RUS ENG

Журнал "Биология внутренних вод"

№ 2 за 2011 год

Биология, морфология и систематика гидробионтов

А.А. Мыльников, А.П. Мыльников

Строение клетки хищного жгутиконосца Metromonas simplex Larsen et Patterson, 1990 (Cercozoa).

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: mylnikov@ibiw.yaroslavl.ru

Изучено ультратонкое строение морского хищного жгутиконосца Metromonas simplex Larsen et Patterson. Клетка окружена малоконтрастным волокнистым слоем, состоящим из тонких ворсинок, покрытых двухслойной тонкой мембраной и наружным слоем тонких коротких волокон. Ниже этих слоев располагается плазмалемма. Хищник поедает клетки жертв целиком (бодонид или хризомонад). Цитостом в виде клеточного кармана не найден. Длинный жгутик несет очень тонкие мастигонемы (волоски) длиной 0.8–1.0 мкм, короткий жгутик голый и редуцирован. Переходная зона жгутиков не содержит спирали или других дополнительных элементов. Поперечная пластинка локализована выше клеточной поверхности. Корешковая система жгутиков упрощена и насчитывает одну ленту микротрубочек, которая начинается вблизи кинетосом. Последние лежат параллельно друг другу и связаны фиброзными мостиками. Пузырьковидное ядро, аппарат Гольджи и эндоплазматический ретикулум имеют обычное строение. Овальные митохондрии размером 0.6 × 2.5 мкм, содержат пластинчатые кристы. В цитоплазме обнаружены цилиндрические экструсомы (трихоцисты) длиной 1.0–1.4 мкм и диаметром 0.12–0.08 мкм. Трихоцисты имеют колесовидную структуру, содержащую 13 спиц, заметных на поперечных срезах. Сократительная вакуоль отсутствует. Обсуждено сходство M. simplex с Metopion fluens Larsen et Patterson, криотекомонадами и другими хищными жгутиконосцами.

Ключевые слова: Metromonas simplex, ультраструктура, хищничество, криомонадиды.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Карпов С.А. Строение клетки протистов: Учебное пособие. Спб.: ТЕССА, 2001. 384 с.
2. Мыльников А.П. Биология и ультраструктура амебоидных жгутиконосцев Cercomonadida ord. n. // Зоол. журн. 1986. Т. 65. Вып. 5. С. 683–692.
3. Мыльников А.П. Строение экструсом некоторых жгутиконосцев // Цитология. 1988. Т. 30. № 12. С. 1402–1408.
4. Мыльников А.П. Особенности ультраструктуры бесцветного жгутиконосца Heteromita sp. // Цитология. 1990. Т. 32. № 6. С. 567–571.
5. Мыльников А.П., Мыльников А.А. Строение стрекательных органелл альвеолятных и других гетеротрофных жгутиконосцев // Цитология. 2008. Т. 50. № 5. С. 406–412.
6. Мыльников А.П., Мыльникова З.М., Цветков А.И. Ультраструктура хищного морского жгутиконосца Metopion fluens // Цитология. 1999. Т. 41. № 7. С. 581–585.
7. Bass D., Moreira D., López-García L. et al. Polyubiquitin Insertions and the Phylogeny of Cercozoa and Rhizaria // Protist. 2005. V. 156. P. 149–161.
8. Brugerolle G., Patterson D.J. A cytological study of Aulacomonas submarina Skuja 1939, a heterotrophic flagellate with a novel ultrastructural identity // Eur. J. Protistol. 1990. V. 25. № 3. P. 191–199.
9. Clay B., Kugrens P. Systematics of the enigmatic Kathablepharids, including EM characterization of the type species, Kathablepharis phoenikoston, and new observations on K. remigera comb. nov. // Protist. 1999. V. 150. P. 43–59.
10. Foissner W., Blatterer H., Foissner I. The Hemimastigophora (Hemimastix amphikineta nov. gen., nov. spec.), a new protistan phylum from Gondwanian soils // Eur. J. Protistol. 1988. V. 23. P. 361–383.
11. Hausmann K. Extrusive organelles in protists // Int. Rev. Cytol. 1978. V. 52. P. 197–276.
12. Hoppenrath M., Leander B.S. Dinoflagellate, Euglenid or Cercomonad? The ultrastructure and Molecular Phylogenetic Position of Protaspis grandis n. sp. // J. Euk. Microbiol. 2006. V. 53. P. 327–342.
13. Larsen J., Patterson D.J. Some flagellates (Protista) from tropical marine sediments // J. Nat. Hist. 1990. V. 24. P. 801–937.
14. Patterson D.J., Brugerolle G. The ultrastructural identity of Stephanopogon apogon and the relatedness of the genus to other kinds of protests // Eur. J. Protistol. 1988. V. 23. P. 279–290.
15. Thomsen H.A., Buck K.R., Bolt P.A., Garrison D.L. Fine structure and biology of Cryothecomonas gen. nov. (Protista incertae sedis) from the ice biota // Can. J. Zool. 1991. V. 69. P. 1048–1070.
16. Thomsen H.A., Larsen J. The ultrastructure of Commation gen. nov. (stramenopiles incertae sedis), a genus of heterotrophic nanoplanktonic flagellates from antarctic waters // Eur. J. Protistol. 1993. V. 29. P. 462–477.
17. Vørs N. Discocelis saleuta gen. nov. et sp. nov. (Protista incertae sedis) // Eur. J. Protistol. 1988. V. 23. P. 297–308.

