывная запись климатических изменений в отложениях озера Байкал за последние 5 млн лет” // Геология и геофизика. 1998. Т. 39. № 2. С. 139-156.
7. Кузнецов С.И., Дубинина Г.А. Методы изучения водных микроорганизмов. М: Наука, 1989. 288 с.
8. Намсараев Б.Б., Дулов Л.Е., Земская Т.И., Карабанов Е.Б. Геохимическая деятельность сульфатредуцирующих бактерий в донных осадках оз. Байкал // Микробиология. 1995. Т. 64. № 3. С. 405-410.
9. Намсараев Б.Б., Дулов Л.Е., Соколова Е.Н., Земская Т.И. Бактериальное образование метана в донных осадках озера Байкал // Микробиология. 1995. Т. 64. № 3. С. 411-417.
10. Парфенова В.В., Белькова Н.Л., Денисова Л.Я. и др. Изучение видового состава культивируемых гетеротрофных микроорганизмов оз. Байкал // Биология внутр. вод. 2006. № 1. С. 8-15.
11. Репин В.Е., Торок Т., Дегтярев С.Х. и др. Микробиологическое и биотехнологическое исследование донных осадков из скважин глубокого бурения озера Байкал и анализ воды горячих источников (Змеиный, Горячинский) // Геология и геофизика. 2001. Т. 42. № 1-2. С. 235-240.
12. Репин В.Е., Торок Т., Кузьмин М.И. Биоразнообразие микроорганизмов глубинных донных осадков озера Байкал // Геология и геофизика. 2001. Т. 42. № 1-2. С. 231-234.
13. Романенко В.И., Кузнецов С.И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Лабораторное руководство. Л.: Наука, 1974. 194 с.
14. Bergey's Manual of determinative bacteriology. Baltimore: The Williams and Wilkins Comp., 1977. 2648 р.
15. Cragg B.A., Parkes R.J., Fry J.C. et al. Bacterial biomass and activity profiles within deep sediment layers // Proc. ODP, Sci. Res. 1990. V. 112. P. 607-619.
16. De Ley J., Cattoir H., Reynaerts A. The guantitative measurement of DNA hybridization from renaturation rates // Eur. J. Biochem. 1970. V. 12. P. 133-142.
17. Johnson S.S., Hebsgaard M.B., Christensen T.R. et al. Ancient bacteria show evidence of DNA repaid // Proc. Nat. Acad. Sci. 2007. V. 104. № 36. P. 14 401-14 405.
18. Karabanov E.B., Procopenko A.A., Williams D.F. et al. Evidence for mid-Eemian cooling in continental climatic record from Lake Baikal // J. Paleolimnol. 2000. V. 23. P. 365-371.
19. Schippers A., Neretin Lev N., Kallmeyer J. et al. Procaryotic cells of the deep sub-seafloor biosphere identified as living bacteria // Nature. 2005. V. 433. P. 861-864.

T.A. Khanaeva*, T.I. Zemskaya*, N.L. Bel’kova*, O.M. Khlystov*, B. B. Namsaraev**

Diversity of сulturable procaryotes in bottom sediments of the Academichesky Ridge, Lake Baikal.

*Limnological Institute SВ RAS, 664033 Irkutsk, ul. Ulan-Batorskaya, 3, Russia
**Institute of General and Experimental Biology, Buryat Scientific Center SB RAS, 670047 Ulan-Ude, ul. Sakhyanova, 6, Russia

Microbial communities of bottom sediments of Lake Baikal sampled from the Academichesky Ridge during deep drilling BDP-96 (a 100-m core) have been studied. Distribution of some physiological groups of microorganisms in the core has been shown. Phylogenetic analysis of culturable microorganisms shows that sequences of Baikal strains form clusters with culturable bacteria the species of which have not been identified yet.

Keywords: sediments, Lake Baikal, procaryots, phylogenetic analysis.

Н.В. Чукина, Г.Г. Борисова

Структурно-функциональные показатели высших водных растений из местообитаний с разным уровнем антропогенного воздействия.

Уральский государственный университет, 620083 г. Екатеринбург, ул. Ленина, 51
e-mail: nady_dicusar@mail.ru

Изучены химический состав, параметры фотосинтетического аппарата, система антиоксидантной защиты у высших водных растений из местообитаний с разным уровнем антропогенного воздействия. Проведен анализ поглотительной способности растений по отношению к тяжелым металлам.

Ключевые слова: высшие водные растения, макрофиты, антропогенное воздействие, загрязнение водной среды, физиолого-биохимические адаптации.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Борисова Г.Г., Чукина Н.В., Малева М.Г. Аккумуляция гидрофитами тяжелых металлов в зависимости от их содержания в водной среде // Чистая вода России-2007: Матер. IX Международ. cимпоз. Екатеринбург, 2007. С. 66-71.
2. Вода России: вода в государственной стратегии безопасности. Екатеринбург: АКВАПРЕСС, 2001. 480 с.
3. Государственный доклад “О состоянии окружающей природной среды и влиянии факторов среды обитания на здоровье населения Свердловской области в 2006 году”. Екатеринбург: Правительство Свердлов. обл., 2008. 290 с.
4. Ипатова В.И. Адаптация водных растений к стрессовым абиотическим факторам среды. М.: Графикон-принт, 2005. 224 с.
5. Лукина Л.Ф., Смирнова Н.Н. Физиология высших водных растений. Киев: Наук. думка, 1988. 186 с.
6. Макурина О.Н., Удиванкин А.В. Некоторые биохимические показатели Potamogeton perfoliatus L. как индикаторы антропогенного загрязнения Саратовского водохранилища тяжелыми металлами // Вестн. Самар. гос. ун-та: Естественно-науч. сер. 2006. № 7. С. 134-138.
7. Малева М.Г., Борисова Г.Г, Новачек О.И., Волгарева В.В. Повышение содержания тиоловых групп в листьях гидрофитов как ответная реакция на антропогенное загрязнение гидроценозов тяжелыми металлами // Экология промышленного региона и экологическое образование: Матер. Всерос. науч.-практ. конф. Нижний Тагил, 2004. С. 64-69.
8. Микрякова Т.Ф. Накопление тяжелых металлов макрофитами в условиях различного уровня загрязнения водной среды // Вод. ресурсы. 2002. Т. 29. № 2. С. 253-255.
9. Мокроносов А.Т., Борзенкова Р.А. Методика количественной оценки структуры и функциональной активности фотосинтезирующих тканей и органов // Тр. по прикладной ботанике, генетике и селекции. 1978. Т. 61. С. 119-133.
10. Починок Х.Н. Методы биохимического анализа растений. Киев: Наук. думка, 1975. 334 с.
11. Сачкова О.А., Коннова С.А., Игнатов В.В. Полисахариды и свободные аминокислоты высших водных растений // Химия и технология растительных веществ: Матер. II Всерос. конф. Казань, 2002. С. 89-92.
12. Тарчевский И.А. Катаболизм и стресс у растений. М.: Наука, 1993. 80 с.
13. Черняев А.М., Прохорова И.Б. Водные ресурсы, их использование и охрана. Екатеринбург: Изд-во Рос. НИИ вод. хоз-ва, 2002. 299 с.
14. Чукина Н.В., Борисова Г.Г. Ответные реакции гидрофитов на загрязнение водной среды // Экологическая безопасность горнопромышленных регионов: Матер. 1-го Уральск. международ. экол. конгр. Екатеринбург, 2007. Т. 2. С. 36-41.
15. Bates L.S. Rapid determination of free proline for water stress studies // Plant and Soil. 1973. V. 39. P. 205-207.
16. Beauchamp C., Fridovich I. Superoxide dismutase: Improved assays and an assay applicable to acrilamide gels // Anal. Biochem. 1971. V. 44. P. 276-287.
17. Chance B., Maehly A.C. Assay catalase and peroxidase. Methods in Enzymology. N.Y.: Acad. Press, 1955. P. 764-775.
18. Couee I., Sulmon C., Gouesbet G., Amrani A.E. Involvement of soluble sugars in reactive oxygen species balance and responses to oxidative stress in plants // J. Exp. Bot. 2006. V. 57. № 3. P. 449-459.
19. Fales F.W. The assimilation and degradation of carbohydrates of yeast cells // J. Biol. Chem. 1951. V. 193. P. 113-116.
20. Kumar G.P., Prasad M.N.V. Cadmium adsorption and accumulation by Ceratophyllum demersum L.: a fresh water macrophyte // Eur. J. Miner. Proces. Envir. Prot. 2004. V. 4. № 2. P. 95-100.
21. Shakterle T.R., Pollack R.L. A simplified method for the quantities assay of small amounts of protein in biological material // Anal. Biochem. 1973. V. 51. № 2. P. 654-655.
22. Uchiyama M., Mihara M. Determination of malonaldehyde precursor in tissues by tiobarbituric acid test // Anal. Biochem. 1978. V. 86. P. 287-297.
23. Zurayk R., Sukkariyah B., Baalbaki R. Common hydrophytes as bioindicators of nickel, chromium and cadmium pollution // Water, Air and Soil Pollut. 2001. V. 127. P. 373-388.

