RUS ENG

Журнал "Биология внутренних вод"

№ 1 за 2011 год

Водная флора и фауна

С.И. Генкал*, Т.А. Чекрыжева**

Центрические диатомовые водоросли (Bacillariophyta, Centrophyceae) водоемов Карелии.

*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Институт водных проблем Севера Карельского научного центра РАН, 185003 Петрозаводск, проспект Ал. Невского, 50
e-mail: genkal@ibiw.yaroslavl.ru

С помощью сканирующей электронной микроскопии в составе фитопланктона 11 озер Карелии, относящихся к бассейнам Белого и Балтийского морей, обнаружено 22 представителя диатомовых водорослей из класса Сentrophyceae, в том числе новые для флоры озер (Aulacoseira lacustris, A. perglabra, A. tenella, A. valida, Discostella cf. pseudostelligera и Stephanodiscus invisitatus) и новые для Карелии (Brevisira arentii и Stephanodiscus delicatus). Проведена ревизия видового состава Centrophyceae водоемов Карелии, уточнены диагнозы и систематическое положение ряда видов, разновидностей и форм. Новый список включает 51 таксон из 12 родов: Acanthoceras – 1, Aulacoseira – 23, Brevisira – 1, Сyclostephanos – 1, Сyclotella – 7, Discostella – 2, Ellerbeckia – 2, Melosira – 2, Puncticulata – 1, Rhizosolenia – 3, Stephanodiscus – 7, Thalassiosira – 1.

Ключевые слова: диатомовые водоросли, Сentrophyceae, видовой состав, ревизия, озера Карелии.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Балонов И.М. Подготовка диатомовых и золотистых водорослей к электронной микроскопии // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 87–90.
2. Баранов И.В. Лимнологические типы озер СССР. Л.: Наука, 1962. 226 с.
3. Генкал С.И. О распространении в волжских водохранилищах некоторых представителей диатомовых водорослей рода Aulacosira Thw. // Тез. докл. Четвертой всерос. конф. по водным растениям. Борок, 1995. С. 86–87.
4. Генкал С.И. Aulacosira italica, A. valida, A. subarctica и A. volgensis sp. nov. (Bacillariophyta) в водоемах России // Ботан. журн. 1999. Т. 84. № 5. С. 40–46.
5. Генкал С.И. Новые данные по морфологии, таксономии, экологии и распространению Stephanodiscus agassizensis (Bacillariophyta) // Биология внутр. вод. 2009. № 2. C. 10–23.
6. Генкал С.И., Иешко Т.А. Материалы к флоре Bacillariophyta водоемов Карелии. Кончезеро. I. Centrophyceae // Альгология. 1998. Т. 8. № 1. С. 11–13.
7. Генкал С.И., Иешко Т.А., Чекрыжева Т.А. Материалы к флоре Bacillariophyta водоемов Карелии. Пертозеро. I. Centrophyceae // Альгология. 1997. Т. 7. № 3. С. 297–300.
8. Генкал С.И., Иешко Т.А., Чекрыжева Т.А. Материалы к флоре Bacillariophyta водоемов Карелии. Пертозеро. II. Pennatophyceae // Альгология. 1997. Т. 7. № 4. С. 396–399.
9. Генкал С.И., Комулайнен С.Ф. Материалы к флоре Bacillariophyta водоемов Карелии. Бассейн р. Лижмы (Кедрорека, Тарасмозеро) // Альгология. 2000. Т. 10. № 1. С. 63–65.
10. Генкал С.И., Лупикина Е.Г., Лепская Е.В. Cyclotella tripartita (Bacillariophyta) из озер Камчатки и Забайкалья // Ботан. журн. 2004. Т. 89. № 3. С. 426–435.
11. Генкал С.И., Трифонова И.С. Некоторые новые и редкие виды центрических диатомовых водорослей водоемов Северо-Запада России и Прибалтики // Биология внутр. вод. 2001. № 3. С. 11–19.
12. Генкал С.И., Трифонова И.С. Интересные и новые для России представители рода Aulacosira (Bacillariophyta) // Ботан. журн. 2002. Т. 87. № 6. С. 117–122, 174, 175.
13. Генкал С.И., Трифонова И.С. Новые и интересные находки представителей рода Aulacoseira в реках Северо-Запада России // Новости системат. низш. раст. 2005. Т. 38. С. 32–37.
14. Генкал С.И., Щербак В.И., Майстрова Н.В. Морфологическая изменчивость и таксономия Thalassiosira faurii (Gasse) Hasle (Bacillariophyta) // Новости системат. низш. раст. 2008. Т. 41. C. 26–33.
15. Иванов И.В. Классификация озер мира по величине и по средней глубине // Науч. бюл. ЛГУ. 1948. № 21. 29 с.
16. Каталог озер и рек Карелии. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2001. 290 с.
17. Козыренко Т.Ф., Логинова Л.П., Генкал С.И. и др. Род Cyclotella Kütz. // Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и современные). Спб.: Наука, 1992. Т. 2. Вып. 2. С. 24–47.
18. Козыренко Т.Ф., Хурсевич Г.К., Логинова Л.П. и др. Род Stephanodiscus Ehr. // Диатомовые водоросли СССР (ископаемые и современные). Спб.: Наука, 1992. Т. 2. Вып. 2 С. 7–20.
19. Комулайнен С.Ф., Антипина Г.С., Вислянская И.Г. и др. Библиография работ по водорослям Европейского Севера России (Республика Карелия, Мурманская область). Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2006. 66 с.
20. Комулайнен С.Ф., Чекрыжева Т.А., Вислянская И.Г. Альгофлора озер и рек Карелии. Таксономический состав и экология. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2006. 81 с.
21. Комулайнен С.Ф., Чекрыжева Т.А. История альгологических исследований в Восточной Фенноскандии // Фундаментальные и прикладные проблемы ботаники в начале XXI века: Матер. Всерос. конф. Петрозаводск, 2008. С. 49–52.
22. Лозовик П.А. Гидрогеохимические критерии состояния поверхностных вод гумидной зоны и их устойчивости к антропогенному воздействию: Автореф. дис. … докт. хим. наук. М., 2006. 59 с.
23. Международный кодекс ботанической номенклатуры (Сент-Луисский кодекс), принятый 16 Международным ботаническим конгрессом. Спб.: Изд-во Санкт-Петербургской гос. химико-фармацевтической академии, 2001. 210 с.
24. Поверхностные воды озерно-речной системы Шуи в условиях антропогенного воздействия. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 1991. 212 с.
25. Природа национального парка "Паанаярви". Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2003. 182 с.
26. Скабичевский А.П. Планктонные диатомовые водоросли пресных вод СССР. М.: Изд-во МГУ, 1960. 349 с.
27. Современное состояние водных объектов Pеспублики Карелия. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 1998. 188 с.
28. Crawford R.M., Likhoshway Y.V. The frustule structure of original material of Aulacoseira distans (Ehrenberg) Simonsen // Diatom Res. 1999. V. 14. № 2. P. 239–250.
29. Genkal S.I. Problems in identifying centric diatom for monitoring the water quality of large rivers // Use of algae for monitoring rivers III. Douai: Agence de l'Eau Artois-Picardie, 1999. P. 182–187.
30. Håkansson H. A compilation and evalution of species in the general Stephanodiscus, Cyclostephanos and Cyclotella with a new genus in the family Stephanodiscaceae // Diatom Res. 2002. V. 17. № 1. P. 1–139.
31. Håkansson H., Locker S. Stephanodiscus Ehrenberg, 1846, a revision of the species described by Ehrenberg // Nova Hedwigia. 1981. Bd 35. S. 117–150.
32. Houk V. The morphology and taxonomic relationships of Cyclotella planctonica Brunnthaler (Bacillariophyceae) // Algol. Stud. 1991. V. 61. P. 103–118.
33. Houk V. Atlas of freshwater centric diatoms with brief key and descriptions. Part I: Melosiraceae, Orthoseiraceae, Paraliaceae and Aulacoseiraceae // Czech. Phycol. 2003. Suppl. 1. P. 1–112.
34. Houk V., Klee R. The stelligeroid taxa of the genus Cyclotella (Kützing) Brébisson (Bacillariophyceae) and their transfer into the new genus Discostella gen. nov. // Diatom Res. 2004. V. 19. № 2. P. 203–228.
35. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 3: Centrales, Fragilariaceae. Eunotiaceae // Susswasserflora von Mitteleuropa. Jena: Gustav Fischer Verlag, 1991. S. 1–576.
36. Simonsen R. The Diatom system: ideas on phylogeny // Bacillaria. 1979. V. 2. P. 9–71.

S.I. Genkal*, T.A. Chekryzheva**

Centric Diatoms (Bacillariophyta, Centrophyceae) in Karelian Waterbodies.

*Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia
**Northern Water Problems Institute, Karelian Research Centre of RAS, 185003 Petrozavodsk, Pr. A. Nevskogo, 50, Republic of Karelia, Russia

Materials on phytoplankton from 11 Karelian lakes in the White and Baltic seas basin were studied by means of scanning electron microscopy. 22 representatives of diatom algae of the class Centrophyceae including new for the flora of the studied lakes Aulacoseira lacustris, A. perglabra, A. tenella, A. valida, Discostella cf. pseudostelligera, S. invisitatus, and new for Karelia Brevisira arentii, Stephanodiscus delicatus have been found. Diagnoses, ranges and systematic status of some species, varieties and forms have been determined. A revision of the species composition of Centrophyceae has been made on the basis of literature data and results of the present work. A new list for Karelian waterbodies includes 51 taxa from 12 genera: Acanthoceras – 1, Aulacoseira – 23, Brevisira – 1, Сyclostephanos – 1, Сyclotella – 7, Discostella – 2, Ellerbeckia – 2, Melosira – 2, Puncticulata – 1, Rhizosolenia – 3, Stephanodiscus – 7, Thalassiosira – 1.

Keywords: diatom algae, Centrophyceae, species composition, revision, Karelian lakes.

Е.М. Коргина

Новые и редкие для бассейна реки Волги представители отряда Lecithoepitheliata (Turbellaria).

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: korgina@ibiw.yaroslavl.ru

В бассейне р. Волги найдены новые и редкие для этого региона виды турбеллярий отр. Lecithoepitheliata: Prorhynchus stagnalis (M. Schultze, 1851), Geocentrophora sphyrocephala (de Man, 1880), G. baltica (Kennel, 1883). Последний отмечен в бассейне р. Волги впервые. Приведены иллюстрированные описания и данные по зоогеографии и экологии этих видов.