A.A. Myl'nikov, A.P. Myl'nikov

The Ultrastructure of Marine Carnivorous Flagellate Metromonas simplex Larsen et Patterson, 1990 (Cercozoa).

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The ultrafine structure of marine carnivorous flagellate Metromonas simplex has been investigated. The cell is covered by slightly contrast fibrous layer which is composed of the thin hairs covered with bilayered thin membrane and external layer of thin short fibres. The plasmalemma lies beneath these layers. The predator captures the whole cell of the prey, normally bodonids, or chrysomonads. A cytostome as a cell pocket has not been found. Long flagellum bears very thin mastigonemes (hairs) of 0.8–1.0 mkm in length, short flagellum is naked and reduced in length. The transitional zone does not contain the spiral or any other additional elements. The transversal plate is located upper the cell surface. The flagellar root system is very simple and has at least one microtubular band of two microtubules, which originates near the kinetosomes. The latter are approximately parallel to each other and interconnected with fibrous bridges. The vesicular nucleus, Golgi apparatus and endoplasmic reticulum are of common structure. Oval mitochondria of 0.6 × 2.5 mkm contain lamellar cristae. The cylindrical extrusomes (trichocysts) are 1.0–1.4 mkm in length and 0.12–0.08 mkm in diameter. Trichocysts have wheel shaped structure with 13 spokes visible in cross sections. Contractile vacuole is absent. The resemblance of M. simplex with Metopion fluens, cryothecomonads and other carnivorous flagellates is discussed.

Keywords: Metromonas simplex, ultrastructure, predation, cryomonadids.

Водная микробиология

П.П. Уморин, Н.А. Лаптева

Влияние простейших на окисление сероводорода фототрофными бактериями.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: upp@ibiw.yarosalvl.ru

Проведены эксперименты на установке, позволяющей имитировать условия летней стагнации природных водоемов. На основании результатов исследования можно утверждать, что анаэробные инфузории и жгутиконосцы способны стимулировать фотосинтез фототрофных зеленых бактерий, что способствуeт интенсивному окислению сероводорода серобактериями в средах, дефицитных по фосфору. Полученные результаты способствуют пониманию роли отдельных организмов и их взаимоотношений в водных экосистемах.