N.V. Chukina, G.G. Borisova

Structural and Functional parameters of higher Aquatic plants from habitats with a different level of anthropogenous impact.

Ural State University, 620083 Ekaterinburg, ul. Lenina, 51, Russia

The chemical composition, parameters of the photosynthetic apparatus of leaves, system of antioxidant protection of higher aquatic plants from waterbodies with a different level of pollution are investigated. The analysis of absorbing ability of the plants in relation to heavy metals is carried out.

Keywords: higher aquatic plants, macrophytes, anthropogenous impact, water pollution, physiological and biochemical adaptations.

Д.А. Дурникин

Экологическая эволюция гидрофитобиоты Западной Сибири.

Алтайский государственный университет, 656099 г. Барнаул, проспект Ленина, 61
е-mail: Durnikin@list.ru

Прослежена история развития гидрофитобиоты в зависимости от адаптации к экологическим условиям в палеогене и неогене Западной Сибири. Приведен геохронологический список ископаемых видов гидрофильной флоры, разработана классификация реликтовых элементов.

Ключевые слова: гидрофильная флора, кайнозой, Западная Сибирь, палеоботаника.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Богдановская-Гиенэф И.Д. О происхождении флоры бореальных болот Евразии // Матер. по истории флоры и растительности СССР. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1946. Вып. 2. С. 425-468.
2. Вульф Е.В. Историческая география растений. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1936. 322 с.
3. Дорофеев П.И. Новые данные об олигоценовой флоре у д. Реженки в ЗС // Докл. АН СССР. 1958. Т. 123. Вып. 1. 123 с.
4. Дорофеев П.И. Об олигоценовой флоре с. Козюлино в устье р. Томи. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1959. 127 с.
5. Дорофеев П.И. Об олигоценовой флоре Дунаевского яра на р. Тым в ЗС. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1960. 132 с.
6. Дорофеев П.И. Третичные флоры ЗС. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1963. 346 с.
7. Ершов И.Ю. Фитоценосистемы озер Валдайской возвышенности Рыбинск: Дом печати, 2002. 136 с.
8. История развития растительности внеледниковой зоны Западно-Сибирской низменности в позднеплиоценовое и четвертичное время // Тр. Ин-та геологии и геофизики. 1970. Вып. 92. 364 с.
9. Камелин Р.В. О некоторых основных проблемах флорогенетики // Ботан. журн. 1969. Т. 54. № 6. С. 892-901.
10. Клеопов Ю.Д. Анализ флоры широколиственных лесов европейской части СССР. Киев: Наук. думка, 1990. 352 с.
11. Краснова А.Н. Структура гидрофильной флоры техногенно-трансформированных водоёмов Северо-Двинской водной системы. Рыбинск: Дом печати, 1999. 200 с.
12. Крашенинников И.М. Анализ реликтовой флоры Южного Урала в связи с историей растительности и палеогеографии плейстоцена // Сов. ботаника. 1937. Вып. 4. С. 16-45.
13. Кузьмичев А.И. Гигрофильная флора юго-запада Русской равнины и ее генезис. Спб.: Гидрометеоиздат, 1992. 215 с.
14. Никитин В.П. Палеокарпология и стратиграфия палеогена и неогена Азиатской России. Новосибирск: Гео, 2006. 229 с.
15. Никитин П.А. Семенная миоценовая флора у г. Томска // Докл. АН СССР. 1935. Т. 3(8). № 3 (63). С. 133-136.
16. Никитин П.А. Четвертичные семенные флоры с низовьев р. Иртыша // Тр. биол. НИИ, 1936. Вып. 2. С. 23-58.
17. Никитин П.А. Четвертичные семенные флоры берегов р. Оби // Матер. по геологии Западной Сибири. 1940. № 12 (54). С. 12-61.
18. Никитин П.А. Семенные флоры четвертичных отложений Западно-Сибирской низменности: Тез. докл. к Всесоюз. совещ. по изучению четветричного периода. Секция истории флоры, фауны и древнего человека. Новосибирск, 1964. С. 45-79.
19. Пешкова Г.А. Флорогенетический анализ степной флоры гор Южной Сибири. Новосибирск: Наука, 2001. 192 с.
20. Положий А.В., Крапивкина Э.Д. Реликты третичных широколиственных лесов во флоре Сибири. Томск: Изд-во Томск. ун-та, 1985. 250 с.
21. Попов М.Г. Основы флорогенетики. М.: Изд-во АН СССР, 1963. 135 с.
22. Ревердатто В.В. Основные моменты развития послетретичной флоры Средней Сибири // Сов. ботаника. 1940. Вып. 2. С. 48-64.
23. Ревердатто В.В. Ледниковые и степные реликты во флоре Средней Сибири в связи с историей флоры // Научные чтения памяти М.Г. Попова. Новосибирск: РИО СО АН СССР, 1960. Вып. 1-2. С. 111-131.
24. Силантьева М.М. Классификация реликтовых элементов Алтайского края. Проблемы ботаники Южной Сибири и Монголии: Матер. VI Международ. научно-практич. конф. Барнаул, 2007. С. 60-62.
25. Сукачев В.Н. О находке ископаемой арктической флоры на р. Иртыш у с. Демьянского Тобольской губернии // Изв. АН. 1910. Сер. 6. Т. 4. № 6. С. 24-56.

D.A. Durnikin

Ecological Evolution of Hydrophytobiota of the Western Siberia.

Altay State University, 656099 Barnaul, Pr. Lenina, 61, Russia

This paper considers the history of hydrophytobiota development depending on adaptation to ecological conditions in Paleogen and Neogene of the Western Siberia. A geochronological list of fossil species of aquatic flora and classification of relic elements are developed.

Keywords: hydroflora, Kajnozoi, Western Siberia, paleobotany.