Ключевые слова: турбеллярии, Lecithoepitheliata, редкие виды, бассейн р. Волги.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Беклемишев В.Н. Материалы по систематике и фаунистике турбеллярий Восточной России // Изв. РАН. 1921. Т. 15. Сер. 6. C. 631–656.
2. Боголюбов Д.С., Тимошкин О.А. Сравнительная характеристика женских гонад Lecithoepitheliata (Plathelminthes) с выводами о таксономии отряда // Зоол. журн. 1993. Т. 72. № 2. С. 17–25.
3. Забусов И.П. Список турбеллярий, собранных летом 1902 г. у г. Саратова и в пределах Саратовской губернии // Ежегодн. Саратов. биол. ст. 1903. Т. 2. Ч. 1. С. 157–158.
4. Коргина Е.М. Фауна турбеллярий Иваньковского водохранилища // Фауна и биология пресноводных организмов. Л.: Наука, 1987. С. 149–155.
5. Коргина Е.М. Турбеллярии озера Плещеево (Ярославская область) с описанием нового вида Castrada mamkaevi (Neorhabdocoela, Typhloplanoida, Typhloplanidae) // Зоол. журн. 2001. Т. 80. № 11. С. 1292–1296.
6. Коргина Е.М. Состояние фауны ресничных червей (Turbellaria) малых рек бассейна Рыбинского водохранилища // Экологическое состояние малых рек Верхнего Поволжья. М.: Наука, 2003. С. 119–126.
7. Коргина Е.М. Фауна и динамика численности турбеллярий (Turbellaria) временного водоема (Ярославская обл.) // Биология внутр. вод. 2004. № 3. С. 110–112.
8. Коргина Е.М. История изучения и современное состояние фауны турбеллярий бассейна Волги // Биологические ресурсы пресных вод: беспозвоночные. Рыбинск: Дом печати, 2005. С.151–164.
9. Коргина Е.М. Фауна турбеллярий // Экосистема малой реки в изменяющихся условиях среды. М.: КМК, 2007. С. 304–314.
10. Кордэ Н.В. Исследования по фауне Иваново-Вознесенской губернии, организованные сельскохозяйственным факультетом Иваново-Вознесенского политехнического института летом 1920 года. 6. Фауна турбеллярий района исследования // Изв. Иваново-Вознесен. политех. ин-та. 1923. Т. 7. Вып. 3. С. 40–49.
11. Кордэ Н.В. Cladocera, Rotatoria и Turbellaria Плещеева (Переславского) озера Владимирской губернии // Тр. Переславль-Залесского историко-худож. и краевед. музея. 1928. Вып. 8. С. 37–58.
12. Насонов Н.В. К фауне Turbellaria Финляндии // Изв. РАН. 1917. T. 1. С. 1095–1112. T. 2. C. 1235–1258.
13. Насонов Н.В. Материалы по фауне Turbellaria России // Изв. РАН. 1919 (1921). T. 1. С. 619–646. T. 2. C. 1039–1046. T. 3. C. 1047–1053. T. 4. C. 1179–1197.
14. Насонов Н.В. К фауне Turbellaria Кольского полуострова в окрестностях Кандалакши // Докл. РАН. 1923. Cер. А. С. 70–71.
15. Насонов Н.В. Фауна Turbellaria тундры Кольского полустрова в окрестностях г. Александровска // Докл. РAН. 1923. Сер. В. 75–77.
16. Насонов Н.В. Фауна Turbellaria Кольского полуострова // Изв. РАН. 1925. Т. 19. Вып. 6. С. 53–74.
17. Плотников В.И. К фауне червей пресных вод окрестностей Бологовской биологической станции // Тр. пресновод. биол. ст. С.-Петербург. о-ва естествоиспыт. 1906. Т. 2. С. 30–42.
18. Скориков А.С. Список организмов ets. // Ежегодник Волж. биол. ст. Саратов. о-ва естествоиспыт. 1903. Т. 2. Ч. I. С. 34.
19. Тимошкин О.А. Ресничные черви озера Байкал: Turbellaria Prorhynchidae. Морфология, систематика и филогения Lecithoepitheliata // Морфология и эволюция беспозвоночных. Новосибирск: Наука, 1991. С. 63–185.
20. Тимошкин О.А., Степанова В.В., Щербаков В.А. Изменчивость стилетов байкальских Geocentrophora (Turbellaria, Lecithoepitheliata) // Морфология и эволюция беспозвоночных. Новосибирск: Наука, 1991. С. 185–199.
21. Braun M. Die rhabdocoeliden Turbellarien Livland // Separatabdruck aus Archiv Naturkunde, Liv. – und Kurland. 1885. Ser. 2. Bd 10. Lief 2. S. 1–256.
22. Luther A. Die Turbellarien Ostfennoskandiens I. Acoela, Catenulida, Macrostomida, Lecithoepitheliata, Prolecithohora und Proseriata // Fauna Fennica. 1960. Bd 7. 155 S.
23. Nasonov N.V. La faune des Turbellaria du gouvernement de Petrograd // C. r. Acad. sci. Rus. 1924. Cер. А. P. 12–15.
24. Nasonov N.V. Les traits generaux de la distribution geograpique des Turbellaria rabdocoelida dans la Russie d ‘Europe // Bul. Acad. sci. Rus. 1924. Cер. 6. T. 18. № 12. P. 327–352.
25. Nasonov (Nassonov) N.V. Die Turbellarienfauna des Lenigrader Gouvernements // Bul. Acad. sci. URSS. 1926. № 2. S. 817–884.
26. Schultze M.S. Beitrage zur Naturgeschichte der Turbellarien. Greifswald: Verl. Koch C.A., 1851. 78 S.
27. Steinbock O. Monographie der Prorhynchidae (Turbellaria) // Z. Morph. und Okol. Tiere. 1927. Bd 8. S. 538–662.
28. Zykow W. Zur Turbellarien – fauna der Umgegend von Moscau // Zool. Anz. 1892. Bd 15. S. 445–448.

Ye.M. Korgina

New and Rare for the Volga Basin Representatives of the Order Lecithoepitheliata (Turbellaria).

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

New and rare for the region spesies of Turbellaria (Lecithoepitheliata) are found in theVolga Basin: Prorhynchus stagnalis (M. Shultze, 1851), Geocentrohora sphyrocephala (de Man, 1880), G. baltica (Kennel, 1883). The latter is recorded in the Volga Basin for the first. Illustrated descriptions, data on zoogeography and ecology of these species are given.

Keywords: turbellaria, Lecithoepitheliata, rare species, Volga basin.

Биология, морфология и систематика гидробионтов

Ж.В. Корнева*, С.А. Корниенко**, В.Д. Гуляев**

Морфология и ультраструктура репродуктивных органов Monocercus arionis (Sibold, 1850) Villot, 1982 (Cestoda: Cyclophyllidea).

*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Институт систематики и экологии животных СО РАН, 630091 Новосибирск, ул. Фрунзе, 11
e-mail: janetta@ibiw.yaroslavl.ru

Изучены морфология половой системы на разных этапах созревания, а также ультраструктурные особенности копулятивного аппарата и матки у Monocercus arionis (Sibold, 1850) Villot, 1982 (Cyclophyllidea). Мускулатура внешней стенки бурсы цирруса имеет более высокий уровень организации, чем типичные гладкомышечные клетки цестод. Циррус вооружен трубчатыми и конусовидными микротрихиями. Маточный эпителий контактирует с тонкой капсулой развивающихся зародышей, расположенных вблизи стенки матки, а зародыши в полости матки – друг с другом, что можно интерпретировать как плацентоподобные отношения. Рассмотрена специфика строения и вооружения копулятивных аппаратов, дан сравнительный анализ ультраструктурных особенностей матки у представителей различных отрядов цестод.

Ключевые слова: Cestoda, половая система, морфология, ультраструктура.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Давыдов В.Г., Корнева Ж.В. Строение копулятивного аппарата Sobolevicanthus gracilis (Cestoda: Cyclophyllidea) // Паразитология. 2002. Т. 36. № 3. С. 224–230.
2. Давыдов В.Г., Поддубная Л.Г., Колесникова Г.А. Ультраструктура протоков половой системы Caryophyllaeus laticeps // Паразитология. 1994. Т. 28. № 6. C. 501–509.
3. Корнева Ж.В. Тонкая структура половой системы Nippotaenia mogurndae (Cestoda: Nippotaeniidea) // Зоол. журн. 2002. Т. 81. № 3. С. 266–275.
4. Корнева Ж.В. Ультраструктурная организация репродуктивной системы Triaenophorus nodulosus (Cestoda) // Зоол. журн. 2002. Т. 81. № 12. С. 1432–1438.
5. Корнева Ж.В. Цитодифференцировка копулятивных аппаратов у низших цестод // Биология внутр. вод. 2003. № 1. С. 9–17.
6. Корнева Ж.В. Взаимоотношения плацентарного типа и эволюционные тенденции развития матки у цестод // Журн. эвол. биохимии и физиологии. 2005. Т. 41. № 5. С. 442–449.
7. Корнева Ж.В. Ультраструктурная организация и морфогенез мужского копулятивного аппарата у Microsomacanthus sp. (Cestoda, Cyclophyllidea) // Зоол. журн. 2005. Т. 84. № 3. С. 291–300.
8. Корнева Ж.В., Гуляев В.Д., Корниенко С.А. Строение и формирование мужского копулятивного аппарата цестоды Lineolepis scutigera (Cyclophyllidea; Pseudhymenolepidinae) // Зоол. журн. 2009. Т. 88. № 1. С. 3–10.
9. Корнева Ж.В., Давыдов В.Г. Ультраструктура мужской половой системы у трех протеоцефалидных цестод // Зоол. журн. 2001. Т. 80. № 8. С. 921–928.
10. Куперман Б.И. Функциональная морфология низших цестод. Л.: Наука, 1988. 167 с.
11. Поддубная Л.Г. Ультраструктурная организация протоков мужской половой системы Diphyllobothrium latum (Cestoda, Pseudophyllidea) // Зоол. журн. 2002. Т. 81. № 4. С. 394–405.
12. Поддубная Л.Г. Ультраструктурная организация репродуктивных органов и протоков прогенетического вида Archigetes sieboldi (Cestoda, Caryophyllidea) // Зоол. журн. 2003. Т. 82. № 9. С. 1038–1050.
13. Поддубная Л.Г. Тонкая морфология сумки цирруса и вагины у прогенетического вида Diplocotyle olrikii (Cestoda: Spathebothriidea) // Паразитология. 2007. Т. 41. № 4. С. 299–308.
14. Свидерский З., Ткач В.В. Сравнительная ультраструктура и дифференциация яйцезащитных образований паренхиматозного происхождения у некоторых циклофиллидных цестод // Проблемы цестодологии. Спб.: Зоол. ин-т РАН, 1998. С. 116–128.
15. Beveridge I., Smith K. An ultrastructural study of the cirrus and vagina of Phyllobothrium vagans // Z. Parasitenkd. 1985. V. 71. № 5. P. 609–616.
16. Conn D.B. Fine structure, development, and senescence of the uterine epithelium of Mesocestoides lineatus // Trans. Amer. Microsc. Soc. 1987. V. 106. № 1. P. 63–73.
17. Conn D.B., Etges F.J. Fine structure and histochemistry of the parenchyma and uterine egg capsules of Oochoristica anolis // Z. Parasitenkd. 1984. V. 70. № 5. P. 769–779.
18. Conn D.B., Etges F.J., Sidner R.A. Fine structure of the gravid paruterine organ and embryonic envelopes of Mesocestoides lineatus (Cestoda) // J. Parasitol. 1984. V. 70. № 1. P. 68–77.
19. Conn D.B., Forman L.A. Morphology and fine structure of the gravid uterus of three hymenolepidid tapeworm species (Platyhelminthes: Cestoda) // Invert. Reprod. and Develop. 1993. V. 23. № 2. 3. P. 95–103.
20. Jones M.K. A taxonomic revisionof the Nematotaeniidae Luhe, 1910 (Cestoda: Cyclophyllidea) // Syst. Parasitol. 1987. V. 10. P. 165–245.
21. Jones M.K. Ultrastructure of the cirrus pouch of Cylindrotaenia hickmani (Cestoda, Nematotaeniidae) // Int. J. Parasitol. 1989. V. 19. № 8. P. 919–930.
22. Lumsden R.D., Hildreth M.B. The fine structure of adult tapewoms // Biology of the Eucestoda. L.: Acad. Press, 1983. V. 1. P. 177–233.
23. Lumsden R.D., Specian R. The morphology, histology and fine structure of the adult stage of the cyclophyllidean tapeworm Hymenolepis diminuta // Biology of the tapeworm Hymenolepis diminuta. L.: Acad. Press, 1980. P. 157–280.
24. Mair G.R., Maule A.G., Shaw C., Halton D.B. Muscling in on parasitic flatworms // Parasitology Today. 1998. V. 14. № 2. P. 73–76.
25. Poddubnaya L.G., Mackiewicz J.S. Ultrastructure of the cirrus sac of echinophallid tapeworms (Cestoda, Bothriocephalidea) and the terminology of cirrus hard structures // Int. J. Parasitol. 2008. V. 39. № 3. P. 381–390.
26. Tkach V.V., Swiderski Z. Late stages of egg maturation in the cestode Pseudhymenolepis redonica Joyeux et Baer, 1935 (Cyclophyllidea, Hymenolepididae), a parasite of shrews // Acta Parasitologica. 1997. V. 42. №. 2. P. 97–108.

J.V. Korneva*, S.A. Kornienko**, V.D. Gulyaev**

Morphology and Ultrastructure of Reproductive Organs of Monocercus arionis (Sibold, 1850) Villot, 1982 (Cestoda: Cyclophyllidea).

*Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia
**Institute of Animal Ecology and Systematic, SB Russian Academy of Science, 630091 Novosibirsk, ul. Phrunze, 11, Russia

The morphology of the reproductive system at in different stages of ontogenesis, ultrastructural features of the copulatory organs and uterine fine structure were investigated in cyclophyllidean cestode Monocercus arionis. The muscle of an outer wall of cirrus bag has a high level of organization in comparison with typical smooth-muscle cells in cestodes. The cirrus is armed with typical filamentous and blade-like microtriches. The uterine epithelium contacts with a delicate capsule of developing embryos located closely to the uterus wall but embryos contact to each other in the uterine cavity. We interpret these modifications of uterine epithelium as interactions of the placental type. The comparison of our results with the literature data on different hard structures and fine structure of the copulatory apparatus in representatives of different groups of cestodes is described. The comparative analysis of ultrastructural features of uteri in cestodes is discussed.

Keywords: Cestoda, reproductive system, morphology, ultrastructure.

В.Г. Гагарин*, Т.В. Наумова**

Два новых вида дорилаймид (Nematoda, Dorylaimida) из озера Байкал.

*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Лимнологический институт СО РАН, 664033 Иркутск, ул. Улан-Баторская, 3
e-mail: gagarin@ibiw.yaroslavl.ru

Даны иллюстрированные описания двух новых для науки видов нематод Arctidorylaimus parvulus и Eudorylaimus sedatus, обнаруженных в прибрежье юго-западной части оз. Байкал. Arctidorylaimus parvulus sp. n. отличается от Arctidorylaimus kurenkovi Gagarin, 2002 более коротким телом, отсутствием продольных ребер на кутикуле, более короткими спикулами, меньшим количеством преклоакальных супплементов и относительно коротким преректумом. Eudorylaimus sedatus sp. n. морфологически близок к E. spongiophilus Batalova, 1983, но меньшего размера, имеет более короткие копье и продолжение копья, более длинные хвост и преректум. Приведен ключ для определения валидных видов рода Arctidorylaimus.