Ключевые слова: анаэробные инфузории и жгутиконосцы, фототрофные зеленые бактерии, окисление сероводорода, фосфор.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Иванов М.В., Русанов И.И., Пименов Н.В. и др. Микробные процессы углерода и серы в озере Могильном // Микробиология. 2001. Т. 70. № 5. С. 675–686.
2. Кузнецов С.И., Дубинина Г.А. Методы изучения водных микроорганизмов. М.: Наука, 1989. 285 с.
3. Резников А.А., Муликовская Е.П., Соколов И.Ю. Методы анализа природных вод. М.: Геологоиздат, 1963. 403 с.
4. Уморин П.П., Лаптева Н.А. Изучение взаимоотношений фототрофных бактерий и инфузорий в экспериментальных условиях // Биология внутр. вод. 2006. № 4. С. 29–36.
5. Bryanskaya A.V., Namsaraev B.B., Kalashnikova O.D. et al. Biogeochemical Processes in the Algal Bacterial Mats of the Urinskii Alkaline Hot Spring // Microbiology. 2006. T. 75. № 4. P. 94–99.
6. Deyer B.D., Gaju N., Pedros-Alio C. et al. Ciliates from a fresh-water sulfuretum // Biosystems. 1986. V. 19. P. 127–135.
7. Fenchel Т., Riedl R.J. The sulphide system: a new biotic community underneath the oxidized layer of marine sand bottoms // Mar. Biol. 1970. V. 7. P. 255–258.
8. Gorlenko V.M., Mikheev P.V., Rusanov N.V. et al. Properties of photosynthetic bacteria from the Black Sea chemocline zone // Microbiology. 2005. V. 74. № 2. P. 201–209.
9. Johannes R.E. Influence of Marine Protozoa on Nutrient Regeneration // Limnol., Oceanogr. 1965. V. 10. № 3. P. 434–442.
10. Lunina O.N., Bryantseva I.A., Akimov V.N. et al. Seasonal Changes in the Structure of the Anoxygenic Photosynthetic Bacterial Community in Lake Shunet, Khakassia // Microbiology. 2007. V. 76. № 3. P. 416–428.
11. Lunina O.N., Gorlenko V.M., Solov’eva O.A. et al. Seasonal Changes in the Structure of the Anoxygenic Phototrophic Bacterial Community in Lake Mogilnoe, a Relict Lake on Kil’din Island in the Barents Sea // Microbiology. 2004. V. 73. № 3. P. 81–88.
12. Lüthy L., Fritz M., Bachofen R. In Situ Determination of Sulfide Turnover Rates in a Meromictic Alpine Lake // Appl. Environ. Microbiol. 2000. V. 66. P. 712–717.
13. Massana R., Pedros-Alio C. Role of Anaerobic Ciliates in Planktonic Food Webs: Abundance, Feeding, and Impact on Bacteria in the Field // Environ. Microbiol. 1994. V. 60. P. 1325–1334.
14. Massana R., Stumm C.K., Pedros-Alio C. Effects of Temperature, Sulfide, and Food Abundance on Growth and Feeding of Anaerobic Ciliates // Environ. Microbiol. 1994. V. 60. № 4. P. 1317–1324.
15. Overmann J., Beatty L.T., Hall K.J. Purple sulfur bacteria control the growth of aerobic heterotrophic bacterioplankton in a meromictic salt Lake // Appl. Environ. Microbiol. 1996. V. 62. P. 3251–3258.
16. Pedros-Alio C. Anaerobic protozoa and their growth in biomethanation systems // Biodegradation. 2008. V. 19. № 2. P. 179–185.
17. Toolan Tara T., Wehr J.D., Findlay S. Inorganic Phosphorus Stimulation of Bacterioplankton Production in a Meso-Eutrophic Lake // Appl. Environ. Microbiol. 1991. V. 57. P. 2074–2078.
18. Turk E.L. Release of Bacterial DNA by Marine Nanoflagellates, an Intermediate Step in Phosphorus Regeneration // Appl. Environ. Microbiol. 2002. V. 58. P. 3744–3749.
19. Vila X., Guyoneaud R., Xavier P. et al. Green sulfur bacteria from hypersaline Chiprana Lake (Monegros, Spain): habitat description and phylogenetic relationship of isolated strains // Photosynthesis Res. 2002. V. 71. P. 165–172.

P.P. Umorin, N.A. Lapteva

Influence of Protozoa on Hуdrogen Sulphide Oxidation by Phototrophic Bacteria.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

Experiments have been performed using an installation, allowing to simulate conditions of summer stagnation in natural water-bodies. Basing on the experimental results one can suggest, that anaerobic cilliates and flagellates are capable of stimulating hydrogen sulphide oxidation and thus photosynthesis of phototrophic green bacteria in phosphorus deficient media. Limitation of the hydrobiological processes by phosphorus (as well as by nitrogen) is the most widely spread in natural waters, and therefore our results can contribute to understanding of the role of individual organisms and their relationships in aquatic ecosystems.