А.В. Крылов, А.И. Цветков, М.И. Малин, А.В. Романенко, С.А. Поддубный, Н.Г. Отюкова

Сообщества гидробионтов и физико-химические параметры устьевой области притока равнинного водохранилища.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: krylov@ibiw.yaroslavl.ru

На основе физико-химических параметров в зоне подпора вод притока Рыбинского водохранилища выделены переходный и стабильный участки. Описано распределение бактерио-, зоопланктона и плотности рыбного населения, показаны черты сходства и различий сообществ гидробионтов в реке, водохранилище и зоне контакта их вод. По ряду признаков зона подпора определена как экотон.

Ключевые слова: малая река, водохранилище, бактериопланктон, зоопланктон, численность, биомасса, видовое разнообразие, экотон.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Базаров М.И., Малин М.И. Возможности использования рыбопоисковых эхолотов для определения численности рыб // Рыб. хоз-во. 2007. № 6. С. 99-101.
2. Ильина Л.К., Гордеев Н.А., Стрижникова Л.Н. Роль притоков Рыбинского водохранилища в размножении фитофильных рыб и особенности нерестилищ в маловодные годы // Фауна беспозвоночных и условия воспроизводства рыб в прибрежной зоне Верхне-Волжских водохранилищ. Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод АН СССР, 1978. С. 124-135.
3. Крылов А.В. Зоопланктон равнинных малых рек. М.: Наука, 2005. 263 с.
4. Методика выполнения измерений биохимической потребности в кислороде после n-дней инкубации (БПКполн) в поверхностных пресных, подземных (грунтовых), питьевых, сточных и очищенных сточных водах ПНД Ф 14.1:2:3:4.123-97. М.: Гос. комитет РФ по охране окружающей среды, 1997. 28 с.
5. Методика выполнения измерений содержания растворенного кислорода в пробах природных и очищенных сточных вод йодометрическим методом ПНД Ф 14.1:2.101-97. М.: Гос. комитет РФ по охране окружающей среды, 1997. 22 с.
6. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
7. Муравейский С.Д. Животный планктон реки Керженца // Реки и озера. М.: Гос. изд-во геогр. литературы, 1960. С. 308-326.
8. Мяэметс А.Х. Изменения зоопланктона // Антропогенное воздействие на малые озера. Л.: Наука, 1980. С. 54-64.
9. Одум Ю. Основы экологии. М.: Мир, 1975. 740 с. Odum E.P. Fundamentals of Ecology. Philadelphia; L.; Toronto, 1971.
10. Оксиюк О.П., Жукинский В.Н., Брагинский Л.П. и др. Комплексная экологическая классификация качества поверхностных вод суши // Гидробиол. журн. 1993. Т. 29. № 4. С. 62-76.
11. Олексив И.Т. Показатели качества природных вод с экологических позиций. Львов: Свит, 1992. 232 с.
12. Охапкин О.Г., Юлова Г.А. Анализ динамических взаимодействий водохранилища и эвтрофированного притока по показателям видовой структуры фитопланктона // Экологические проблемы бассейнов крупных рек. Тольятти: Ин-т экологии Волж. бассейна РАН, 1993. С. 112-113.
13. Рохмистров В.Л. Гидрологическая характеристика р. Солоницы в зоне подпора // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1973. № 23. С. 57-59.
14. Руководство по химическому анализу поверхностных вод суши. Л.: Гидрометеоиздат, 1977. 542 с.
15. Столбунов И.А. Особенности распределения молоди рыб в прибрежной зоне Рыбинского водохранилища // Биология внутр. вод. 2007. № 4. С. 55-61.
16. Харченко Т.А. Концепция экотонов в гидробиологии // Гидробиол. журн. 1991. Т. 27. № 4. С. 3-9.
17. Цветков А.И., Цветкова М.В., Поддубный С.А. Гидроэкологическая характеристика устьевой области малой реки под влиянием подпора Рыбинского водохранилища // Матер. молод. науч. конф. “Экологические проблемы Севера”. Архангельск: Архангельск. гос. техн. ун-т, 2008. С. 92-94.
18. Юданов К.И. Расшифровка эхограмм гидроакустических рыбопоисковых приборов. М.: Пищ. пром-сть, 1967. 116 с.
19. Holland M.M. SCOPE//MAB technical consultations on landscape boundaries. Report of SCOPE//MAB Workshop on Ecotones // Biol. Int. 1988. Spec. Issue 17. P. 47-106.
20. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPI for identifying and counting aquatic microflora // Limnol., Oceanogr. 1980. V. 25. № 5. P. 943-948.

А.V. Krylov, А.I. Tsvetkov, М.I. Мalin, А.V. Romanenko, S.A. Poddubnyi, N.G. Otjukova

Communities of Hydrobionts and physical and Chemical conditions of the estuary area of inflow of а flat water basin.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The transitive and stable sites in the zone of changeable backup waters of inflow of the Rybinsk reservoir are determined in terms of physicochemical parameters. The distribution of bacterio- and zooplankton and density of the fish population is described. The traits of similarity and distinction of hydrobionts of the river, the reservoir and the zone of their waters contact are shown. The zone of changeable backup waters is determined as ecotone on account of the number of typical features.

Keywords: small river, water basin, bacterioplankton, zooplankton, number, biomass, ecotone.

H. Ben Naceur*, A. Ben Rejeb Jenhani**, M. S. Romdhane**

Variability of Artemia salina Cysts from Sabkhet El Adhibet (Southeast Tunisia) with Special Regard to their Use in Aquaculture.

*Research Unit Ecosystems and Aquatics Resources
**National Institute of Agricultural Sciences of Tunisia, Carthage University, 43 Av. Charles Nicolle, cité El Mahrajéne, 1082 Tunis, Tunisia
e-mail: hachem_b_naceur@yahoo.fr

Brine shrimp Artemia (Crustacea, Anostraca) diverge in biometry and nutritional quality. These differences in Artemia characteristics are significant not only from strain to strain but also from one harvest to another within same strain. The main objective of this study was to compare Artemia salina cysts harvested from Sabkhet El Adhibet (southeast Tunisia) on different dates between 2002 and 2007 with special regard to their use in aquaculture, using cysts and naupliar biometrics, protein, carbohydrate, and lipid content. Fatty acid profiles as well as hatching characterisation were also evaluated. Hydrated cysts measures ranged between 258.1 and 263.7 µm, while the freshly hatched nauplii of Artemia measures ranged between 458.1 and 476.1 µm. Lipid contents of the samples ranged from 16.2 to 18.3% of the dry weight. Fatty acid profiles showed that cysts from Sabkhet El Adhibet contain a high quantity of eicosapentaenoic acid (20:5n-3) with a percentage ranging between 7.8 and 14.3% of the dry weight. The highest hatching efficiency was obtained for decapsulated cysts collected in 2007 (139 500 nauplii g-1 of cysts). Cysts treated with hydrogen peroxide had a hatching percentage of 14.49 to 42.99%. The hatching synchronization time for untreated cysts varied between 23.5 to 27.4 h.

Keywords: Sabkhet El Adhibet, Artemia salina cysts, protein, carbohydrate, lipid contents.