Ключевые слова: озеро Байкал, свободноживущие нематоды, новые виды, Arctidorylaimus parvulus sp. n., Eudorylaimus sedatus sp. n.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Баталова Ф.М. Новые данные о нематодах-комменсалах байкальских губок // Зоол. журн. 1983. Т. 62. Вып. 7. С. 1108–1110.
2. Гагарин В.Г. Обзор фауны свободноживущих нематод древних озер Азии // Биология внутр. вод. 2003. № 2. С. 15–19.
3. Цалолихин С.Я. Свободноживущие нематоды Байкала. Новосибирск: Наука, 1980. 118 с.
4. Шошин А.В., Цалолихин С.Я. Свободноживущие нематоды (Nemathelminthes: Nematoda) // Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2001. Т. I. Кн. 1. С. 305–320.
5. Gagarin V.G. A review of the genus Arctidorylaimus Mulvey et Anderson, 1979 (Nematoda: Dorylaimida) with descriptions of Arctidorylaimus gigas sp.n. and A. kurenkovi sp.n. from Russia // Nematology. 2002. V. 4. № 1. Р. 25–34.

V.G. Gagarin*, T.V. Naumova**

Two New Species of Dorylaimids (Nematoda, Dorylaimida) from Lake Baikal.

*Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia
**Limnological Institute, Siberian Branch Russian Academy of Sciences, 664033 Irkutsk, ul. Ulan-Batorskaya, 3, Russia

Illustrated descriptions of two new for the science species of free-living nematodes Arctidorylaimus parvulus and Eudorylaimus sedatus, found in littoral zone of Lake Baikal are given. A. parvulus sp. n. differs from A. kurenkovi Gagarin, 2002 and is characterized by a shorter body, absence of longitudinal cuticular ridges, shorter spicules, a smaller number of precloacal supplements and a relatively shorter prerectum. E. sedatus sp. n. is morphologically similar to E. spongiophilus Batalova, 1983, but is smaller, has shorter odontostyle and odontophore, longer tail and prerectum. A key is given to determine valid species of the genus Arctidorylaimus.

Keywords: Lake Baikal, free-living nematodes, new species, Arctidorylaimus parvulus sp. n., Eudorylaimus sedatus sp. n.

Высшая водная растительность

М.И. Джалалова*, А.И. Кузьмичев**

Структура гидрофильной растительности литорали Среднего Каспия.

*Прикаспийский институт биологических ресурсов Дагестанского научного центра РАН, 367025 Махачкала, ул. Гаджиева, 45
**Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: d.marina.66@mail.ru

Проанализирована структура гидрофильной растительности литорали Кизлярского залива. Выделены типологические комплексы: галогидрофитон, галогигрофитон, галопалюдофитон, псаммогалогигрофитон. Дана характеристика формаций галогидрофитона и галогигрофитона.

Ключевые слова: литораль, структура, гидрофильная растительность, типологические комплексы, формация, фитоценоз.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алиев Н.К., Абдурахманов Г.М., Мунгиев А.А., Гаджиев А.А. Экологические проблемы бассейна Каспия. Махачкала: Дагпресс, 1997. 160 c.
2. Белавская А.П. Водные растения России и сопредельных государств. Спб.: Наука, 1994. 63 с.
3. Голуб В.Б., Лактионов А.П., Барминг А.Н., Пилипенко В.Н. Конспект флоры сосудистых растений долины Нижней Волги. Тольятти: Ин-т экологии волж. Бассейна РАН; Астрахан. гос. пед. ин-т, 2002. 50 с.
4. Залибеков З.Г. Затопление береговой полосы Каспийского моря и формирование морской "пустыни" // Процессы опустынивания и их влияние на почвенный покров. М.: ДНЦ РАН, 2000. С. 66–89.
5. Ершов И.Ю. Фитоценосистемы озер Валдайской возвышенности. Рыбинск: Дом печати, 2002. 135 с.
6. Клоков В.М., Краснова А.Н. Заметка об украинских рогозах // Укр. ботан. журн. 1972. Т. 29. № 6. С. 687–695.
7. Краснова А.Н. Структура гидрофильной флоры техногенно-трансформированных водоемов Северо-Двинской водной системы. Рыбинск: Дом печати, 1999. 200 с.
8. Краснова А.Н., Кузьмичев А.И. Структура гидрофильной флоры озер Северо-Двинской водной системы // Биология внутр. вод. 2005. № 4. С. 9–12.
9. Кузьмичев А.И. Гигрофильная флора юго-запада Русской равнины и ее генезис. Спб.: Гидрометеоиздат, 1992. 215 с.
10. Кулешова Л.В. Очаговые изменения растительности на побережье Каспийского моря как индикатор трансформации среды // Микроочаговые процессы-индикаторы дестабилизированной среды. М.: Рос. акад. с.-х. наук, 2000. С. 138–149.
11. Михайлов В.Н. Загадки Каспийского моря // Соросовский образовательный журнал. 2000. № 4. С. 63–70.
12. Михайлов В.Н., Повалишникова Е.С. Еще раз о причинах изменений уровня Каспийского моря в XX веке // Вестн. МГУ. Сер. 5. География. 1998. № 3. С. 35–38.
13. Никитин С.А., Деулина М.К. Формирование растительного покрова на литоралях Каспийского моря // Бюл. Москов. о-ва испыт. природы. Отд. биол. 1977. Т. 82 (1). С. 125–131.
14. Победимова Е.Г. О новых видах рогоза Typha // Ботан. матер. герб. БИНa АН СССР. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1949. Т. 11. С. 3–17.
15. Победимова Е.Г. Новые виды кавказской флоры // Ботан. матер. герб. БИНa АН СССР. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1950. Т. 12. С. 21.
16. Рычагов Г.И. Плейстоценовая история Каспийского моря. М.: Изд-во МГУ, 1997. 267 с.
17. Свиточ А.А., Кулешова Л.В. Геоэкологическая зональность на участках затопления российского побережья Каспийского моря // Докл. РАН. 1994. Т. 339. № 1. С. 77–79.
18. Сулейманова М.И. Структура и динамика растительного покрова прибрежных ландшафтов Терско-Кумской низменнoсти в условиях нестабильного уровня Каспийского моря: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 2001. 25 с.
19. Сулейманова М.И. Динамика растительности приморской полосы Терско-Кумской низменности при различных циклах затопления // Аридные экосистемы. 2002. Т. 8. № 17. С. 25–30.
20. Черепанов С.К. Сосудистые растения России и сопредельных государств (в пределах бывшего СССР). Спб.: Мир и Cемья, 1995. 992 с.

M.I. Dzhalalova*, A.I. Kuz'michev**

The Structure of Hydrophilic Vegetation in the Littoral of the Middle Caspian Sea.

*Caspian Institute of Biological Resource DSC of the RAS, 367025 Mahachkala, ul. Gadzhieva, 45
**Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The structure of hydrophilic vegetation in the littoral of the Kizlyar Bay has been analyzed.
The typological complexes galohydrophiton, galohygrophiton, galopaludophiton, psammohigrophiton are determined.
The characteristic is given of galohudrophyton and galohygrophyton is presented.

Keywords: littoral, structure, hydrophilic vegetation, typological complexes, formation, phytocenosis.

Зоопланктон, зообентос, зооперифитон

С.М. Жданова, А.Э. Добрынин

Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908) (Rotifera: Brachionidae) в водоемах Европейской России.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: smirn_sv@ibiw.yaroslavl.ru

В 13 разнотипных озерах Европейской России обнаружена коловратка Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908), типичная для водоемов Северной Америки. Проведен морфометрический анализ популяций из семи озер. Сделано предположение, что в мелких водоёмах размер шипов K. bostoniensis в основном связан с присутствием потребляющих ее хищников. В глубоководных озeрах, для которых характерна температурная стратификация, на этот признак может также влиять изменение плотности и вязкости воды с глубиной.

Ключевые слова: Kellicottia bostoniensis, новые местонахождения, морфологическая изменчивость, пространственное распределение, водоемы Европейской России.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Добрынина Т.И. Возрастные изменения питания Cyclops vicinus Uljan. и Eucyclops serrulatus Fisch. (Copepoda, Cyclopoida) // Трофические связи пресноводных беспозвоночных. Л.: Зоол. ин-т АН СССР, 1980. С. 59–62.
2. Иванова М.Б., Телеш И.В. Сезонная и межгодовая динамика планктонных коловраток и ракообразных // Закономерности гидробиологического режима водоёмов разного типа. М.: Науч. мир, 2004. С. 71–83.
3. Корнева Л.Г., Гусаков В.А., Гусев Е.С. и др. К вопросу об экологической характеристике слабоминерализованных карстовых озёр Центральной России (Владимирская область) // Природное наследие России: изучение, мониторинг, охрана: Матер. Международ. конф. Тольятти, 2004. С. 138–139.
4. Крылов П.И. Питание пресноводного хищного планктона // Итоги науки и техники. Сер. Общ. экология. Биоценология. Гидробиология. М.: Изд-во ВИНИТИ, 1989. Т. 7. 145 c.
5. Кутикова Л.А. Коловратки фауны СССР (Rotatoria). Л.: Наука, 1970. 744 с.
6. Монаков А.В. Питание и пищевые взаимоотношения пресноводных копепод. Л.: Наука, 1976. 170 с.
7. Монаков А.В. Питание пресноводных беспозвоночных. М.: Ин-т проблем экологии и эволюции РАН, 1998. 319 с.
8. Перова С.Н. Таксономический состав макрозообентоса малых карстовых озёр Центральной России // Биология внутр. вод. 2008. № 4. С. 63−71.
9. Пржиборо А.А., Умнова Л.П. Общая характеристика исследованных озёр // Закономерности гидробиологического режима водоёмов разного типа. М.: Науч. мир, 2004. С. 11−15.
10. Эрман Л.А. Цикломорфоз и питание планктонных коловраток // Зоол. журн. 1962. Т. 41. Вып. 7. С. 998−1003.
11. Arnemo R., Berzins B., Gronberg B., Mellgren I. The Dispersal in Swedish Waters of Kellicottia bostoniensis (Rousselet) (Rotatoria) // Oikos. 1968. V. 19. № 2. P. 351–358.
12. Balvay G. First record of the rotifer Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908) in France // J. Plankton Res. 1994. V. 16. № 8. P. 1071–1074.
13. Beauchamp P. Classe des Rotifers // Traite de Zoologie, Anatomie, Systematique, Biologie. 1965. V. 4. № 3. P. 1225–1379.
14. Bezerra-Neto J.F., Aguila L.R., Landa G.G., Pinto-Coelho R.M. The exotic rotifer Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908) (Rotifera: Brachionidae) in the zooplankton community in a tropical reservoir // Lundiana. 2004. V. 5. № 2. P. 151–153.
15. Błędzki L.A., Ellison A.M. Diversity of rotifers from northeastern U.S.A. bogs with new species records for North America and New England // Hydrobiologia. 2003. V. 497. P. 53–62.
16. Blouin A.C., Lane P.A., Collins T.M., Kerekes J. Comparison of plankton-water chemistry relationships in three acid stressed lakes // Int. Rev. gesamt. Hydrobiol. 1984. Bd 69. S. 819–841.
17. De Paggi J. New Data on the Distribution of Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908) (Rotifera: Monogononta: Brachionidae): Its Presence in Argentina // Zool. Anz. 2002. Bd 241. Н. 4. S. 363–368.
18. Dumont H.J. Biogeography of rotifers // Hydrobiologia. 1983. V. 104. P. 19–30.
19. Eloranta P. Kellicottia bostoniensis (Rousselet), a plankton rotifer species new to Finland // Ann. Zool. Fennici. 1988. V. 25. P. 249–252.
20. Gilbert J.J. Asplanchna and postero-lateralspine production in Brachionus calyciflorus // Arch. Hydrobiol. 1967. Bd 64. Н. 1. S. 1–62.
21. Gilbert J.J. Control of sexuality in the rotifer Asplanchna brightwelli by dietary lipids of plant origin // Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 1967. V. 57. № 5. P. 1218–1225.
22. Gilbert J.J. The effect of Daphnia interference on a natural rotifer and ciliate community: Short-term bottle experiments // Limnol., Oceanogr. 1989. V. 34. № 3. P. 606–617.
23. Great Lakes Water Life Photo Gallery: http:// www.glerl.noaa.gov/seagrant/GLWL/Zooplankton/Rotifers/Pages/Brachionidae.html.
24. Järvinen M. Control of plankton and nutrient limitation in small boreal brown-water lakes: evidence from small- and large-scale manipulation experiments. Helsinki: Yliopistopaino, 2002. 41 p.
25. Jenkins D.G., Buikema A.L. Response of a winter plankton food web to simazine // Environ. Toxicol. and Chem. 1990. V. 9. № 6. P. 693–705.
26. Josefsson M., Andersson B. The Environmental Consequences of Alien Species in the Swedish Lakes Mälaren, Hjälmaren, Vänern and Vättern // Ambio. 2001. V. 30. № 8. P. 514–521.
27. Keskitalo J., Salonen K., Holopainen A.L. Long-term fluctuations in environmental conditions, plankton and macrophytes in a humic lake, Valkea-Kotinen // Boreal Environ. Res. 1998. V. 3. № 3. P. 251–262.
28. Koste W. Rotatoria. Die Rodertiere Mitteleuropas. B.; Stuttgart: Gebrüder Borntraeger, 1978. 673 S.
29. Landa G.G., Del Aguila L.R., Pinto-Coelho R.M. Distribuição espacial e temporal de Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908) (Rotifera) em um grande reservatório tropical (reservatório de Furnas), Estado de Minas Gerais, Brasil // Acta Scientiarum. 2002. V. 24. P. 313–319.
30. Leentvaar P. Quelques rotateurs rares observés em Hollande // Hydrobiologia. 1961. V. 18. P. 245–251.
31. Lopes R.M., Lansac-Tôha F.A. Comunidade zooplanctônica do reservatório de Segredo // Bases Ecológicas para o Manejo. Maringá: Universidade Estadual do Maringá, 1997. P. 39–60.
32. Lucinda I., Moreno I.H., Melão M.G.G., Matsumura-Tundisi T. Rotifers in freshwater habitats in the Upper Tietê River Basin, São Paulo State, Brazil // Acta Limnol. Bras. 2004. V. 16. №3. P. 203–224.
33. Nandini S., Merino M., Sarma S.S.S. Seasonal and depth-related zooplankton distribution in the reservoir Valle de Bravo (State of Mexico, Mexico) with emphasis on rotifers // Rotifera. Abstracts XI International Symposium on Rotifers Mexico City. Mexico: National Autonomous Univ. Mexico, 2006. P. 61.
34. Pejler B. History of rotifer research in northern Europe // Hydrobiologia. 1998. V. 387/388. P. 1–8.
35. Rousselet C.F. Note on the rotatorian fauna of Boston, with description of Notholca bostoniensis // J. Quekett Microscope. 1908. V. 10. P. 335–340.
36. Rühymann D. Die Rädertiere im Plankton des Hamburger Hafens // Mikrokosmos. 1962. V. 51. S. 294–297.
37. Schulz H. Biometrische Messungen an Kellicottia bostoniensis (Rousselet) // Mitt. Hamburg. zool. Mus. und Inst. 1964. Bd 61. S. 117–121.
38. Segers H. Annotated checklist of the rotifers (Phylum Rotifera), with notes on nomenclature, taxonomy and distribution. Auckland: Magnolia Press, 2007. 104 p.
39. Stemberger R.S., Gilbert J.J. Defenses of planktonic rotifers against predators // Predation: Direct and Indirect Impacts on Aquatic Communities. Hannover: Univ. Press of New England, 1987. P. 227–239.
40. Sudzuki M., Kawakita M.A. Rare rotifer, Kellicottia bostoniensis from Japan // Zool. Sci. 1999. V. 19. Suppl. P. 39.
41. Udo H. Die Ursachen der Temporal variation von Brachionus calyciflorus Pallas (Rotatoria) // Oecologia. 1970. V. 4. P. 262–318.