Keywords: anaerobic cilliates and flagellates, phototrophic green bacteria, hydrogen sulphide oxidation, phosphorus.

Фитопланктон, фитобентос, фитоперифитон

И.В. Кожевников, Н.А. Кожевникова

Таксономический состав цианобактерий Nostocales, выделенных из водоемов бассейна реки Енисей.

Сибирский федеральный университет, 660041 Красноярск, пр. Свободный, 79
e-mail: ikozhevnikov@inbox.ru

Проведены таксономические исследования 21 штамма цианобактерий из родов Anabaena, Cylindrospermum, Mojavia, Nostoc, Trichormus и Wollea (Nostocales, Cyanobacteria), выделенных из альгоценозов водоемов бассейна р. Енисей (Восточная Сибирь, Россия). Выявлены новые для региона таксоны. Anabaena sedovii, A. zinserlingii, Cylindrospermum stagnale f. tortuosum, Nostoc kihlmani, Trichormus variabilis f. tenuis и Wollea saccata ранее в культуре не описаны. Показано, что основные таксономические признаки (расположение акинет и гетероцист, ширина вегетативных клеток, гетероцист и акинет и форма терминальных клеток) при культивировании в лабораторных условиях соответствуют диагнозам идентифицированных таксонов.

Ключевые слова: цианобактерии, таксономия, культивируемые штаммы, Nostocales (Cyanobacteria), река Енисей.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Баринова С.С., Медведева Л.А., Анисимова О.В. Биоразнообразие водорослей-индикаторов окружающей среды. Тель-Авив: Изд-во Pilies Studio, 2006. 498 с.
2. Бондаренко Н.А., Щур Л.А. Cyanophyta планктона небольших водоемов Восточной Сибири (Россия) // Альгология. 2007. Т. 17. № 1. С. 26–41.
3. Голлербах М.М., Косинская Е.К., Полянский В.И. Определитель пресноводных водорослей СССР. Вып. 2: Синезеленые водоросли. М.: Советская наука, 1953. 652 с.
4. Еленкин А.А. Синезеленые водоросли СССР. Общая часть. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1936. 680 c.
5. Еленкин А.А. Синезеленые водоросли СССР. Специальная часть. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1938. Вып. 1. 984 c.
6. Кожевников И.В., Кожевникова Н.А., Скоробогатько Н.Е. Изучение потенциальной микроцистин токсичности сине-зеленых водорослей Красноярского водохранилища // Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы. Борок: Ярославский печатный двор, 2008. Ч. 3. С. 47–51.
7. Кондратьева Н.В. Морфогенез и основные пути эволюции гормогониевых водорослей. Киев: Наук. думка, 1975. 302 с.
8. Усачев П.И. Материалы к флоре водорослей реки Енисея // Тр. Сибир. науч. рыбохоз. станции. 1928. Т. 3. Вып. 2. 87 c.
9. Beard S.J., Handley B.A., Hayes P.K. et al. The diversity of gas vesicle genes in Planktothrix rubescens from Lake Zürich // Microbiology. 1999. V. 145. P. 2757–2768.
10. Castenholz R.W. Oxygenic photosynthetic bacteria // Bergey's Manual of Systematic Bacteriology. N.Y.: Springer, 2001. V. 1. P. 473–599.
11. Geitler L. Cyanophyceae // Kryptogamen-Flora von Deutschland, Österreich und der Schweiz. Leipzig: Acad. Verlagsges, 1932. Bd 14. 1196 S.
12. Gugger M., Lyra C., Henriksen P. et al. Phylogenetic comparison of the cyanobacterial genera Anabaena and Aphanizomenon // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2002. V. 52. P. 1867–1880.
13. Hindák F. Photographic Atlas of the Microscopic Freshwater Cyanobacteria. Bratislava: Veda, 2001. 127 p.
14. Komárek J., Anagnostidis K. Modern approach to the classification system of cyanophytes 4-Nostocales // Arch. Hydrobiol. Suppl. 1989. V. 82. P. 247–345.
15. Komárek J., Komárková J., Kling H. Filamentous Cyanobacteria // Freshwater algae of North America: Ecology and classification. San Diego: Acad. Press, 2003. P. 117–196.
16. Komárek J., Zapomělová E. Planktic morphospecies of the cyanobacterial genus Anabaena = subg. Dolichospermum – 1. part: coiled types // Fottea. 2007. V. 7. № 1. P. 1–31.
17. Komárek J., Zapomělová E. Planktic morphospecies of the cyanobacterial genus Anabaena = subg. Dolichospermum – 2. part: straight types // Fottea. 2008. V. 8. № 1. P. 1–14.
18. Kozhevnikov I.V., Kozhevnikova N.A. Observations on morphology of Anabaena sedovii Kossinsk. (Nostocales, Cyanobacteria) isolated from the Yenissei River (East Siberia, Russia) // Fottea. 2009. V. 9. № 1. P. 49–51.
19. Lehtimäki J., Lyra C., Suomalainen S. et al. Characterization of Nodularia strain, cyanobacteria from brackish waters, by genotypic and phenotypic methods // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2000. V. 50. P. 1043–1053.
20. Li R., Watanabe M., Watanabe M.M. Akinete formation in planktonic Anabaena spp. (Cyanobacteria) by treatment with low temperature // J. Phycol. 1997. V. 33. P. 576–584.
21. McCurdy H.D., Hodgson W.F. Method for the selective enumeration of blue-green bacteria in water // Appl. Microbiol. 1973. V. 26. № 5. P. 682–686.
22. Oren A. A proposal for further integration of the cyanobacteria under the Bacteriological Code // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2004. V. 54. P. 1895–1902.
23. Rajaniemi P., Hrouzek P., Kaštovská K. et al. Phylogenetic and morphological evoluation of the genera Anabaena, Aphanizomenon, Trichormus and Nostoc (Nostocales, Cyanobateria) // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2005. V. 55. P. 11–26.
24. Řeháková K., Johansen J.R., Casamatta D.A. et al. Morphological and molecular characterization of selected desert soil cyanobacteria: three species new to science including Mojavia pulchra gen. et sp. nov. // Phycologia. 2007. V. 46. № 5. P. 481–502.
25. Rippka R., Deruelles J., Waterbury J.B. et al. Generic assignments, strain histories and properties of pure cultures of cyanobacteria // J. Gen. Microbiol. 1979. V. 111. P. 1–61.
26. Stulp B.K., Stam W.T. General morphology and akinete germination of a number of Anabaena strains (Cyanophyceae) in culture // Arch. Hydrobiol. Suppl. 1982. V. 63. P. 35–52.
27. Stulp B.K., Stam W.T. Growth and morphology of Anabaena strains (Cyanophyceae, Cyanobacteria) in cultures under different salinities // J. Brit. Phycol. 1984. V. 19. P. 281–286.
28. Wacklin P., Hoffman L., Komárek J. Nomenclatural validation of the genetically revised cyanobacterial genus Dolichospermum (Ralfs ex Born. et Flah.) comb. nov. // Fottea. 2009. V. 9. № 1. P. 59–64.
29. Willame R., Boutte C., Grubisic S. et al. Morphological and molecular characterization of planktonic cyanobacteria from Belgium and Luxembourg // J. Phycol. 2006. V. 42. P. 1312–1332.