REFERENCES

1. Abatzopoulos T.J., Agh N., Van Stappen et al. Artemia sites in Iran // J. Mar. Biol. Ass. U.K., 2006. V. 86. P. 299-307.
2. Abatzopoulos T.J., Baxevanis A.D., Triantaphyllidis G.V. et al. International Study on Artemia. LXIX. Quality evaluation of Artemia urmiana Günther (Urmia Lake, Iran) with special emphasis on its particular cyst characteristics // Aquaculture. 2006. V. 254. P. 442-454.
3. Abatzopoulos T.J., Beardmore J.A., Clegg J.S., Sorgeloos P. Artemia: Basic and Applied Biology. Dordrecht: Kluwer Acad. Publ., 2002.
4. Abatzopoulos T.J., Zhang B., Sorgeloos P. International Study on Artemia. LIX. Artemia tibetiana: preliminary characterization of a new Artemia species found in Tibet (People's Republic of China) // Int. J. Salt Lake Res. 1998. V. 7. P. 41-44.
5. Agh N., Sorgeloos P. Handbook of protocols and guidelines for culture and enrichment of live food for use in larviculture, Artemia and Aquatic Animals Research Center. Urmia: Urmia Univ., 2005.
6. Amat F., Hontoria F., Ruiz O. et al. The American brine shrimp as an exotic invasive species in the western Mediterranean // Biol. Invasions. 2005. V. 7. P. 37-47.
7. Asem A., Rastegar-Pouyani N. Morphological differentiation of Artemia urmiana Günther 1899 (Crustacea: Anostraca) in different geographical stations from the Urmia Lake, Iran // Res. J. Biol. Sci. 2008. V. 3. P. 222-228.
8. Beck A.D., Bengtson A.D. International study on Artemia. XXII. Nutrition in aquatic toxicology: diet quality of geographical strains of Artemia: effect on survival and growth of larval Atlantic silverside Menidia menidia // The Brine Shrimp Artemia: Ecology, Culturing, use in Aquaculture. Wetteren: Univ. Press, 1982. V. 3. P. 249-259.
9. Bengtson D.A., Léger P., Sorgeloos P. Use of Artemia as a food source for aquaculture // Artemia Biology. Boca Raton: CRC Press, 1991. V. 11. P. 255-285.
10. Benijts F., Vanvoorden E., Sorgeloos P. Changes in the biochemical composition of the early larval stages of the brine shrimp, Artemia salina L. // Proc. of the 10th European Symp. Mar. Biol. Wetteren: Univ. Press, 1979. V. 1. P. 1-9.
11. Ben Naceur H., Ben Rejeb Jenhani A., Romdhane M.S. Valorisation de l’Artemia (Crustacea; Branchiopoda) de la saline de Sahline (Sahel Tunisien) // Bull. Soc. Zool. Fr. 2008. V. 133. P. 185-192.
12. Bowen S.T., Buoncristiani M.R., Carl J.R. Artemia habitats: ion concentrations tolerated by one superspecies // Hydrobiologia. 1988. V. 158. P. 201-214.
13. Bransden M.P., Battaglene S.C., Morehead D.T. et al. Effect of dietary 22:6n-3 on growth, survival and tissue fatty acid profile of striped trumpeter (Latris lineata) larvae fed enriched Artemia // Aquaculture. 2005. V. 243. P. 331-344.
14. Camargo W.N., Duran G.C., Rada O.C. et al. Determination of biological and physicochemical parameters of Artemia franciscana strain in hypersaline environments for aquaculture in the Colombian Caribbean // Saline Systems. 2005. V. 1. № 9.
15. De Clercq P., Arijs Y., Van Meir T. et al. Nutritional value of brine shrimp cysts as a factitious food for Orius laevigatus (Heteroptera: Anthocoridae) // Biol. Sci. Tech. 2005. V. 15. P. 467-479.
16. Dhont J., Sorgeloos P. Application of Artemia // Artemia: Basic and Applied Biology. Kluwer: Acad. Publ., 2002. P. 251-277.
17. Dubois M., Gilles K.A., Hamilton J.K. et al. Colorimetric method for determination of sugar and related substances // Anal. Chem. 1956. V. 28. P. 350-356.
18. Eads B.D. Salty survivors: Artemia: Basic and Applied Biology // J. Exp. Biol. 2004. V. 207. P. 1757-1758.
19. El-Magsodi M.O., El-Ghebli H.M., Hamza M. et al. Characterization of Libyan Artemia from Abu Cammash Sabkha // Libyan J. Mar. Sci. 2005. V. 10. P. 19-30.
20. Evjemo J.O., Olsen Y. Lipid and fatty acid content in cultivated live feed organisms compared to marine copepods // Hydrobiologia. 1997. V. 358. P. 159-162.
21. Folch J., Lees N., Sloane-Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues // J. Biol. Chem. 1957. V. 266. P. 497-509.
22. Han K., Geurden I., Sorgeloos P. Fatty acid changes in enriched and subsequently starved Artemia franciscana nauplii enriched with different essential fatty acids // Aquaculture. 2001. V. 199. P. 93-105.
23. Kara M.H., Bengraine K.A., Derbal F. et al. Quality evaluation of a new Artemia from chott Marouane (Northeast Algeria) // Aquaculture. 2004. V. 235. P. 361-369.
24. Lavens P., Léger P., Sorgeloos P. Manipulation of the fatty acid profile in Artemia offspring produced in intensive culture systems // Aquaculture and Biotechnology in Progress. Bredene: Eur. Aquaculture Soc. 1989. P. 731-739.
25. Lavens P., Tackaert W., Sorgeloos P. International study on Artemia. XLI. The influence of culture conditions and specific diapause deactivation methods on the hatchability of Artemia cysts produced in a standard culture system // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1986. V. 31. P. 197-203.
26. Léger P., Bengtson D.A., Simpson K.L., Sorgeloos P. The use and nutritional value of Artemia as a food source // Oceanogr. Mar. Biol. Annu. Rev. 1986. V. 24. P. 521-623.
27. Lepage G., Roy C.C. Improved recovery of fatty acid through direct trans-esterification without prior extraction or purification // J. Lip. Res. 1984. V. 25. P. 1391-1396.
28. Lowry O.H., Rosebrough W.J., Fair H.L., Randall R.J. Protein measurement with Folin-phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. V. 195. P. 265-275.
29. Millamena O.M., Bombeo R.F., Jumalon N.A., Simpson K.L. Effects of various diets on the nutritional value of Artemia sp. as food for the prawn Penaeus monodon // Mar. Biol. 1988. V. 98. P. 217-221.
30. Navarro J.C., Amat F., Sargent J.R. The lipids of the cysts of freshwater and marine type Artemia // Aquaculture. 1993. V. 109. P. 327-336.
31. Romdhane M.S., Ben Chikh N., Ghlala I., Charfi F. La biodiversité de l’Artemia dans les salines et les sabkha tunisienne. Algeria: Int. workshop sur la biodiversité marine, 2001.
32. Romdhane M.S., Ben Naceur H., Hamrouni S. et al. Biological and biochemical characterisation of Artemia from Tunisian wetlands, International Workshop on Artemia, Urmia // Iran. INCO-DEV Project on Artemia Biodiversity (ICA4-CT-2001-10020). 2004. P. 89-91.
33. Sato N.E., Mallo J.C., Fenucci J.L. Quality of Artemia persimilis (Piccinelli and Prosdocimi) (Crustacea: Branchiopoda) cysts from different zones of Argentina as food in aquaculture // Rev. Biol. Mar. Oceanogr. 2004. V. 39. P. 79-92.
34. Sorgeloos P. The culture and use of brine shrimp Artemia salina as food for hatchery raised larval prawns, shrimp and fish in South East Asia // FAO Report THA/75/008/78/WP3, 1978.
35. Sorgeloos P. Report on the determination and identification of biological characteristics of Artemia urmiana for application in aquaculture // Lake Urmia cooperation project, Faculty of Agriculture and Applied Biological Science, Laboratory of Aquaculture and Artemia Reference Centre. Ghent: Ghent Univ., 1997. P. 6-16.
36. Sorgeloos P., Lavens P., Léger P. et al. Manual for the culture and use of brine shrimp Artemia in aquaculture. Ghent: Artemia reference Centre, 1986.
37. Triantaphyllidis G.V., Abatzopoulos T.J., Sorgeloos P. Review of the biogeography of the genus Artemia (Crustacea, Anostraca) // J. Biogeogr. 1998. V. 25. P. 213-226.
38. Van Ballaer E., Versichele D., Vanhaecke P. et al. Characterization of Artemia from different localities in Tunisia with regard to their use in local aquaculture // Artemia Research and its Applications. Wetteren: Univ. Press, 1987. V. 1. P. 199-209.
39. Vanhaecke P., Siddall S.E., Sorgeloos P. The biogeography of Artemia: an updated review // Artemia Research and its Application. Wetteren: Univ. Press, 1987. V. 1. P. 129-155.
40. Vanhaecke P., Sorgeloos P. International Study on Artemia. IV. The biometrics of Artemia strains from different geographical origin // The brine shrimp Artemia, Ecology, culturing, use in aquaculture. Wetteren: Univ. Press, 1980. V. 3. P. 393-405.
41. Vanheacke P., Sorgeloos P. International study on Artemia XVIII. The Hatching rate of Artemia cysts – A Comparative Study // Aquac. Eng. 1982. V. 1. P. 263-273.
42. Vanhaecke, P., Sorgeloos, P. International Study on Artemia. XIX. Hatching data for ten commercial sources of brine shrimp cysts and re-evaluation of the “hatching efficiency” concept // Aquaculture. 1983. V. 30. P. 43-52.
43. Van Stappen G. Artemia: Use of cysts // Manual on the production and use of life food for the aquaculture. FAO Fishery Technical paper. 1996. V. 361.
44. Van Stappen G., Sui L., Xin N., Sorgeloos P. Characterization of high-altitude Artemia populations from the Qinghai-Tibet Plateau, PR China // Hydrobiologia. 2003. V. 500. P. 179-192.
45. Watanabe T., Kilajima C., Fujita S. Nutritional values of live food organisms used in Japan for the mass propagation of fish: a review // Aquaculture. 1983. V. 34. P. 115-143.
46. Watanabe T., Oowa F., Kitajima C., Fujita S. Relationship between dietary value of brine shrimp Artemia salina and their content of w3 highly unsaturated fatty acids // Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish. 1980. V. 44. P. 1115-1121.
47. Xin N., Sun J., Zhang B. et al. International Study on Artemia. LI. New survey of Artemia resources in the People’s Republic of China // Int. J. Salt Lake Res. 1994. V. 3. P. 105-112.