S.M. Zhdanova, A.E. Dobrynin

Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908) (Rotifera: Brachionidae) in Water Bodies of European Part of Russia.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The rotifer Kellicottia bostoniensis (Rousselet, 1908) that is typical for North American water bodies was found in 13 lakes of different types of European part of Russia. Morphometric analysis was carried out for populations from 7 lakes. The assumption is made that the size of spines of K. bostoniensis in shallow water bodies is mainly related with the presence of predators feeding on the rotifer. Additionally, the depth-depended change of density and viscosity in deep lakes can also have an influence on this characteristic.

Keywords: Kellicottia bostoniensis, new whereabouts, morphological changeability, spatial distribution, water bodies of European part of Russia.

В.Б. Вербицкий, Т.И. Вербицкая

Динамика численности Simocephalus vetulus (O.F. Müller, 1776) (Crustacea, Cladocera) при непериодических ступенчатых изменениях температуры.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
е-mail: verb@ibiw.yaroslavl.ru

Экспериментально исследовано действие непериодических ступенчатых температурных режимов с шагом 4.4 и 8.8°С в диапазоне 14.8–25.5°С на динамику численности Simocephalus vetulus (O.F. Müller). Показано, что рост численности может стимулироваться разнонаправленными изменениями температуры, но максимальное развитие популяции получают после снижения температуры воды с 24.3 ±0.7 до 20.4 ±0.5°С и с 19.9 ±0.8 до 15.5 ±0.4°С. При этих же режимах наблюдается эффект пролонгированного стимулирующего воздействия. Полученные результаты подтверждают выдвинутое ранее предположение, что при определении экологического оптимума вида по конкретному фактору среды необходимо учитывать не только пределы оптимальных значений фактора, но также динамику их изменений и возможность проявления эффектов последействия фактора (пролонгированного и отсроченного).

Ключевые слова: Cladocera, Simocephalus vetulus, динамика численности, пролонгированный стимулирующий эффект, отсроченный эффект, ступенчатые воздействия, температура.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Вербицкий В.Б. Понятие экологического оптимума и его определение у пресноводных пойкилотермных животных // Журн. общ. биологии. 2008. Т. 69. № 1. С. 44–56.
2. Вербицкий В.Б., Вербицкая Т.И. Экологический оптимум и эффект отсроченного действия факторов // ДАН. Сер. биол. 2007. Т. 416. № 6. С. 830–832.
3. Вербицкий В.Б., Вербицкая Т.И., Малышева О.А. Влияние различных температурных режимов на динамику численности и теплоустойчивость ветвистоусых ракообразных Ceriodaphnia quadrangula (O.F. Müller, 1785) // Биология внутр. вод. 2008. № 4. С. 98–103.
4. Вербицкий В.Б., Вербицкая Т.И., Малышева О.А. Динамика численности популяций Daphnia longispina (O.F. Müller, 1785) и Diaphanosoma brachyurum (Lievin, 1848) (Crustacea, Cladocera) при стабильных и аритмических ступенчатых температурных режимах // Изв. РАН. Сер. биол. 2009. № 1. С. 79–87.
5. Гиляров А.М. Популяционная экология. М.: Изд-во МГУ, 1990. 191 с.
6. Дажо Р. Основы экологии. М.: Прогресс, 1975. 415 с. (Dajoz R. Précis D’Écologie. Paris: Deuxième édition, 1972).
7. Киселев И.А. Планктон морей и континентальных водоемов. Л.: Наука, 1969. Т. 1. 658 с.
8. Константинов А.С. Влияние колебаний температуры на рост, энергетику и физиологическое состояние молоди рыб // Изв. РАН. Сер. биол. 1993. № 1. С. 55–63.
9. Константинов А.С., Вечканов В.С., Кузнецов В.А., Ручин А.Б. Астатичность абиотической среды как условие оптимизации роста и развития личинок травяной лягушки Rana temporaria L. // ДАН. 2000. Т. 371. № 4. С. 559–562.
10. Константинов А.С., Пушкарь В.Я., Аверьянова О.В. Влияние колебаний абиотических факторов на метаболизм некоторых гидробионтов // Изв. РАН. Сер. биол. 2003. № 6. С. 728–734.
11. Колосова Е.Г. Температурный фактор и распределение массовых видов Беломорского зоопланктона // Океанология. 1975. Т. 15. Вып. 1. С. 129–133.
12. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
13. Сарвиро В.С. Об определении температурного оптимума пойкилотермных животных // Экология. 1977. Т. 18. № 1. С. 14–18.
14. Сарвиро В.С. Экологическая оценка влияния термических колебаний на параметры роста бокоплава Gammarus lacustris Sars // Гидробиол. журн. 1983. Т. 19. Вып. 4. С. 71–73.
15. Семенченко В.П., Разлуцкий В.И., Фенева И.Ю. Биотические взаимодействия как фактор, влияющий на успех вселения ветвистоусых ракообразных в водные сообщества // Чужеродные виды в Голарктике (Борок – 2): Тез. докл. Второго междунар. симп. по изучению инвазийных видов. Рыбинск, 2005. С. 116–117.
16. Allan J.D. An analysis of seasonal dynamics of a mixed population of Daphnia and the associated cladoceran community // Freshwatеr Biol. 1977. V. 7. P. 505–512.
17. Balayla D.J., Moss B. Spatial patterns and population dynamics of plant-associated microcrustacea (Cladocera) in an English shallow lake (Little Mere, Cheshire) // Aquatic Ecol. 2003. V. 37. P. 417–435.
18. Bertilsson J., Berzing B., Pejler B. Occurrence of limnic micro-crustaceans in relation to temperature and oxygen // Hydrobiologia. 1995. V. 299. P. 163–167.
19. Bevan L., Wallen D.G., Winner J.M. The effect of temperature, irradiance and animal size on incorporation rates of Simocephalus vetulus // Hydrobiologia. 1980. V. 69. № 1–2. P. 73–78.
20. De Bernardi R., Lacqua P., Soldavini E. Effects of temperature and food on developmental times and growth in Daphnia obtusa (Kurz) and Simocephalus vetulus (O.F. Müller) (Crustacea, Cladocera) // Mem. Ist. Ital. Idrobiol. 1978. V. 36. P. 171–191.
21. DeMott W. R., Gulati R.D. Phosphorus limitation in Daphnia: Evidence from a long term study of three hypereutrophic Dutch lakes // Limnol., Oceanogr. 1999. V. 44. № 6. P. 1557–1564.
22. Forasacco E., Leoni B., Fontvieille D., Cotta-Ramusino M. Warning system for ecosystem-wide changes, and to be a model species for toxicogenomic analysis of metal(s) exposure and effect in natural populations // VII-th Int. Symp. on Cladocera. Abstr. Book. Herzberg, 2005. P. 12–14.
23. Grant M.A., Janzen F.J. Phenotypic variation in smooth softshell turtles (Apalone mutica) from eggs incubated in constant versus fluctuating temperatures // Oecologia. 2003. V. 134. P. 182–188.
24. Halbach U. Life table data and population dynamics of the rotifer Brachionus calyciflorus Pallas as influenced by periodically oscillating temperature // Effects of temperature on the ectotermic organisms. Heidelberg; Berlin: Springer, 1973. P. 217–228.
25. Hanasato T., Yasuno M. Effect of Temperature in the Laboratory Studies on Growth, Egg Development and First Parturition of Five Species of Cladocera // Jap. J. Limnol. 1985. V. 46. № 3. P. 185–191.
26. Hann B.J., Zrum L. Littoral microcrustaceans (Cladocera, Copepoda) in a prairie coastal wetland: seasonal abundance and community structure // Hydrobiologia. 1997. V. 357. P. 37–52.
27. Khan P.M. The effect of constant and varying temperatures on the development of Acanthocyclops viridis (Jurine) // Proc. Roy. Trish. Acad. Ser. B. 1965. № 64. P. 117–130.
28. LaBerge S., Hann B.J. Acute temperature and oxygen stress among genotipes of Daphnia pulex and Simocephalus vetulus (Cladocera, Daphniidae) in relation to environmental conditions // Can. J. Zool. 1990. V. 68. № 11. P. 2257–2263.
29. Lock A. R., McLaren I.A. The effects of varying and constant temperatures on the size of marine copepods // Limnol., Oceanogr. 1970. V. 2. № 15. P. 638–640.
30. Manca M., de Bernardi R., Savia A. Effects of fluctuating temperature and light conditions on the population dynamics and the life strategies of migrating and non migrating Daphnia species // Mem. Ist. Ital. Idrobiol. 1986. V. 244. P. 177–202.
31. Monro I.G. The effect of temperature on the development of egg, naupliar and copepodite stages of two species of Copepoda: Cyclops vicinus Uljanin and Eudiaptomus gracilis Sars // Oecologia. 1974. V. 16. № 3. P. 265–278.
32. Nandini S., Sarma S.S.S. Lifetable demography of four cladoceran species in relation to algal food (Chlorella vulgaris) density // Hydrobiologia. 2000. V. 435. P. 117–126.
33. Nandini S., Sarma S.S.S. Population growth of some genera of Cladocerans (Cladocera) in relation to algal food (Chlorella vulgaris) levels // Hydrobiologia. 2003. V. 491. P. 211–219.
34. Orcutt J.D., Porter K.G. Diel vertical migration by zooplankton: constant and fluctuating temperature effects on life history parameters of Daphnia // Limnol., Oceanogr. 1983. V. 28. № 4. P. 720–730.
35. Perrow M.R., Jowitt A.J.D., Stansfield J.H., Phillips G.L. The practical importance of the interactions between fish, zooplankton and macrophytes in shallow restoration // Hydrobiologia. 1999. V. 395/396. P. 199–210.
36. Pilditch C.A., Grant J. Effect of temperature fluctuations and food supply on the growth and metabolism of juvenile sea scallops (Placopecten magellanicus) // Mar. Biol. 1999. V. 134. P. 235–248.
37. Sarma N., García E.C., Sarma S.S.S. Increase of the salinity in the lagoon Cabiúnas seems to favor the species indirectly, view as weak competitor, reducing the potential of stronger competitors // VII-th Int. Symp. on Cladocera. Abstr. Book. Herzberg, 2005. P. 40.
38. Semenchenko V.P., Razlutskii V.I., Feniova I.Yu., Aibulatov D.N. Biotic relations affecting species structure in zooplankton communities // Hydrobiologia. 2007. V. 579. P. 219–231.
39. Schulz K.L., Sterner R.W. Phytoplankton phosphorus limitation and food quality for Bosmina // Limnol., Oceanogr. 1999. V. 44(6). P. 1549–1556.
40. Sharitz R.R., Luvall J.C. Growth of duckweed under constant and variable temperatures // Energy and environmental stress in aquatic systems. DOE Symp. Ser. (CONF-77I114). Springfield: Nat. tech. in­f. serv., 1978. 410 p.
41. Stansfield J.H., Perrow M.R., Tench L.D. et al. Submerged macrophytes as refuges for grazing Cladocera against fish predation: observations on seasonal changes in relation to macrophyte cover and predation pressure // Hydrobiologia. 1997. V. 342/343. P. 229–240.
42. Tappa D.W. The dynamics and the association of six limnetic species of Daphnia in Aziscoos Lake, Maine // Ecol. Monogr. 1965. V. 35. P. 395–423.
43. Thorp J.H., Wineriter S.A. Stress and Growth Response of Juvenile Crayfish to Rhythmic and Arrhythmic Temperature Fluctuations // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1981. V. 10. P. 69–77.
44. Van Doorslaer W., Stocks R., Jeppesen E., Meester L. Adaptive microevolutionary responses to simulated global warming in Simocephalus vetulus: a mesocosm study // Global Change Biol. 2007. V. 13. P. 878–886.