I.V. Kozhevnikov, N.A. Kozhevnikova

Taxonomic Studies of Some Cultured Strains of Cyanobacteria (Nostocales) Isolated From the Yenisei River Basin.

Siberian Federal University, 660041 Krasnoyarsk, Svobodny Av., 79, Russia

Twenty one strains of cyanobacteria were observed and described according to morphological features on cultures during few months after isolation from pelagic or littoral planktonic algological samples of the Yenisei River basin (East Siberia, Russia). These isolates belong to the following genera of the order Nostocales (Cyanobacteria): Anabaena, Cylindrospermum, Mojavia, Nostoc, Trichormus and Wollea. For the first time the new species is recorded in freshwater ecosystems of the Yenisei River basin. To date, Anabaena sedovii, Cylindrospermum stagnale f. tortuosum, Nostoc kihlmani, Trichormus variabilis f. tenuis and Wollea saccata were observed only in natural populations, but not in culture.

Keywords: cyanobacteria, taxonomy, cultured strains, Nostocales (Cyanobacteria), the Yenisei River.

Зоопланктон, зообентос, зооперифитон

Н.Г. Косолапова, Д.Б. Косолапов

Особенности распределения гетеротрофных жгутиконосцев и бактерий в ацидных и нейтральных озерах Карелии.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
е-mail: kng@ibiw.yaroslavl.ru

В шести озерах Карелии, различающихся значениями рН, концентрацией и качественным составом органических веществ и степенью антропогенного воздействия, изучены обилие, таксономическая и трофическая структуры сообщества планктонных гетеротрофных жгутиконосцев, а также количественное распределение их главных пищевых объектов – бактерий. Обнаружено 38 видов и форм бесцветных флагеллят из 7 отрядов и группы неопределенного систематического положения, большинство из которых относится к трофической группе бактериодетритофагов. Наименьшее количество и разнообразие гетеротрофных жгутиконосцев зарегистрировано в светловодных и темноводных озерах с низкими значениями рН воды и наибольшее – в загрязненной Кондопожской губе Онежского озера при максимальном развитии бактериопланктона.

Ключевые слова: гетеротрофные жгутиконосцы, численность, видовой состав, бактерии, ацидные и нейтральные озера.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Жуков Б.Ф. Бесцветные жгутиконосцы // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 133–135.
2. Золотарев В.А. Микрозооперифитон некоторых водоемов Карелии. 1. Видовой состав // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1985. № 68. С. 19–22.
3. Комулайнен С.Ф., Чекрыжева Т.А., Вислянская И.Г. Альгофлора озер и рек Карелии. Таксономический состав и экология. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2006. 81 с.
4. Косолапова Н.Г. Таксономическая структура и количественное развитие гетеротрофных жгутиконосцев в планктоне малых пресных водоемов // Биология внутр. вод. 2007. № 4. С. 31–37.
5. Куликова Т.П. Зоопланктон водных объектов бассейна Онежского озера. Петрозаводск: Карельск. науч. центр РАН, 2007. 223 с.
6. Литвиненко А.В., Филатов Н.Н., Лозовик П.А., Карпенко В.А. Региональная экология: эколого-экономические основы рационального использования водных ресурсов Карелии // Инженер. экология. 1998. № 6. С. 3–13.
7. Лозовик П.А., Морозов А.К., Зобков М.Б. и др. Аллохтонное и автохтонное органическое вещество в поверхностных водах Карелии // Вод. ресурсы. 2007. Т. 34. № 2. С. 225–237.
8. Песенко Ю.А. Принципы и методы количественного анализа в фаунистических исследованиях. М.: Наука, 1982. 287 с.