H. Бeн Насeр*, A. Бeн Реджеб Дженхани**, M. С. Ромдан**

Изучение изменчивости цист Аrtemia salina из Сабхет Эль Адхибет (юго-восточный Тунис) для использования их в аквакультуре.

*Исследовательский отдел экосистем и водных ресурсов
**Национальный институт сельскохозяйственных наук Туниса, Карфагенский университет, авеню Чарльза Николе, 43, Эль Мараджен, 1082 Тунис

Голый жаброног Аrtemia (Crustacea, Anostraca) различается по биометрии и пищевому качеству. Эти различия в характеристиках артемии существенны не только между ее расами, но и в пределах одной расы. Основная задача исследования – сравнить цисты Artemia salina, собранные в Сабхет Эль Адхибет (юго-восточный Тунис) в разное время между 2002 и 2007 гг., по биометрическим показателям, содержанию белков, углеводов и липидов в цистах и науплиях, учитывая возможное использование их в аквакультуре. Дан анализ содержания жирных кислот и характеристик вылупления. Размеры гидратированных цист колебались от 258.1 до 263.7 мкм, в то время как у только что вылупившихся науплиев Artemia – от 458.1 до 476.1 мкм. Содержание липидов в пробах варьировало от 16.2 до 18.3% сухой массы. Анализ жирных кислот показал, что цисты из Сабхет Эль Адхибет содержат большое количество полиненасыщенной эйкозапентаеновой кислоты (20:5ω3) – от 7.8 до 14.3% сухой массы. Максимальная вылупляемость зарегистрирована из декапсулированных цист, собранных в 2007 г. (139 500 науплиев на 1 г цист). При обработке перекисью водорода вылуплялось от 14.49 до 42.99% цист. Синхронизированное время вылупления для необработанных цист варьировало от 23.5 до 27.4 ч.

Ключевые слова: юго-восточный Тунис, цисты Artemia salina, содержание белков, углеводов и жиров.

С.Г. Соколов

Новые сведения о гельминтах "речной" молоди звездчатой камбалы Platichthys stellatus (Pallas, 1787) (Osteichthyes, Pleuronectidae) Западной Камчатки.

Центр паразитологии Института проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Ленинский пр. 33
e-mail: sokolovsg@mail.ru

У молоди звездчатой камбалы из р. Утхолок (охотоморское побережье Камчатки) отмечено >20 видов гельминтов, подавляющее большинство которых найдено впервые. Приведены рисунки и морфологическая характеристика моногеней рода Gyrodactylus (G. flesi, G. cf. robustus и Gyrodactylus sp.) и личинок нематод Acuariidae gen. sp. Дан краткий экологический анализ зараженности молоди камбалы.