V.B. Verbitsky, T.I. Verbitskaja

The Dynamics of Abundance of Simocephalus vetulus (O.F. Müller, 1776) (Crustacea, Cladocera) under Acyclic Stepwise Changes in Temperature.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

This experimental study investigates the influence of acyclic stepwise temperature regimes with a step 4.4 and 8.8°С over the range 14.8 to 25.5°С on dynamics Simocephalus vetulus of number. It is shown, that an increase in the number of this dominating species of littoral zooplankton number can be stimulated by differently directed acyclic stepwise changes in temperature, but the maximal development of the population is registered after a decrease in water temperature from 24.3 ±0.7 to 20.4 ±0.5°С and from 19.9 ±0.8 to 15.5 ±0.4°С. Under the same temperature conditions the effect of prolonged stimulating effect is observed. The obtained results confirm the assumption put forward earlier, that defining a real ecological optimum of a species by a specific environmental factor it is necessary to consider not only limits of the factor optimum values, but also the dynamics of their changes and an possibility of aftereffects (prolonged and delayed effects).

Keywords: Cladocera, Simocephalus vetulus dynamics of abundance, prolonged stimulating effect, stepwise changes, temperature.

В.В. Богатов, М.В. Астахов

Подледный дрифт беспозвоночных на предгорном участке реки Кедровая (Приморский край).

Биолого-почвенный институт ДВО РАН, 690022 Владивосток, пр. 100-летия Владивостока, 159
e-mail: vibogatov@rambler.ru; mvastakhov@mail.ru

Подледный дрифт беспозвоночных на предгорном участке р. Кедровая (Приморский край) по количественным показателям значительно ниже, чем в период открытой воды. Основу зимнего дрифта составляли личинки Diptera и Ephemeroptera. В теплый сезон интенсивный дрифт гидробионтов наблюдали в ночные часы, в условиях ледостава – в ночные и дневные, причем численность организмов, дрейфующих днем, обычно была выше, чем ночью. В сумеречных условиях дрифт беспозвоночных выражен слабо. С приходом весенней оттепели и появлением промоин обилие животных в речном потоке значительно увеличивалось. После вскрытия реки ото льда личинки Ephemeroptera дрейфовали преимущественно ночью уже на спаде половодья, у других групп беспозвоночных количественные показатели дневного дрифта продолжали оставаться высокими.

Ключевые слова: беспозвоночные, двукрылые, поденки, речной поток, подледный дрифт.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Астахов М.В. К таксономической характеристике донной фауны беспозвоночных животных реки Кедровой (бассейн Японского моря) // Биоразнообразие беспозвоночных животных: Матер. II Всерос. школы-семинара. Томск, 2007. С. 20–25.
2. Астахов М.В. Осенний дрифт в реке Кедровой (Приморский край) // Чтения памяти Владимира Яковлевича Леванидова. Владивосток: Дальнаука, 2008. Вып. 4. С. 93–107.
3. Барышев И.А., Веселов А.Е. Сезонная динамика бентоса и дрифта беспозвоночных организмов в некоторых притоках Онежского озера // Биология внутр. вод. 2007. № 1. С. 80–86.
4. Богатов В.В. Дрифт речного бентоса // Биология пресных вод Дальнего Востока. Владивосток: Дальневост. науч. центр, 1984. С. 107–120.
5. Богатов В.В. Значение бентостока в процессах биологического продуцирования в реках // Экология. 1984. № 3. С. 52–60.
6. Богатов В.В. Экология речных сообществ российского Дальнего Востока. Владивосток: Дальнаука, 1994. 218 с.
7. Богатов В.В. Основные методы изучения дрифта речного бентоса // Чтения памяти Владимира Яковлевича Леванидова. Владивосток: Дальнаука, 2005. Вып. 3. С. 5–17.
8. Васильев Н.Г., Матюшкин Е.Н., Купцов Ю.В. Заповедник "Кедровая Падь" // Заповедники СССР. Заповедники Дальнего Востока. М.: Мысль, 1985. С. 269–291.
9. Вшивкова Т.С., Кочарина С.Л., Макарченко Е.А. и др. Фауна водных беспозвоночных заповедника "Кедровая Падь" и сопредельных территорий // Современное состояние флоры и фауны заповедника "Кедровая Падь". Владивосток: Дальневост. отд. РАН, 1992. С. 48–88.
10. Коркишко В.Г. К 90-летию заповедника "Кедровая Падь" // Растительный и животный мир заповедника "Кедровая Падь". Владивосток: Дальнаука, 2006. С. 5–9.
11. Леванидов В.Я. Биомасса и структура донных биоценозов реки Кедровой // Пресноводная фауна заповедника "Кедровая Падь". Владивосток: Дальневост. науч. центр АН СССР, 1977. С. 126–159.
12. Леванидов В.Я., Леванидова И.М. Дрифт водных насекомых в реке Амур // Систематика и экология рыб континентальных водоемов Дальнего Востока. Владивосток: Дальневост. науч. центр АН СССР, 1979. С. 3–26.
13. Леванидов В.Я., Леванидова И.М. Дрифт личинок насекомых в крупной предгорной реке на примере р. Хор (бассейн Уссури) // Беспозвоночные животные в экосистемах лососевых рек Дальнего Востока. Владивосток: Дальневост. науч. центр АН СССР, 1981. С. 22–37.
14. Леванидова И.М. Амфибиотические насекомые горных областей Дальнего Востока СССР. Фаунистика, экология, зоогеография Ephemeroptera, Plecoptera и Trichoptera. Л.: Наука, 1982. 215 с.
15. Леванидова И.М., Леванидов В.Я. К вопросу о миграциях донных беспозвоночных в толще воды дальневосточных рек // Изв. Тихоокеан. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр. 1962. Т. 48. С. 178–189.
16. Леванидова И.М., Леванидов В.Я., Макарченко Е.А. Фауна водных беспозвоночных заповедника "Кедровая Падь" // Пресноводная фауна заповедника "Кедровая Падь". Владивосток: Дальневост. науч. центр, 1977. С. 3–43.
17. Макарченко Е.А., Макарченко М.А., Зорина О.В. Фауна комаров-звонцов (Diptera, Chironomidae) заповедника "Кедровая Падь" и сопредельных территорий // Растительный и животный мир заповедника "Кедровая Падь". Владивосток: Дальнаука, 2006. С. 152–160.
18. Плохинский Н.А. Биометрия. М.: Изд-во МГУ, 1970. 368 с.
19. Семенченко К.А. К фауне водяных клещей (Acariformes, Hydracarina) рек Кедровая и Барабашевка (Южное Приморье) // Растительный и животный мир заповедника "Кедровая Падь". Владивосток: Дальнаука, 2006. С. 237–242.
20. Тесленко В.А. Обзор фауны веснянок (Plecoptera) Восточно-Маньчжурских гор // Растительный и животный мир заповедника "Кедровая Падь". Владивосток: Дальнаука, 2006. С. 63–90.
21. Тиунова Т.М. Поденки Ephemeroptera Восточно-Маньчжурских гор // Растительный и животный мир заповедника "Кедровая Падь". Владивосток: Дальнаука, 2006. С. 50–62.
22. Чебанова В.В. Динамика дрифта беспозвоночных в лососевых реках разного типа (юго-восток Камчатки) // Гидробиол. журн. 1992. Т. 28. № 4. С. 31–39.
23. Шубина В.Н., Мартынов В.Г. Дрифт донных беспозвоночных в лососевых реках европейского Севера СССР в период ледостава // Гидробиол. журн. 1990. Т. 26. № 6. С. 27–31.
24. Bogatov V., Sirotsky S., Yuriev D. The Ecosystem of the Amur River // River and Stream Ecosystems of the World. Berkeley; Los Angeles; L.: Univ. California Press, 2006. P. 601–613.
25. Brittain J.E., Eikeland T.J. Invertebrate drift. A review // Hydrobiologia. 1988. V. 166. P. 77–93.
26. James A.B.W., Dewson Z.S., Death R.G. The effect of experimental flow reductions on macroinvertebrate drift in natural and streamside channels // Riv. res. and appl. 2008. V. 24. Issue 1. P. 22–35.
27. Pennuto C.M., deNoyelles Jr.F., Conrad M.A. et al. Winter macroinvertebrate communities in two montane Wyoming streams // Gr. Basin Natur. 1998. V. 58. № 3. P. 231–244.
28. Svendsen C.R., Quinn T., Kolbe D. Review of Macroinvertebrate Drift in Lotic Ecosystems. Final Report. Manuscript, 2004. 92 p. // (http://www.seattle.gov/light/environment/WildlifeGrant/Projects/MacroinvertbrateDrift.pdf).
29. Waters T.F. Production rate, population density and drift of stream invertebrate // Ecology. 1966. V. 47. P. 595–604.
30. Waters T.F. The drift of stream insects // Ann. Rev. Entomol. 1972. V. 17. P. 253–272.

V.V. Bogatov, M.V. Astakhov

The Under Ice Drift of Invertebrates in the Submountain River Kedrovaya (Primorye Territory, Russia).

Institute of Biology and Soil Sciences, Russian Academy of Sciences, Far Eastern Branch, 690022 Vladivostok, 100-letiya Vladivostoka Avenue, 159, Russia

Based on quantitative indices, the under ice drift of invertebrates in the site of the partially mountainous river Kedrovaya (Primorye Territory) was considerably lower than in the open water period. Larvae of Diptera and Ephemeroptera formed the basis of the winter drift. During a warm season, an intensive drift activity of hydrobionts was observed at night and, in conditions of freezing-over, the drift was observed to be high at night as well as during the day time; moreover, the number of day time migrants usually prevailed over their number at night. In twilight conditions, the drift of invertebrates was slow. With the beginning of a spring thaw and the occurrence of gullies, the abundance of active migrants increased considerably. After the ice melted and the water in the river was open, the Ephemeroptera larvae reverted back to a night type of drift activity upon the recession of high water. However, quantitative indices of the day time drift for other groups of invertebrates remained high.

Keywords: invertebrates, Diptera, Ephemeroptera, stream, under iсe drift.

И.Ю. Фенева*, В.И. Разлуцкий**, А.Л. Палаш**

Влияние температуры на конкуренцию между видами ветвистоусых ракообразных в экспериментальных условиях.

*Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Ленинский проспект, 33
**ГНПО "НПЦ НАН Беларуси по биоресурсам", 220072 г. Минск, ул. Академическая, 27
e-mail: feniova@mail.ru

В экспериментах с моно- и поликультурами крупных (Daphnia magna Straus и Simocephalus vetulus O.F. Müller) и мелких (Diaphanosoma brachyurum Lievin и Ceriodaphnia reticulata Jurine) видов кладоцер проверена гипотеза о переходе конкурентного преимущества от крупных видов к мелким при повышении температуры. Биомасса Simocephalus vetulus превышала биомассу остальных видов как в моно-, так и в смешанных культурах. При повышении температуры с 18 до 25°С биомасса всех видов снижалась. У самой крупной Daphnia magna в ответ на повышение температуры возрастала смертность. Cделано предположение, что снижение биомассы крупных видов при высокой температуре позволило мелкой Ceriodaphnia reticulata достичь более высокого обилия, чем при низкой температуре, когда этот вид был фактически полностью вытеснен крупными видами. По-видимому, смертность крупных видов снижается при низкой температуре и недостатке пищи благодаря задержке постэмбрионального развития. При повышении температуры развитие молоди ускоряется, соответственно смертность крупных видов возрастает. Однако возможны индивидуальные особенности в стратегиях выживания видов при разных температурах. В целом, повышение температуры может привести к снижению биомассы кладоцер и переходу доминирования от крупных видов к мелким.