9. Тимакова Т.М. Функционирование бактериопланктона в ацидофицированных водоемах Карелии // Гидробиол. журн. 1999. Т. 35. № 3. С. 40–48.
10. Тихоненков Д.В. Фауна, морфология и структура сообществ свободноживущих гетеротрофных жгутиконосцев в разнотипных пресноводных и морских биотопах: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Борок, 2006. 24 с.
11. Azam F., Fenchel T., Field J.G. et al. The ecological role of water-column microbes in the sea // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1983. V. 10. P. 257–263.
12. Caron D.A. Technique for enumeration of heterotrophic and phototrophic nanoplankton, using epifluorescence microscopy, and comparison with other procedures // Appl. Environ. Microbiol. 1983. V. 46. № 34. P. 491–498.
13. Fenchel T. The ecology of heterotrophic microflagellates // Adv. Microb. Ecol. 1986. V. 9. P. 57–97.
14. Graham J.M., Kent A.D., Lauster G.H. et al. Seasonal dynamics of phytoplankton and planktonic protozoan communities in a northern temperate humic lake: diversity in a dinoflagellate dominated system // Microb. Ecol. 2004. V. 48. P. 528–540.
15. Kalinovska K. Bacteria, nanoflagellates and ciliates as components of the microbial loop in three lakes of different trophic status // Pol. J. Ecol. 2004. V. 52. № 1. P. 19–34.
16. Kankaala P., Arvola L., Tulonen T., Ojala A. Carbon budget for the pelagic food web of the euphotic zone in a boreal lake (Lake Pääjärvi) // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1996. V. 53. P. 1663–1674.
17. Laybourn-Parry J., Parry J. Flagellates and the microbial loop // The Flagellates, Unity, Diversity and Evolution. L.; N.Y.: Taylor and Francis, 2000. P. 216–239.
18. Meier B.G., Reck E. Nanoflagellate and ciliate grazing on bacteria // Microbial Ecology of Lake Plußsee. N.Y.: Springer-Verlag, 1994. P. 251–269.
19. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol., Oceanogr. 1980. V. 25. № 4. P. 943–948.
20. Porter K.G., Paerl H., Hodson R. et al. Microbial interactions in lake food webs // Complex interactions in lake communities. N.Y.: Springer-Verlag, 1988. P. 209–227.
21. Salonen K., Jokinen S. Flagellate grazing on bacteria in a small dystrophic lake // Hydrobiologia. 1988. V. 161. P. 203–209.
22. Salonen K., Kankaala P., Tulonen T. et al. Planktonic food chains of a highly humic lake // Hydrobiologia. 1992. V. 229. P. 143–157.
23. Šimek K., Kojecka P., Nedoma J. et al. Shifts in bacterial community composition associated with different microzooplankton size fractions in a eutrophic reservoir // Limnol., Oceanogr. 1999. V. 44. № 7. P. 1634–1644.
24. Tranvik L.J. Bacterioplankton growth on fractions of dissolved organic carbon of differential molecular weights from humic and clear waters // Appl. Environ. Microbiol. 1990. V. 56. P. 1672–1677.
25. Tranvik L.J. Allocthonous dissolved organic matter as an energy source for pelagic bacteria and the concept of the microbial loop // Hydrobiologia. 1992. V. 229. P. 107–114.
26. Vørs N. Heterotrophic amoebae, flagellates and Heliozoa from the Tvärminne Area, Gulf of Finland, in 1988–1990 // Ophelia. 1992. V. 36. № 1. P. 1–109.
27. Weisse T., Müller H. Significance of heterotrophic nanoflagellates and ciliates in large lakes: evidence from lake Constance // Large Lakes: ecological structure and function. N.Y.: Springer- Verlag, 1990. P. 540–555.
28. Weisse T., Stockner J.G. Eutrophication: the role of microbial food webs // Strategies for lake ecosystems beyond 2000. Mem. Ist. ital. Idrobiol. 1993. V. 52. P. 133–150.