Ключевые слова: Platichthys stellatus, Камчатка, гельминты, Gyrodactylus, Acuariidae.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Жуков Е.В. Паразитофауна рыб Чукотки. I. Моногенетические сосальщики морских и пресноводных рыб // Паразитол. сб. 1960. Т. 19. С. 308-332.
2. Карманова И.В. Паразиты тихоокеанских лососей в эпизоотической обстановке паразитозов в бассейне реки Паратунки (Камчатка): Автрореф. дис. ... канд. биол. наук. Петропавловск-Камчатский, 1998. 23 с.
3. Кулачкова В.Г. Моногенеи сельдей Белого моря // Биология беломорской сельди. Л.: Наука, 1975. С. 134-168.
4. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 352 с.
5. Паразитические черви рыб дальневосточных морей и сопредельных акваторий Тихого океана. Владивосток: ТИНРО-центр, 1999. 123 с.
6. Пронькина Н.В., Белофастова И.П. Новые данные о нематодах черноморского сингиля Liza aurata (Pisces: Mugilidae) // Экология моря. 2005. Вып. 68. С. 77-82.
7. Пустовит О.П., Пичугин М.Ю. Некоторые особенности динамики рыбного населения в эстуарии р. Утхолок // Матер. VII международ. науч. конф. Петропавловск-Камчатский, 2006. С. 294-297.
8. Соколов С.Г. Обзор паразитов микижи Parasalmo mykiss (Osteichthyes: Salmonidae) полуострова Камчатка // Зоология беспозвоночных. 2005. Т. 2. С. 35-60.
9. Токранов А.М. Размерно-возрастная структура звездчатой камбалы Platichthys stellatus в эстуарии реки Большая (западная Камчатка) // Вопр. ихтиологии. 1993. Т. 33. С. 305-308.
10. Токранов А.М., Базаркин Г.В. О нахождении звездчатой камбалы Platichthys stellatus в озерах нижнего течения р. Камчатка // Сохранение биоразнообразия Камчатки и прилегающих морей: Матер. IV науч. конф. Петропавловск-Камчатский, 2003. С. 104-106.
11. Токранов А.М., Максименков В.В. Особенности питания звездчатой камбалы Platichthys stellatus в эстуарии р. Большая (Западная Камчатка) // Вопр. ихтиологии. 1993. Т. 33. С. 561-565.
12. Фадеев Н.С. Северотихоокеанские камбалы (распространение и биология). М.: Агропромиздат, 1987. 175 с.
13. Anderson R., Wong P. The transmission and development of Paracuaria adunca (Creplin, 1846) (Nematoda: Acuarioidea) of gulls (Laridae) // Can. J. Zool. 1982. V. 60. P. 3092-3104.
14. Janiszewska J. Studien über die Entwicklung und die Lebensweise der parasitischen Würmer in der Flunder (Pleuronectes flesus L.) // Mém. Acad. Polon. Sci. Lettres. Classe sciences mathématiques et naturelles. Ser. B. 1938. № 14. P. 1-68.
15. Love M., Moser M. A checklist of parasites of California, Oregon and Washington marine and estuarine fishes // NOAA Technical Report NMFS SSRF. 1983. № 777. P. 1-577.
16. Malmberg G. The excretory systems and the marginal hooks as a basis for the systematics of Gyrodactylus // Ark. zool. Ser. 2. 1970. Bd 23. P. 1-235.
17. Margolis L., Arthur J. Synopsis of the Parasites of Fishes of Canada // Bull. Fish. Res. Board Can. 1979. № 199. P. 1-269.
18. Margolis L., Moravec F. Ramellogammarus vancouverensis Bousfield (Amphipoda) as an intermediate host for salmonid parasites in British Columbia // Can. J. Zool. 1982. V. 60. P. 1100-1104.
19. McDonald T., Margolis L. Synopsis of the parasites of fishes of Canada: Supplement (1978-1993) // Can. Spec. Publ. Fish. Aquat. Sci. 1995. № 122. P. 1-265.
20. Moravec F., Nagasawa K. New records of amphipods as intermediate hosts for salmonid nematode parasites in Japan // Folia Parasitol. 1986. V. 33. P. 45-49.
21. Moravec F., Nagasawa K., Urawa S. Some fish nematodes from fresh waters in Hokkaido, Japan // Folia Parasitol. 1985. V. 32. P. 305-316.
22. Orcutt H. To life history of the starry flounder Platichthys stellatus // Fish Bull. 1950. № 78. P. 1-68.
23. Wong P., Anderson R. The transmission and development of Cosmocephalus obvelatus (Nematoda: Acuarioidea) of gulls (Laridae) // Can. J. Zool. 1982. V. 60. P. 1426-1440.

S.G. Sokolov

New Data on Helminths of Juvenile Starry Flounder Platichthys stellatus (Pallas, 1787) (Osteichthyes, Pleuronectidae), from Western Kamchatka Rivers.

Center of Parasitology of A.N. Severtzov Institute of Ecology & Evolution, 119071 Moscow, Pr. Lenina, 33, Russia

More than 20 species of helminths were found in the juvenile starry flounder from the Utholok River (Western Kamchatka). Most of them were found for the first time. Figures and the morphological description of monogeneans of the genus Gyrodactylus (G. flesi, G. cf. robustus и Gyrodactylus sp.) and nematode larva Acuariidae gen. sp. are presented. A brief ecological analysis of parasitic invasions of the juvenile starry flounder is presented.

Keywords: Platichthys stellatus, Kamchatka, helminthes, Gyrodactylus, Acuariidae.

В.В. Кузьмина

Динамика активности протеиназ химуса и слизистой оболочки кишечника рыб при их экспозиции in vitro в пресной и солоноватой воде.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: vkuzmina@ibiw.yaroslavl.ru

Изучена динамика активности протеиназ химуса плотвы и окуня и слизистой оболочки кишечника леща при их экспозиции в течение 96-216 ч в воде с различной соленостью. Независимо от солености воды и источника ферментов протеолитическая активность химуса и слизистой оболочки кишечника может значительно увеличиваться в процессе экспозиции предположительно за счет кишечной микрофлоры. Отмеченный феномен в меньшей степени характерен для ихтиофага – факультативного бентофага окуня, чем для бентофагов, что, по-видимому, обусловлено меньшим видовым разнообразием энтеральной микробиоты у рыб этого вида.

Ключевые слова: протеиназы, кишечник, химус, слизистая оболочка, рыбы, вода.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Агатова А.Н., Лапина Н.М. Ферментативные процессы трансформации органического вещества и регенерации биогенных элементов в экосистеме Белого моря // Океанология. 2004. Т. 44. № 5. С. 697-708.
2. Извекова Г.И., Извеков Е.И., Плотников А.О. Симбионтная микрофлора рыб различных экологических групп // Изв. РАН. Сер. биол. 2007. № 6. С. 728-737.
3. Извекова Г.И., Корнева Ж.В. Локализация процессов симбионтного пищеварения на пищеварительно-транспортных структурах рыб и цестод // Успехи соврем. биологии. 2007. Т. 127. № 5. С. 502-513.
4. Кузьмина В.В. Сезонная и возрастная изменчивость активности α-амилазы у леща // Вопр. ихтиологии. 1980. Т. 20. С. 128-133.
5. Кузьмина В.В. Физиолого-биохимические основы экзотрофии рыб. М.: Наука, 2005. 300 с.
6. Кузьмина В.В., Скворцова Е.Г. Микробиота желудочно-кишечного тракта и ее роль в процессах пищеварения у рыб // Успехи соврем. биологии. 2002. Т. 122. № 6. С. 569.
7. Лубянскене В., Вирбицкас Ю., Янкявичус К. и др. Облигатный симбиоз микрофлоры пищеварительного тракта и организма. Вильнюс: Мокслас, 1989. 192 с.
8. Лубянскене В., Ястюгинене Р. Микроорганизмы пищеварительного тракта плотвы озера Друкшяй и их активность // Экология. 1995. № 3. С. 17.
9. Уголев А.М., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. Спб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
10. Шивокене Я. Симбионтное пищеварение у гидробионтов и насекомых. Вильнюс: Москлас, 1989. 276 с.
11. Anson M. The estimation of pepsin, trypsin, papain and cathepsin with haemoglobin // J. Gen. Phys. 1938. V. 22. P. 79-83.
12. Barrington E.J.W. The alimentary canal and digestion // Physiology of fishes. N.Y.: Acad. Press, 1957. V. 1. P. 109-161.
13. Cahill M. Bacterial flora of fishes: a review // Microbial Ecol. 1990. V. 19. P. 21-41.
14. Clements K.D. Fermentation and gastrointestinal microorganisms in fishes // Gastrointestinal microbiology. N.Y.: Аcad. Press, 1997. V. 1. P. 156-198.
15. Fange R., Grove D. The Digestion // Fish Phisiology. N.Y.; San Francisco; L.: Acad. Press., 1979. V. 8. P. 162-250.
16. Jankauskiene R., Lesauskiene L. Amylolytic and proteolitical activity of intestinal bacteria of the genus Lactobacillus in cаrps // Biologija. 1995. № 1-2. P. 161-164.
17. Kuz’mina V.V., Golovanova I. L. Contribution of prey proteinases and carbohydrases in fish digestion // Aquaculture. 2004. V. 234. P. 347-360.