Ключевые слова: Cladocera, биомасса, динамика численности, структура сообществ, конкуренция, стратегия выживания, влияние температуры.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Балушкина Е.В., Винберг Г.Г. Зависимость между массой и длиной тела у планктонных животных // Экспериментальные и полевые исследования биологических основ продуктивности озер. Л.: Наука, 1978. С. 58–72.
2. Сущеня Л.М., Семенченко В.П., Семенюк Г.А., Трубецкова И.Л. Продукция планктонных ракообразных и факторы среды. Минск: Наука и техника, 1990. 157 с.
3. Фенева И.Ю., Будаев С.В. Оценка возможности внедрения и выживания ветвистоусых ракообразных в условиях конкуренции в мезотрофном оз. Глубокое // Экология. 2006. № 3. С. 221–226.
4. Achenbach L., Lampert W. Effects of elevated temperatures on threshold food concentrations and possible competitive abilities of differently sized cladoceran species // Oikos. 1997. V. 79. P. 469–476.
5. Atkinson D. Temperature and organism size a biological law for ectotherms? // Adv. Ecol. Res. 1994. V. 25. P. 21–58.
6. Brooks J.L. The effects of prey size selection by lake planktivores // Syst. Zool. 1968. V. 17. P. 273–291.
7. Dawidowicz P., Wielanier M. Costs of predator avoidance reduce competitive ability of Daphnia // Hydrobiologia. 2004. V. 526. P. 165–169.
8. DeMott W.R. The role of competition in zooplankton succession // Plankton ecology: succession in plankton communities. N.Y.: Springer-Verlag, 1989. P. 195–252.
9. DeMott W.R., Kerfott W.C. Competition among cladocerans: nature of the interactions between Bosmina and Daphnia // Ecology. 1982. V. 63. P. 1949–1966.
10. Dzialowski A., O’Brien W.J., Swaffar S.M. Range expansion and potential dispersal mechanisms of the exotic cladoceran Daphnia lumholtzi // J. Plankt. Res. 2000. V. 22. P. 2205–2223.
11. Dzialowski A.R., Smith V.H. Nutrient dependent effects of consumer identity and diversity on freshwater ecosystem function // Freshwater Biol. 2007. V. 53. P. 148–158.
12. Gliwicz Z.M. Food thresholds and body size in cladocerans // Nature. 1990. V. 343. P. 638–640.
13. Gliwicz Z.M. Between hazards of starvation and risk of predation: the ecology of offshore animals. Excellence in Ecology. Oldendorf/Luhe: Int. Ecol. Inst., 2003. V. 12. 379 p.
14. Hillbright-Ilkowska A., Ejsmont-Karabin J., Weglenska T. Long-term changes in the composition, productivity and trophic efficiency in the zooplankton community of heated lakes near Konin (Poland) // Ekol. Pol. 1988. V. 36. P. 115–144.
15. Hooper D.U., Сhapin F.S., Ewell J.J. et al. Effects of biodiversity on ecosystem functioning: a consensus of current knowledge // Ecol. Monogr. 2005. V. 75. P. 3–35.
16. Ives A.R., Hughes J.B. General relationships between species diversity and stability in competitive systems // Amer. Natur. 2002. V. 159. P. 388–395.
17. Jiang L. Density compensation can cause no effect of biodiversity on ecosystem functioning // Oikos. 2007. V. 116. P. 324–334.
18. Korinek V. Chapter 3: Сladocera // A guide to tropical freshwater zooplankton. Identification, ecology and impacts on fisheries. Leiden: Backhuys Publ., 2002. P. 69–97.
19. Korovchinsky N.M. Evolutionary morphological development of the Cladocera of the superfamily Sidoidea and life strategies of crustaceans of continental waters // Int. Rev. Hydrobiol. 1990. V. 75. P. 179–186.
20. Kratz T.K., Frost T.M., Magnuson J.J. Inferences from spatial and temporal variability in ecosystems: long-term zooplankton data from lakes // Amer. Natur. 1987. V. 129. P. 830–846.
21. Loreau M. Separating sampling and other effects in biodiversity experiments // Oikos. 1998. V. 82. P. 600–602.
22. Moore M.V., Folt C.L., Stemberger R.S. Consequences of elevated temperatures for zooplankton assemblages in temperate lakes // Arch. Hydrobiol. 1996. Bd 135. S. 289–319.
23. Naeem S. Species redundancy and ecosystem reliability // Conserv. Biol. 1998. V. 12. P. 39–45.
24. Perrin N. Why are offspring born larger when it is colder? Phenotypic plasticity for offspring size in the cladoceran Simocephalus vetulus (Müller) // Funct. Ecol. 1988. V. 2. P. 283–288.
25. Perrin N. About Berrigan and Charnov’s life-history puzzle // Oikos. 1995. V. 73. P. 137–139.
26. Pinto-Coelho R., Pinel-Alloul B., Méthot G., Havens K.E. Crustacean zooplankton in lakes and reservoirs of temperate and tropical regions: variation with trophic status // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 2005. V. 62. P. 348–361.
27. Romanovsky Yu.E. Individual growth rate as a measure of competitive advantages in Cladoceran сrustaceans // Int. Rev. Hydrobiol. 1984. V. 69. P. 613–632.
28. Sarma S.S.S., Nandini S., Gulati R.D. Life history strategies of cladocerans: comparisons of tropical and temperate taxa // Hydrobiologia. 2005. V. 542. P. 315–333.
29. Semenchenko V.P., Razlutskij V.I., Feniova I.Yu., Aisbulatov D.N. Biotic relations affecting species structure in zooplankton communities // Hydrobiologia. 2007. V. 579. P. 219–231.
30. Smyly W.J.P. Vertical distribution and abundance of Ceriodaphnia quadrangula (O.F. Müller) (Crustacea, Cladocera) // Freshwater Biol. 1996. V. 35. P. 25–34.
31. Srivastava D.S., Vellend M. Biodiversity ecosystem function research: is it relevant to conservation? // Annu. Rev. Ecol. and Syst. 2005. V. 36. P. 267–294.
32. Steiner C.F., Darcy-Hall T.L., Dorn N.J. et al. The influence of consumer diversity and indirect facilitation on trophic level biomass and stability // Oikos. 2005. V. 110. P. 556–566.
33. Strecker A.L., Cobb T.P., Vinebrooke R.D. Effects of experimental greenhouse warming on phytoplankton and zooplankton communities in fishless alpine ponds // Limnol., Oceanogr. 2004. V. 49. P. 1182–1190.
34. Tilman D., Lehman C.L., Thomson K.T. Plant diversity and ecosystem productivity: theoretical considerations. Proceedings of the National Academy of Sciences of the Unated States of America // Biol. Sci. 1997. V. 94. P. 1857–1861.
35. Van Doorslaer W., Stocks R., Jeppesen E., Meester L. Adaptive microevolutionary responses to simulated global warming in Simocephalus vetulus: a mesocosm study // Global Change Biol. 2007. V. 13. P. 878–886.
36. Von Bertalanffy L. Principles and theory of growth // Fundamental Aspects of Normal and Malignant Growth. Amsterdam: Elsevier, 1960. P. 137–259.
37. Weetman D., Atkinson D. Evaluation of alternative hypotheses to explain temperature –induced life history shifts in Daphnia // J. Plankt. Res. 2004. V. 26. P. 107–116.
38. Zaret T.M. Strategies for existence of zooplankton prey in homogeneous environments // Ver. Int. Ver. theor. und angew. Limnol. 1975. V. 19. P. 1484–1489.

I.Yu. Feniova*, V.I. Razlutsky**, A.L. Palash**

Temperature Effects of Interspecies Competition Between Cladoceran Species in Experimental Conditions.

*A.N. Severtsov Institute of Ecology and Evolution, Russian Academy of Sciences, 119071 Moscow, Leninsky Prospect, 33, Russia
**The Scientific and Practical Center for Bioresources, National Academy of Sciences of Belarus, 220072 Minsk, ul. Akademicheskaya, 27, Republic of Belarus

In experiments with mono- and polycultures the hypothesis that small-size cladoceran species (Daphnia magna Straus and Simocephalus vetulus O.F. Müller) are more successful at higher temperatures whereas large-size species (Diaphanosoma brachyurum Lievin and Ceriodaphnia reticulata Jurine) under low temperatures was tested. The biomass of Simocephalus vetulus exceeded the biomass of the other species both in mono- and polycultures. An increase of temperature from 18 up to 25°C led to reduction of the biomass of all species. The largest species, D. magna, responded to higher temperature by increased mortality. We assume that the reduction of the biomass of the large species allowed the small C. reticulata to develop successfully in mixed cultures at higher temperature; however it was completely eliminated at lower temperature. Apparently, the survival strategy of large cladocerans involves delayed juvenile development at lower temperatures. However, at higher temperatures, juvenile development of large species accelerates, and their mortality increases. Individual strategies of the studied species to survive at different temperatures are analyzed. On the whole the increase of temperature can result in decrease of the biomass of cladocerans and prevailence of small-size species over large-size ones.

Keywords: Cladocera, biomass, dynamics of abundance, structure of communities, competition, strategy of survival, effect of temperature.

Паразитология гидробионтов

Г.И. Извекова*, А.О. Плотников**

Гидролитическая активность ферментов симбионтной микрофлоры кишечника щуки (Esox lucius L.).

*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН, 460000 Оренбург, ул. Пионерская, д. 11
e-mail: izvekov@ibiw.yaroslavl.ru

Установлено существование микрофлоры, с различной степенью прочности ассоциированной со слизистой кишечника щуки. Выделено 82 штамма бактерий. Обнаруженные микроорганизмы продуцируют ферменты, гидролизующие основные пищевые субстраты: белки и углеводы. Указанные ферменты вырабатываются как совокупностью различных микроорганизмов, обитающих в кишечнике, так и отдельными штаммами, выделенными в чистой культуре. Обнаруженные штаммы продуцируют ферменты с различными уровнями активности. Большинство выделенных штаммов (68%) продуцируют протеазы. Вычисленный коэффициент К/П (отношение активности карбогидраз к активности протеаз) косвенно свидетельствует об автохтонности микрофлоры, ассоциированной со слизистой кишечника щуки. По-видимому, ферменты микрофлоры вносят существенный вклад в гидролитическую активность кишечника щуки, однако оценка этого вклада затруднительна.

Ключевые слова: кишечник рыб, микрофлора, ферментативная активность.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Извекова Г.И. Гидролитическая активность ферментов микрофлоры, ассоциированной с пищеварительно-транспортными поверхностями кишечника щуки и паразитирующего в нем Triaenophorus nodulosus (Cestoda, Pseudophyllidea) // Журн. эвол. биохимии и физиологии. 2005. Т. 41. № 2. С. 146–153.
2. Извекова Г.И., Немцева Н.В., Плотников А.О. Таксономическая характеристика и физиологические свойства микроорганизмов из кишечника щуки (Esox lucius) // Изв. РАН. Сер. биол. 2008. № 6. С. 688–695.
3. Кузьмина В.В. Применение метода последовательной десорбции α-амилазы с отрезков кишки при изучении мембранного пищеварения у рыб // Вопр. ихтиологии. 1976. Т. 16. Вып. 5. С. 944–946.
4. Кузьмина В.В., Скворцова Е.Г. Бактерии желудочно-кишечного тракта и их роль в процессах пищеварения у рыб // Успехи соврем. биологии. 2002. Т. 122. № 6. С. 569–579.
5. Лубянскене В., Вирбицкас Ю., Янкявичюс К. и др. Облигатный симбиоз микрофлоры пищеварительного тракта и организма. Вильнюс: Мокслас, 1989. 192 с.
6. Скворцова Е.Г. Роль протеиназ объектов питания и энтеральной микробиоты в процессах пищеварения у рыб разных экологических групп: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Борок, 2002. 21 с.
7. Уголев А.М. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций. Л.: Наука, 1985. 544 с.
8. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н. Определение активности инвертазы и других дисахаридаз // Исследование пищеварительного аппарата у человека (обзор современных методов). Л.: Наука, 1969. С. 192–196.
9. Уголев А.М., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. Спб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
10. Шивокене Я. Симбионтное пищеварение у гидробионтов и насекомых. Вильнюс: Мокслас, 1989. 223 с.
11. Anson M. The estimation of pepsin, tripsin, papain and eathepsin with hemoglobin // J. Gen. Physiol. 1938. V. 22. № 1. P. 79–83.
12. Austin B. The bacterial microflora of fish // The Sci. World J. 2002. № 2. P. 558–572.
13. Bairagi A., Ghosh K.S., Sen S.K., Ray A.K. Enzyme producing bacterial flora isolated from fish digestive tracts // Aquaculture Int. 2002. V. 10. P. 109–121.
14. Cahill M.M. Bacterial flora of fishes: a review // Microbiol. Ecol. 1990. V. 19. № 1. P. 21–41.
15. Clements K.D. Fermentation and gastrointestinal microorganisms in fishes // Gastrointestinal microbiol. N.Y., 1997. V. 1. P. 156–198.
16. Hansen G.H., Olafsen J.A. Bacterial interactions in early life stages of marine cold water fish // Microbiol. Ecol. 1999. V. 38. P. 1–26.
17. Hooper L.V., Bry L., Falk P.G., Gordon J.I. Host-microbial symbiosis in the mammalian intestine: Exploring an internal ecosystem // BioEssays. 1998. V. 20. № 4. P. 336–343.
18. Koushik G., Kumar S.S., Kumar R.A. Characterization of bacilli isolated from the gut of rohu, Labeo rohita, fingerlings and its significance in digestion // J. Appl. Aquаculture. 2002. V. 12. № 3. P. 33–42.
19. MacDonald N. L., Stark J.R., Austin B. Bacterial microflora in the gastrointestinal tract of Dover sole (Solea solea L.), with emphasis on the possible role of bacteria in the nutrition of the host // FEMS Microbiol. Lett. 1986. V. 35. P. 107–111.
20. Ringø E., Gatesoupe F.-J. Lactic acid bacteria in fish: a review // Aquaculture. 1998. V. 160. P. 177–203.
21. Skea G.L., Mountfort D.O., Clements K.D. Gut carbohydrases from the New Zealand marine herbivorous fishes Kyphosus sydneyanus (Kyphosidae), Aplodactylus arctidens (Aplodactylidae) and Odax pullus (Labridae) // Comp. Biochem. and Physiol. 2005. V. 140B. P. 259–269.
22. Skea G.L., Mountfort D.O., Clements K.D. Contrasting digestive strategies in four New Zealand herbivorous fishes as reflected by carbohydrase activity profiles // Comp. Biochem. and Physiol. 2007. V. 146A. P. 63–70.
23. Sugita H., Kawasaki J., Deguchi Y. Production of amylase by the intestinal microflora in cultured freshwater fish // Lett. Appl. Microbiol. 1997. V. 24. № 2. P. 105–108.
24. Sugita H., Kawasaki J., Kumazawa J., Deguchi Y. Production of amylase by the intestinal bacteria of Japanese coastal animals // Lett. App. Microbiol. 1996. V. 23. P. 174–178.
25. Šyvokiené J, Mickéniené L. Effect of heavy metals on the bacteriocenoses of the digestive tract of fish // Chemia i inźynieria ekol. 2002. V. 9. № 9. P. 1033–1038.