N.G. Kosolapova, D.B. Kosolapov

Patterns of Distribution of Heterotrophic Flagellates and Bacteria in Acidic and Neutral Karelian Lakes.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

Abundance, taxonomic and trophic structure of community of planktonic heterotrophic nanoflagellates, as well as quantitative distribution of their main food – bacteria were studied in Karelian lakes differing in рН values, concentration and composition of organic substances and level of anthropogenic impact. There were found 38 species and forms of flagellates from 7 groups and the group of uncertain taxonomic position. The majority of them belong to the trophic group of bacterio-detritusphages. The abundance and diversity of heterotrophic flagellates were minimal in clearwater and brownwater lakes with low рН values and maximal in the polluted Kondopozhsky Bay of Onega Lake where the bacterioplankton abundance was also maximal.

Keywords: heterotrophic nanoflagellates, abundance, diversity, bacteria, acidic and neutral Karelian lakes.

В.Н. Столбунова

Зоопланктон зарослей макрофитов в устьевой области малой реки.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: stolbunova@ibiw.yaroslavl.ru

Изучено видовое разнообразие и количественные характеристики зоопланктона зарослей макрофитов в нижнем течении р. Ильдь – притока Рыбинского водохранилища, в открытом плесе водохранилища и зоне контакта их вод. Наибольшего развития зоопланктон достигает в зарастающем высшей водной растительностью прибрежье в пределах зоны подпора речных вод, что указывает на наличие здесь краевого эффекта, характерного для экотона.