V.V. Kuz’mina

Dynamics of Proteolytic Activity of Chime and Intestinal Mucosa of Fish under Their Exposition in Fresh and Brackish Water in vitro.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The dynamics of chyme proteinase activity (roach, perch) as intestinal mucosa (bream) under their exposition in vitro during 96-216 hours in water with different salinity is studied. It is shown that during exposition of these preparations irrespective of water salinity and a source of enzymes the level of proteolytic activity can significantly increase, presumably due to intestinal microflora. This phenomenon to a lesser degree is characteristic for ichtyophage – facultative bentophage perch, than for benthophages. It is, probably, caused by less specific diversity of intestinal microflora in fishes of this species.

Keywords: proteinase, intestine, chyme, mucosa, fish, water.

И.Л. Голованова

Влияние биогенных металлов (Cu, Zn) на активность карбогидраз молоди рыб in vitro.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
е-mail: golovan@ibiw.yaroslavl.ru

Установлено достоверное снижение амилолитической активности (АА) в кишечнике и целом организме молоди рыб – потенциальных объектов питания ихтиофагов в присутствии ионов Cu и Zn in vitro в широком диапазоне концентраций (0.1-25 мг/л). У большинства исследованных видов рыб Cu и Zn в большей степени снижают активность карбогидраз, функционирующих в слизистой оболочке кишечника, по сравнению с тканевыми карбогидразами всего организма. У ихтиофага – факультативного бентофага окуня, обладающего наименьшей АА, наоборот, тормозящий эффект ионов Cu и Zn в целом организме в 1.5-2 раза больше, чем в кишечнике. Полученные данные позволяют предположить, что ионы Cu и Zn в концентрациях, встречающихся в кормовых объектах рыб, могут нe только снижать скорость начальных этапов гидролиза углеводов в кишечнике молоди рыб, но и значительно уменьшать потенциальный вклад объектов питания в процессы пищеварения типичных и факультативных ихтиофагов.

Ключевые слова: рыбы, пищеварение, карбогидразы, тяжелые металлы, медь, цинк.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алабастер Д., Ллойд Р. Критерии качества воды для пресноводных рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1984. 344 с. (Alabaster J.S., Lloyd R. Water Quality Criteria for Freshwater Fish. FAO and Butterworths. London, 1980).
2. Волкова И.В. Активность пищеварительных ферментов растительноядных рыб на разных этапах онтогенеза: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Астрахань, 1999. 24 с.
3. Голованова И.Л. Влияние природных и антропогенных факторов на активность карбогидраз молоди рыб // Биология внутр. вод. 2000. № 1. С. 143-148.
4. Голованова И.Л. Влияние природных и антропогенных факторов на гидролиз углеводов у пресноводных костистых рыб и объектов их питания: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Спб., 2006. 46 с.
5. Кузьмина В.В. Вклад индуцированного аутолиза в процессы пищеварения вторичных консументов на примере гидробионтов // Докл. РАН. 2000. Т. 339. № 1. С.172-174.
6. Кузьмина В.В., Ушакова Н.В. Влияние температуры, рН и тяжелых металлов (медь, цинк) на активность протеиназ потенциальных объектов питания типичных и факультативных ихтиофагов // Вопр. ихтиологии. 2007. Т. 47. № 6. С. 837-846.
7. Кузьмина В.В., Шишин М.М., Корюкаева Н.В. и др. Влияние меди и цинка на эффективность гидролиза белковых компонентов пищи у ряда видов пресноводных костистых рыб в условиях in vitro // Биология внутр. вод. 2005. № 4. С. 84-92.
8. Малышева Т.Д., Василевский В.С. Влияние избытка кишечного цинка на активность пищеварительных ферментов карпа // Гидробиол. журн. 1992. Т. 28. № 4. С. 45-52.
9. Неваленный А.Н., Туктаров А.В., Бедняков Д.А. Функциональная организация и адаптивная регуляция процессов пищеварения у рыб. Астрахань: Астрахан. гос. техн. ун-т, 2003. 152 с.
10. Остроумова И.Н. Биологические основы кормления рыб. Спб.: Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 2001. 372 с.
11. Перевозников М.А., Богданова Е.А. Тяжелые металлы в пресноводных экосистемах. Спб.: Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1999. 228 с.
12. Соболев К.Д. Загрязнение тяжелыми металлами естественных и искусственных кормов и его влияние на рыб в условиях сбросных теплых вод: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Спб., 2006. 24 с.
13. Столяр О.Б., Курант В.З., Хоменчук В.А., Грубинко В.В. Характеристка низкомолекулярных серосодержащих соединений гепатопанкреаса карпа при интоксикации медью и цинком // Гидробиол. журн. 2003. Т. 39. № 4. С. 91-98.
14. Туктаров А.В. Влияние тяжелых металлов на пищеварительно-транспортную функцию кишечника осетровых рыб: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Астрахань, 2002. 21 с.
15. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н. Определение активности инвертазы и других дисахаридаз // Исследование пищеварительного аппарата у человека. Л.: Наука, 1969. С. 192-196.
16. Уголев A.M., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. Спб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
17. Уголев А.М., Цветкова В.А. Индуцированный аутолиз как важный механизм начальных стадий пищеварения в естественных условиях // Физиол. журн. 1984. Т. 70. № 11. С. 1542-1550.
18. Bury N.R., Walker P.A., Glover C.N. Nutritive metal uptake in teleost fish // J. Exp. Biol. 2003. V. 206. № 1. P. 11-23.
19. De Boeck G., Ngo T.T.H., Van Campenhout K., Blust R. Differential metallothionein inductions pattens in three freshwater fish during sublethal copper exposure // Aquat. Toxicol. 2003. V. 65. № 4. P. 413-424.
20. Sokal R.R., Rohlf F.J. Biometry. N.Y.: Freeman and Co, 1995. 887 p.
21. Sun L.-T., Jeng S.-S. Accumulation of zinc from diet and its release in common carp // Fish Physiol. Biochem. 1999. V. 20. № 4. P. 313-324.
22. Watanabe T., Kiron V., Satoh S. Trace minerals in fish nutrition // Aquaculture. 1997. V. 151. № 1-4. P. 185-207.

I.L. Golovanova

Effect of Biogenic Metals (Cu, Zn) on Carbohydrase Activity in Juvenile Fish in Vitro.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The significant decrease of the total amylolytic activity in the intestine and the whole body of juvenile fishes – the potential food objects of ichthyophagous fish in the presence of copper (Cu) and zinc (Zn) ions in vitro in a wide range of concentrations (0.1-25 mg/l) is determined. In most fish species a degree of Cu and Zn influence on the intestinal mucosa carbohydrase activity is significantly more than in the whole organism. The toxic effects of Cu and Zn ions on the carbohydrase activity in the whole organism of ichthyophagous – facultative benthophagous perch are 1.5-2 times higher, than in intestines. The obtained data allow us to assume, that Cu and Zn ions in the concentrations found in food objects of fish, can reduce not only the rate of the initial stages of carbohydrates hydrolysis in the juvenile fish intestine, but also considerably reduce the potential contribution of food objects to the digestion of typical and facultative ichthyophagous fishes.

Keywords: fish, digestion, carbohydrases, heavy metals, copper, zinc.