G.I. Izvekova*, A.O. Plotnikov**

Hydrolytic Activity of Symbiotic Microflora Enzymes in the Pike Intestines (Esox lucius L.).

*Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia
**Institute for Cellular and Intracellular Symbiosis UB RAS, 460000 Orenburg, ul. Pionerskaya, 11, Russia

The study has revealed the existence of microflora associated with the intestinal mucosa of pike to different degree of strength. The total of 82 bacterial strains has been isolated. These microorganisms produce the enzymes hydrolyzing the major food substrates – proteins and carbohydrates. The specified enzymes are produced by the pool of various microorganisms living in the intestines, as well as by the separate strains isolated in pure cultures. These strains produce enzymes with different levels of activity. Most of the isolated strains (68%) produce proteases. The calculated values of C/P factor (the ratio of carbohydrase activity to protease activity) indirectly testify to an autochthonous nature of the microflora associated with the pike intestinal mucosa. Apparently, the contribution of the microflora enzymes to enzymatic activity of the pike intestine is sufficient but it is difficult to make its estimation now.

Keywords: intestines of fishes, microflora, enzyme activity.

Ж.Н. Дугаров*, Н.М. Пронин*, Л.Д. Сондуева*, Т.Г. Бурдуковская*, М.Д. Батуева*, С.В. Пронина**

Зависимость структуры сообществ паразитов плотвы Rutilus rutilus (L.) от возраста хозяина.

*Институт общей и экспериментальной биологии СО РАН, 670047 Улан-Удэ, ул. Сахьяновой, 6
**Бурятский государственный университет, 670000 Улан-Удэ, ул. Смолина, 24а
е-mail: zhar-dug@biol.bscnet.ru

Исследованы изменения структуры сообществ паразитов двух популяций плотвы по возрастным группам в Чивыркуйском заливе оз. Байкал и дельте р. Селенга. Сообщества паразитов проанализированы на уровнях особи хозяина (инфрасообщества), возрастной группы хозяина (совокупности инфрасообществ), популяции хозяина (компонентного сообщества). Количество видов паразитов закономерно увеличивается, выравненность сообществ уменьшается с возрастом плотвы в обоих водных объектах. Индекс доминирования Бергера–Паркера сообществ паразитов разнонаправленно изменяется с возрастом плотвы: в Чивыркуйском заливе – увеличивается, в дельте р. Селенга – уменьшается. Изменения индекса видового разнообразия Шеннона для совокупностей инфрасообществ паразитов плотвы противоположны изменениям индекса Бергера-Паркера.

Ключевые слова: структура сообществ паразитов, плотва, Чивыркуйский залив оз. Байкал, дельта р. Селенга.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Аннотированный список фауны Байкала и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2001. Т. I: Озеро Байкал. Кн. 1. 832 с.
2. Аннотированный список фауны Байкала и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2004. Т. I: Озеро Байкал. Кн. 2. 1679 с.
3. Балашов Ю.С. Термины и понятия, используемые при изучении популяций и сообществ паразитов // Паразитология. 2000. Т. 34. Вып. 5. С. 361–370.
4. Догель В.А. Возрастные изменения паразитофауны угря в связи с вопросом о его миграциях // Уч. зап. ЛГУ. Сер. биол. 1936. № 7. Вып. 3. С. 114–122.
5. Догель В.А. Паразитофауна и окружающая среда. Некоторые вопросы экологии паразитов пресноводных рыб // Основные проблемы паразитологии рыб. Л.: Изд-во ЛГУ, 1958. С. 9–54.
6. Догель В.А., Боголепова И.П., Смирнова И.В. Паразитофауна озера Байкал и ее зоогеографическое значение // Вестн. ЛГУ. 1949. № 7. С. 13–34.
7. Доровских Г.Н., Степанов В.Г. Возраст хозяина и структура компонентных сообществ паразитов у гольяна речного Phoxinus phoxinus (L.) // Паразитология. 2007. Т. 41. Вып. 4. С. 284–298.
8. Доровских Г.Н., Степанов В.Г. Изменение структуры компонентных сообществ паразитов с возрастом хозяина // Экология. 2008. № 3. С. 227–232.
9. Дугаров Ж.Н., Пронин Н.М. Размерно-возрастная структура популяций беззубок рода Colletopterum (Bivalvia, Unionidae) и их зараженность аспидогастером (Aspidogaster conchicola, Aspidogastrea, Aspidogastridae) в прибрежно-соровой зоне озера Байкал // Зоол. журн. 2008. Т. 87. № 9. С. 1041–1047.
10. Жохов А.Е. Сезонная динамика структуры сообществ кишечных гельминтов язя (Leuciscus idus L.) в Рыбинском водохранилище // Экология. 2003. № 6. С. 454–458.
11. Заика В.Е. Паразитофауна рыб озера Байкал. М.: Наука, 1965. 106 с.
12. Мэгарран Э. Экологическое разнообразие и его измерение. М.: Мир, 1992. 181 с. (Magurran A.E. Ecological diversity and its measurement. L.; Sydney: Croom Helm, 1988. 179 p.).
13. Пронин Н.М., Дугаров Ж.Н., Сондуева Л.Д. и др. Пространственное распределение паразитов рыб // Дельта реки Селенги – естественный биофильтр и индикатор состояния озера Байкал. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2008. Вып. 15. 314 с.
14. Пронин Н.М., Шиверская О.Т. О стабильности возрастной динамики зараженности окуня специфичными паразитами при разной его численности // Гельминты в пресноводных биоценозах. М.: Наука, 1982. С. 135–146.
15. Пугачев О.Н. Паразитарные сообщества речного гольяна // Паразитология. 2000. Т. 34. Вып. 3. С. 196–209.
16. Русинек О.Т. Паразиты рыб озера Байкал (фауна, сообщества, зоогеография, история формирования). М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2007. 571 с.
17. Стрелков Ю.А., Чернышева Н.Б., Юнчис О.Н. Закономерности формирования паразитофауны молоди пресноводных рыб // Экологические аспекты паразитологии. Л.: Зоол. ин-т АН СССР, 1981. С. 23–30.
18. Шульман С.С., Донец З.С., Ковалева А.А. Класс миксоспоридий мировой фауны. Т. 1: Общая часть. Спб.: Наука, 1997. 578 с.
19. Bush A.O., Lafferty K.D., Lotz J.M., Shostak A.W. Parasitology meets ecology on its own terms: Margolis et al. revisited // J. Parasitol. 1997. V. 83. № 4. P. 575–583.
20. Goater T.M., Esch G.W., Bush A.O. Helminth parasites of sympatric salamanders: ecological concepts at infracommunity, component and compound community levels // Am. Midl. Nat. 1987. V. 118. № 2. P. 289–300.
21. Holmes J.C., Price P.W. Parasite communities: the roles of phylogeny and ecology // Syst. Zool. 1980. V. 29. № 2. P. 203–213.
22. Holmes J.C., Price P.W. Communities of parasites // Community ecology: patterns and processes. Oxford: Blackwell Sci., 1986. P. 187–213.
23. Johnson M.W., Nelson P.A., Dick T.A. Structuring mechanisms of yellow perch (Perca flavescens) parasite communities: host age, diet, and local factors // Can. J. Zool. 2004. V. 82. № 8. P. 1291–1301.
24. Lo S.M., Morand S., Galsin R. Parasite diversity/host age and size relationship in three coral-reef fishes from French Polynesia // Int. J. Parasitol. 1998. V. 28. № 11. P. 1695–1708.
25. Payne L.X., Schindler D.E., Parrish J.K., Temple S.A. Quantifying spatial pattern with evenness indices // Ecol. Appl. 2005. V. 15. № 2. P. 507–520.
26. Salgado-Maldonado G., Kennnedy C.R. Richness and similarity of helminth communities in the tropical cichlid fish Cichlasoma urophthalmus from the Yucatan Peninsula, Mexico // Parasitology. 1997. V. 114. № 6. P. 581–590.
27. Smith B., Wilson J.B. A consumer's guide to evenness indices // Oikos. 1996. V. 76. № 1. P. 70–82.
28. Timi J.T., Poulin R. Parasite community structure within and across host populations of a marine pelagic fish: how repeatable is it? // Int. J. Parasitol. 2003. V. 33. № 12. P. 1353–1362.

Z.N. Dugarov*, N.M. Pronin*, L.D. Sondueva*, T.G. Burdukovskaya*, M.D. Batueva*, S.V. Pronina**

The Dependence of the Structure of Parasite Communities Structure of Roach Rutilus rutilus L. on Host Age.

*Institute of General and Experimental Biology, SB RAS, 670047 Ulan-Ude, ul. Sakhyanovoy, 6, Russia
**Buryat State University, 670000 Ulan-Ude, ul. Smolina, 24a, Russia

The changes of the structure of parasite communities of two roach populations in age groups in Chivyrkuyskiy Bay of Lake Baikal and in delta of the Selenga River have been investigated. The parasite communities of roach have been analyzed at the level of the host individual (infracommunity), age group of the host (total of infracommunities), the host population (component community). The number of parasite species increase regularly, but evenness of parasite communities decrease in relation to the roach age in two waterbodies. The Berger-Parker index of dominance of parasite communities changes oppositely according to the roach age in two water bodies: it increases in Chivyrkuyskiy Bay, but decreases in the delta of the Selenga River. The changes of the Shannon index of diversity of the totality of parasite infracommunities are opposite to these of the Berger-Parker index.

Keywords: structure of parasite communities, roach, Chivyrkuyskiy Bay of Lake Baikal, delta of River Selenga.

Экологическая физиология и биохимия гидробионтов

В.В. Халько

Cравнительный анализ суточных вариаций липидного состава сеголетков окуня Perca fluviatilis L. и тюльки Clupeonella cultriventris Nordmann из пелагиали Рыбинского водохранилища.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
е-mail: khalko@ibiw.yaroslavl.ru

Проанализированы суточные колебания общего содержания и фракционного состава липидов в организме сеголетков аборигенного вида – окуня и вида-вселенца – тюльки, образующих основу нагульных скоплений молоди рыб в пелагиали Рыбинского водохранилища. Установлены устойчивые межвидовые различия в среднесуточных и часовых значениях содержания суммарных липидов и трех их фракций – фосфолипидов (ФЛ), холестерина (ХС) и триацилглицеринов (ТАГ). Уровень жировых запасов и содержание ТАГ в организме тюльки значительно выше, а содержание ФЛ и ХС – ниже, чем у окуня. Суточные колебания уровня каждой из этих трех липидных фракций у обоих видов рыб имеют сходный характер, но их диапазоны у тюльки шире, чем у окуня. Обсуждены возможные механизмы регуляции метаболизма липидов (включая участие в них нейроэндокринных центров) у молоди разных видов рыб при адаптации к кратковременным изменениям условий внешней среды. Предполагается, что современное состояние зоопланктонного сообщества в пелагиали Рыбинского водохранилища негативно отражается на питании сеголетков окуня и показателях их липидного обмена.

Ключевые слова: окунь, тюлька, сеголетки, липиды, суточные вариации, пелагиаль.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Кейтс М. Техника липидологии. Выделение, анализ и идентификация липидов. М.: Мир, 1975. 322 c. (Kates M. Techniques of lipidology. Isolation, analysis and identification of lipids. Amsterdam; L.; N.Y.: North-Holland Publishing Company; American Elsevier Publishing Co., Inc., 1972).
2. Кияшко В.И. Трофоэкологическая характеристика тюльки Clupeonella cultriventris в водохранилищах Средней и Верхней Волги // Вопр. ихтиологии. 2004. Т. 44. № 6. C. 811–820.
3. Лазарева В.И. Сравнительный анализ состава и обилия летнего зоопланктона Рыбинского водохранилища в 1987–1988 и 1997–2004 гг. // Биологические ресурсы пресных вод: беспозвоночные. Рыбинск: Дом печати, 2005. C. 182–224.
4. Лазарева В.И. Сукцессия экосистемы Рыбинского водохранилища: анализ данных за 1941–2001 гг. // Актуальные проблемы рационального использования биологических ресурсов водохранилищ. Рыбинск: Дом печати, 2005. C. 162–177.
5. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 352 с.
6. Лапин В.И., Чернова Е.Г. О методике экстракции жира из сырых тканей рыб // Вопр. ихтиологии. 1970. Т. 10. Вып. 4. C. 753–756.
7. Романенко В.Д., Саутин Ю.Ю., Малиновская М.В. Температурозависимое действие пролактина на содержание триацилглицеринов и свободных жирных кислот у рыб (Cyprinus carpio L.) // Докл. АН УССР. 1986. № 6. C. 79–92.
8. Саутин Ю.Ю. Влияние пролактина на фосфолипидный состав и содержание холестерина в микросомах печени карпа в процессе акклимации к различным температурам // Укр. биохим. журн. 1987. Т. 59. № 4. C. 69–75.
9. Саутин Ю.Ю. Проблема регуляции адаптационных изменений липогенеза, липолиза и транспорта липидов у рыб // Успехи соврем. биологии. 1989. Т. 107. Вып. 1. C. 131–149.
10. Cидоров В.С. Экологическая биохимия рыб. Липиды. Л.: Наука, 1983. 240 с.
11. Сидоров В.С., Лизенко Е.И., Болгова О.М., Нефедова З.А. Липиды рыб. 1. Методы анализа. Тканевая специфичность липидов ряпушки Coregonus albula L. // Лососевые (Salmonidae) Карелии. Петрозаводск: Карельск. филиал АН СССР, 1972. Вып. 1. C. 150–161.
12. Халько В.В. Закономерности формирования продукционных показателей молоди рыб разных экологических групп: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 1983. 24 c.
13. Халько В.В. К вопросу о физиолого-биохимическом состоянии тюльки Clupeonella cultriventris Nordmann (Сlupeidae, Clupeiformes) в Рыбинском водохранилище // Вопр. ихтиологии. 2007. Т. 47. Вып. 4. C. 320–330.
14. Халько В.В., Халько Н.А. Суточные изменения липидного состава молоди плотвы Rutilus rutilus (L.) (Cyprinidae) в условиях естественной периодичности факторов внешней среды // Вопр. ихтиологии. 2001. Т. 41. № 1. C. 88–96.
15. Халько В.В., Халько Н.А. Суточные колебания показателей липидного обмена у сеголетков плотвы Rutilus rutilus L. при естественных изменениях интенсивности питания и температуры воды в водоеме // Биология внутр. вод. 2001. № 1. C. 80–89.
16. Халько В.В., Халько Н.А. Сравнительный анализ суточных вариаций липидного состава молоди плотвы Rutilus rutilus в условиях свободного доступа к пище и голодания // Вопр. ихтиологии. 2003. Т. 43. № 4. С. 540–552.
17. Шатуновский М.И. Экологические закономерности обмена веществ морских рыб. М.: Наука, 1980. 281 с.
18. Шкляр Д.Г. Сезонная изменчивость суточных ритмов организма окончательного хозяина при описторхозе (экспериментальное исследование): Автореф. дис. … канд. биол. наук. Тюмень, 1994. 20 c.
19. Шульман Г.Е. Физиолого-биохимические особенности годовых циклов рыб. М.: Пищ. пром-сть, 1972. 368 c.
20. Экосистема озера Плещеево. Л.: Наука, 1989. 264 c.
21. Delahunty G., De Vlaming V.L. Photoperiod-temperature interaction on liver and plasma metabolites in the goldfish, Carassius auratus // Comp. Biochem. and Physiol. 1980. V. 66. № 3. P. 507–512.
22. Engelbrecht F.M., Mori F., Anderson I.T. Cholesterol determination in serum. A rapid direct method // S.A. Med. J. 1974. № 48. P. 250–256.
23. Folch J., Lees M., Stonley A. A simple method for isolation and purification of total lipides from animal tissues // J. Biol. Chem. 1957. V. 226. № 1. P. 497–509.
24. Garsia-Rodriguez T., Ferrer M., Recio F., Castroviejo J. Circadian rhythms of determined blood chemistry values in buzzards and eagle owls // Comp. Biochem. аnd Physiol. 1987. V. 88. № 4. P. 663–669.
25. Knight G.C., Sage M. The effect of time of day and photoperiod on prolactin and electrophoretic mobility in the pituitary of the goldfish, Carassius auratus L. // Can. J. Zool. 1987. V. 65. № 1. P. 199–203.
26. Sweeney T., Kelly G., O’Callaghan D. Seasonal variation in long-day stimulation of prolactin secretion in ewes // J. Biol. Reproduction. 1999. № 60. P. 128–133.
27. Walsh D.E., Banasik O.I., Gilles K.A. Thin-layer chromatographic separation and colorimetric analysis of barley or malt lipid classes and their fatty acids // J. Chromatography. 1965. V. 17. № 2. P. 278–294.

V.V. Khalko

Comparative Analysis of Diurnal Variations of the Lipid Composition of Fingerlings of Perch Perca fluviatilis L. and Tyulka Clupeonella cultriventris Nordmann from the Rybinsk Reservoir Pelagial.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

Diurnal variations of the total content and fractional composition of lipids in the organism of fingerlings of the indigenous species – perch and nonindigenous species – tyulka forming the basis of feeding young fish accumulations in the Rybinsk reservoir pelagial have been analyzed. Stable interspecific differences in mean daily and hourly values of the content of total lipids and the level of their three fractions – phospholipids (PL), cholesterol (CS) and triacylglycerols (TAG) have been determined. It is shown that the level of adipose reserves and the content of TAG in the organism of tyulka are higher and the content of PL and CS – lower than in perch. Diurnal variations of the level of each of three fractions in the both fish species are similar but the ranges are wider in tyulka than in perch. Possible mechanisms of the lipid metabolism regulation (including participation neuroendocrinal centers) and their similarity in young fish of different species at adaptation to short-term changes in the environment have been discussed. It is suggested that the modern state of the zooplankton community in the Rybinsk reservoir pelagial impacts negatively the feeding of perch fingerlings and parameters of lipid metabolism in their organisms.

Keywords: perch, tyulka, fingerlings, lipids, diurnal variations, pelagial.

Краткие сообщения

И.В. Поздеев

Границы ареала Dreissena polymorpha (Pallas) в бассейне реки Камы.

Пермское отделение Государственного научно-исследовательского института oзерного и речного рыбного хозяйства, 614002 Пермь, ул. Чернышевского, 3
е-mail: pozdeev_ivan@mail.ru

Распространение Dreissena polymorpha в Камском бассейне ограничено 59°37'-54°00' с.ш. и 57°10'-49°03' в.д. Ареал дрейссены характеризуется непрерывностью вдоль рек Кама, Белая и Уфа. В поймах рек Белая и Вятка существуют изолированные популяции. Распределение дрейссены в текучих водах Камского бассейна ограничивается условиями потамали.

Ключевые слова: Dreissena polymorpha, ареал, водотоки.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алексевнина М.С., Истомина А.М. Роль дрейссены в бентофауне среднекамских водохранилищ // Дрейссениды: эволюция, систематика, экология: Матер. Международ. школы-конф. Борок, 2008. С. 52–54.
2. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоeмов. М.: Наука, 1975. 254 с.
3. Митрофанова И.Ю., Антонова Е.Л. Бентофауна р. Вятка // Тр. Пермск. отд. ГосНИОРХ. 2007. T. 6. С. 80–100.
4. Поздеев И.В. Распространение дрейссены (Dreissena polymorpha Pallas) в бассейне Камы // Дрейссениды: эволюция, систематика, экология: Матер. Международ. школы-конф. Борок, 2008. С. 115–116.
5. Шихова Т.Г. Dreissena polymorpha в бассейне р. Вятки // Дрейссениды: эволюция, систематика, экология: Матер. Международ. школы-конф. Борок, 2008. С. 156–157.
6. Яковлев В.А., Яковлева А.В. Распространение и особенности роста моллюсков Dreissena polymorpha и Dreissena bugensis в Куйбышевском и Нижнекамском водохранилищах // Дрейссениды: эволюция, систематика, экология: Матер. Международ. школы-конф. Борок, 2008. С. 157–161.

I.V. Pozdeev

Boundary of Dreissena polymorpha (Pallas) Range in the Kama River Basin.

State Science Relation Institute of Lake and River Fishery, Perm Department, 614002 Perm, ul. Chernyshevskogo, 3, Russia

Dreissena polymorpha distribution in northeast of the Caspian Sea basin is limited to N 59°37' in the north, N 54°00' in the south and E 57°10' in the east and E 49°03' in the west. Currently, Zebra mussel range is continuous along rivers Kama, Belaya and Ufa. There are isolated populations in floodplains of rivers Belaya and Vyatka.

Keywords: Zebra mussel, range, water courses.

В.Р. Микряков, В.М. Степанова, Г.А. Виноградов

Влияние ионов NH4+ и дефицита Ca2+ на субпопуляции лимфоцитов карпа Cyprinus carpio L.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
е-mail: mvr@ibiw.yaroslavl.ru

Изучен характер изменения численности Т-, В- и Д-субпопуляций лимфоцитов карпа Cyprinus carpio L., содержавшегося в воде с добавлением NH4+ (1.5 и 2.5 ммоль/л) в течение 45 сут и в бескальциевой среде (30 и 90 сут). Показано, что карпы на воздействующие факторы реагировали снижением содержания Т- и Д-лимфоцитов. Количество В-клеток существенных изменений не претерпевало.

Ключевые слова: загрязнение, ионы NH4+, Ca2+, рыба, иммунная система, Т-, В-, Д-лимфоциты.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алабастер Д., Ллойд Р. Критерии качества воды для пресноводных рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1984. 344 с.
2. Балабанова Л.В. Влияние аммония и декальцинации среды на ультраструктуру гранулоцитов карпа (Cyprinus carpio L.) // Цитология. 1998. Т. 40. № 2/3. С. 144–146.
3. Болезни рыб. Справочник. М.: Агропромиздат, 1989. 288 с.
4. Виноградов Г.А. Влияние ионов аммония на минеральный обмен у пресноводных рыб и ракообразных // Влияние загрязняющих веществ на водные организмы и экологические системы: Матер. симп. Харьков, 1988. C. 146–159.
5. Виноградов Г.А. Процессы ионной регуляции у пресноводных рыб и беспозвоночных. М.: Наука, 2000. 216 с.
6. Гришина Т.И., Мюллер С. Одновременное выявление Т-, В- и D-розеткообразующих лимфоцитов и нулевых клеток человека // Бюл. эксп. биол. мед. 1978. № 4. С. 503–506.
7. Кондратьева И.А., Киташова А.А., Ланге М.А. Современные представления об иммунной системе рыб // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 16: Биология. 2001. № 4. C. 11–20.
8. Лебедев К.А., Панякина И.Д. Иммунная недостаточность (выявление и лечение). Нижний Новгород: Изд-во Нижегород. мед. акад., 2003. 443 с.
9. Микряков В.Р. Закономерности формирования приобретенного иммунитета у рыб. Рыбинск: Ин-т биол. внутр. вод РАН, 1991. 153 с.
10. Петров Р.В., Хаитов Р.М., Атауллаханов Р.И. Иммуногенетика и искусственные антигены. М.: Медицина, 1983. 254 с.
11. Романенко В.Д., Арсон О.К., Соломотина В.Д. Кальций и фосфор в жизнедеятельности гидробионтов. Киев: Наук. думка, 1982. 151 с.
12. Степанова В.М., Микряков В.Р. Использование метода Мендеса для изучения субпопуляций лимфоцитов карпа (Cyprinus carpio L.) // Биология внутр. вод. 2002. № 3. С.84–87.
13. Hurvitz A., Bercovier H., Van Rijn J. Effect of ammonia on the survival and immune response of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) vaccinated against Striptococcus iniae // Fish, Shellfish immunol. 1997. V. 7. № 1. P. 45–53.
14. Shaperclaus W. Fishikrankheiten. Berlin: Acad.-Verlag, 1979. T. 2. 1889 p.
15. Van Muiswinkel W., Vervoorn-Van Der Wal B. The immune system of fish // Fish Diseases and Disorders. 2006. V. 1. P. 678–701.

V.R. Mikryakov, V.M. Stepanova, G.A. Vinogradov

The Effect of Ammonium and Deficiency of Calcium on Lymphocyte Subpopulations of Carp (Cyprinus carpio L.).

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

Studies were conducted on lymphocyte subpopulations of carp after 45 days exposure to NH4+ solutions (concentrations of 1.5 and 2.5 mmol/l) and after 30 and 90 days exposure to calcium free water. It was shown that a relative number of T- and D-lymphocytes decreased in the both experiments. The number of B- lymphocytes didn't differ from the control in the most cases while sometimes it increased.

Keywords: pollution, ions NH4+, Ca2+, fish, immune system, T-, B-, D-lymphocytes.

© 2008-2017 ИБВВ РАН

Написать вебмастеру

Яндекс цитирования Рейтинг@Mail.ru Яндекс.Метрика