А.А. Филиппов, И.Л. Голованова

Раздельное и совместное влияние меди и цинка in vitro на активность карбогидраз кишечника пресноводных костистых рыб.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
е-mail: golovan@ibiw.yaroslavl.ru

Исследовано in vitro раздельное и совместное действие ионов Cu2+ и Zn2+ в концентрации 0.1-25 мг/л на активность карбогидраз слизистой оболочки кишечника у 11 видов пресноводных рыб, различающихся по типу питания. Амилолитическая активность снижается по мере увеличения концентрации Cu и Zn, величина максимального торможения варьирует от 15 до 46% контроля в зависимости от вида рыб. Для ферментов планкто- и бентофагов Cu токсичнее Zn, для типичных и факультативных ихтиофагов Zn токсичнее Cu. Активность сахаразы в присутствии ионов Cu2+ и Zn2+ у большинства исследованных видов рыб снижается, в то время как у леща, язя и налима в присутствии Zn она повышается на 18-50% контроля. Совместное действие ионов Cu2+ и Zn2+ (1:1) в большинстве случаев ослабляет эффекты раздельного влияния этих металлов.

Ключевые слова: рыбы, пищеварение, карбогидразы, медь, цинк.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алабастер Д., Ллойд Р. Критерии качества воды для пресноводных рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1984. 344 с. (Alabaster J.S., Lloyd R. Water Quality Criteria for Freshwater Fish. FAO and Butterworths. L., 1980).
2. Голованова И.Л. Влияние природных и антропогенных факторов на гидролиз углеводов у пресноводных костистых рыб и объектов их питания: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Спб., 2006. 46 с.
3. Дубинина О.А., Рябухина Е.В. Морфо-функциональные изменения эпителиального пласта тонкой кишки рыб при интоксикации солями тяжелых металлов // Биологические исследования в Ярославском гос. ун-те: Тез. конф. Ярославль, 1997. С. 76-78.
4. Касумян А.О., Морси А.М.Х. Влияние тяжелых металлов на пищевую активность и вкусовые поведенческие ответы карпа Cyprinus carpio. 1. Медь, кадмий, цинк и свинец // Вопр. ихтиологии. 1998. Т. 38. № 3. С. 393-409.
5. Кузьмина В.В., Шишин М.М. Влияние цинка и меди на скорость пищевой реакции карпа Cyprinus carpio L. // Биология внутр. вод. 2007. № 2. С. 105-109.
6. Кузьмина В.В., Шишин М.М., Корюкаева Н.В. и др. Влияние меди и цинка на эффективность гидролиза белковых компонентов пищи у ряда видов пресноводных костистых рыб в условиях in vitro // Биология внутр. вод. 2005. № 4. С. 84-92.
7. Линник Л.П., Набиванец Б.И. Формы миграции металлов в пресных поверностных водах. Л.: Гидрометеоиздат, 1986. 270 с.
8. Малышева Т.Д., Василевский В.С. Влияние избытка кишечного цинка на активность пищеварительных ферментов карпа // Гидробиол. журн. 1992. Т. 28. № 4. С. 45-52.
9. Неваленный А.Н., Бедняков Д.А. Воздействие некоторых микроэлементов на уровень активности щелочной фосфатазы и α-амилазы слизистой кишечника тарани // Вопр. рыболовства. 2000. Т. 1. № 2-3. С. 67-68.
10. Неваленный А.Н., Туктаров А.В., Бедняков Д.А. Функциональная организация и адаптивная регуляция процессов пищеварения у рыб. Астрахань: Астрахан. гос. техн. ун-т, 2003. 152 с.
11. Остроумова И.Н. Биологические основы кормления рыб. Спб.: Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 2001. 372 с.
12. Перевозников М.А., Богданова Е.А. Тяжелые металлы в пресноводных экосистемах. Спб.: Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1999. 228 с.
13. Перечень рыбохозяйственных нормативов: предельно допустимых концентраций (ПДК) и ориентировочно безопасных уровней воздействия (ОБУВ) вредных веществ для воды водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение. М.: Всерос. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 1999. 304 с.
14. Соболев К.Д. Загрязнение тяжелыми металлами естественных и искусственных кормов и его влияние на рыб в условиях сбросных теплых вод: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Спб., 2006. 24 с.
15. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н. Определение активности инвертазы и других дисахаридаз // Исследование пищеварительного аппарата у человека. Л.: Наука, 1969. С. 192-196.
16. Уголев A.M., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. Спб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
17. Bury N.R., Walker P.A., Glover C.N. Nutritive metal uptake in teleost fish // J. Exp. Biol. 2003. V. 206. № 1. P. 11-23.
18. Chakabarti P., Ghosh A.R. Studies of dysenzymia in the liver, pancreas, and kidney of cadmium treated fish, Heteropneustes fossilis (Bloch) // Zool. Jahrb. Abt. Anat. and Ontog. Tiere. 1989. Bd 119. Н. 3-4. S. 251-264.
19. Chang R., Shankar J.S. Evaluation and possible mechanism of combined toxicity of heavy metals in a fresh water fish Notopterus notopterus // Himalayan J. Environ. Zool. 1988. V. 2. № 2. P. 74-79.
20. Chowdhury M.J., Baldisserotto B., Wood C.M. Tissue-specific calcium and matallothioninen levels in rainbow trout chronically acclimated to waterborne of dietary cadmium // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2005. V. 48. № 3. P. 381-390.
21. James R., Sampath K., Sivakumar V., Manthiramoorthy S. Individual and combined effects of heavy metals on survival and biochemistry of Oreochromis mossambicus Peters // Indian J. Fish. 1991. V. 38. № 1. P. 49-54.
22. Khangarot B.S., Ray P.K. Studies on the acute toxicity of copper and mercury alone and in combination to the common guppy Poecilia reticulata (Peters) // Arch. Hydrobiol. 1987. Bd 110. Н. 2. S. 303-314.
23. Li J.-S., Li J.-L., Wu T.-T. The effect of copper, iron and zinc on digestive enzyme activity in the hybrid tilapia Oreochromis niloticus (L.) х Oreochromis aureus (Steindachner) // J. Fish Biol. 2007. V. 71. № 6. P. 1788-1798.
24. Roy R., Campbell R.G.C. Survival time modeling of exposure of juvenile Atlantic salmon (Salmo salar) to mixture of aluminium and zinc in soft water at low pH // Aguat. Toxicol. 1995. V. 33. № 2. P. 155-176.
25. Watanabe T., Kiron V., Satoh S. Trace minerals in fish nutrition // Aquaculture. 1997. V. 151. № 1-4. P. 185-207.

A.A. Filippov, I.L. Golovanova

Separate and Joint Effect of Copper and Zinc in vitro on a Velocity of Carbohydrate Hydrolysis in Freshwater Teleosts.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The separate and joint effects of Cu and Zn at concentrations 0.1-25 mg/l on a velocity of carbohydrates hydrolysis have been studies in vitro in 11 freshwater teleosts. The total amylolytic activity of the fish intestinal mucosa significantly decreased with Cu or Zn concentrations. The maximal inhibitory effect varied from 15 to 45% in dependence of fish species. Cu was more toxic than Zn for amylolytic enzymes of planctophages and benthophages, but Zn was more toxic than Cu for typical and facultative ichthyophages. The opposite changes of the sucrase activity under effect of Cu or Zn were demonstrated. In the most cases the enzyme activity significantly decreased, but addition of Zn markedly increased the activity of sucrase (on 18-50% from control) in bream, ide and burbot. The joint effect of Cu and Zn (1:1) on the intestinal carbohydrases activities were less significant than a separate one.

Keywords: fish, digestion, carbohydrases, copper, zinc.

Правила для авторов журнала "Биология внутренних вод".

Instructions for the Authors of the Journal "Inland Water Biology".

© 2008-2017 ИБВВ РАН

Написать вебмастеру

Яндекс цитирования Рейтинг@Mail.ru Яндекс.Метрика