Ключевые слова: малая река, прибрежная зона, макрофиты, водохранилище, зоопланктон, качественные и количественные характеристики, экотон.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алекин О.А. Основы гидрохимии. Л.: Гидрометеоиздат, 1970. 444 с.
2. Андроникова И.Н., Распопов И.М. Градиенты количественных показателей сообществ макрофитов и зоопланктона в условиях краевых структур (на примере литоральной зоны Ладожского озера) // Проблемы изучения краевых структур биоценозов: Матер. 2-й Всерос. науч. конф. Саратов, 2008. С. 10–14.
3. Жаворонкова О.Д. Сравнение фауны водных клещей малых рек Латки и Ильди // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана: Лекции и матер. докл. Всерос. шк.-конф. Борок, 2008. С. 141–145.
4. Законнова А.В., Литвинов А.С. Геоморфология, почвенный и растительный покров // Экологическое состояние малых рек Верхнего Поволжья. М.: Наука, 2003. С. 5–9.
5. Зимбалевская Л.Н. Фитофильные беспозвоночные равнинных рек и водохранилищ. Киев: Наук. думка, 1981. 216 с.
6. Коргина Е.М. Особенности структуры и динамики плоских червей (Turbellaria) малой реки // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана: Лекции и матер. докл. Всерос. шк.-конф. Борок, 2008. С. 166–167.
7. Крылов А.В. Зоопланктон равнинных малых рек. М.: Наука, 2005. 263 с.
8. Крылов А.В., Малин М.И., Цветков А.И. и др. Краевой эффект в зоне подпора вод малого притока равнинного водохранилища // Проблемы изучения краевых структур биоценозов: Матер. 2-й Всерос. науч. конф. Саратов, 2008. С. 50–54.
9. Крылов А.В., Цветков А.И., Малин М.И. и др. Сообщества гидробионтов и физико-химические параметры устьевой области притока равнинного водохранилища // Биология внутр. вод. 2010. № 1. С. 65–75.
10. Мережко А.И. Структура и характер взаимосвязей в основных компонентах экосистем малых рек // Гидробиол. журн. 1985. Т. 21. № 6. С. 3–8.
11. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
12. Мордухай-Болтовской Ф.Д. Фауна беспозвоночных прибрежной зоны Рыбинского водохранилища (общий обзор) // Природные ресурсы Молого-Шекснинской низины. Рыбинское водохранилище. Вологда: Вологод. отд. Северо-Запад. книж. изд-ва, 1974. Ч. 3. С. 158–195.
13. Одум Ю. Основы экологии. М.: Мир, 1975. 740 c. (Odum E.P. Fundamentals of ecology. Philadelphia; L.; Toronto: W.B. Saunders Company, 1971).
14. Отюкова Н.Г., Цельмович О.Л., Крылов А.В. Влияние количества атмосферных осадков и зарегулирования стока на химический состав воды и зоопланктон малой реки // Биология внутр. вод. 2007. № 3. С. 48–55.
15. Папченков В.Г., Бобров А.А. Оценка экологического состояния малых рек Ярославской области по высшей водной растительности // Экологическое состояние малых рек Верхнего Поволжья. М.: Наука, 2003. С. 291–296.
16. Перова С.Н. Структура макробентоса реки Ильдь // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана: Лекции и матер. докл. Всерос. шк.-конф. Борок, 2008. С. 226–228.
17. Проблемы изучения краевых структур биоценозов: Матер. 2-й Всерос. науч. конф. Саратов, 2008. 246 с.
18. Тихоненков Д.В. Структура сообществ и количественное обилие планктонных гетеротрофных жгутиконосцев (Protista) реки Ильдь (Ярославская область) // Экосистемы малых рек: биоразнообразие, экология, охрана: Лекции и матер. докл. Всерос. шк.-конф. Борок, 2008. С. 292–294.
19. Харченко Т.А. Концепция экотонов в гидробиологии // Гидробиол. журн. 1991. Т. 27. № 4. С. 3–9.
20. Цельмович О.Л., Отюкова Н.Г. Гидрохимическая характеристика р. Ильдь // Экологическое состояние малых рек Верхнего Поволжья. М.: Наука, 2003. С. 51–60.
21. Экосистема малой реки в изменяющихся условиях среды. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2007. 372 с.
22. Wilhm J.L. Use of biomass units in Shannon´s formula // Ecology. 1968. V. 49. № 1. Р. 153–156.

V.N. Stolbunova

Zooplankton of Macrophyte Overgrowths in the Mouth Part of the Rybinsk Reservoir Tributary.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

In the light of the concept of ecotones formed at the boundary of adjacent ecosystems the species diversity and quantitative characteristics of zooplankton in the macrophyte overgrowths were studied for the first time in the downstream part of a small river Ild’, in the open part of the reservoir and in the zone of the contact of their waters. The maximal highest development of zooplankton occurs in the littoral zone overgrown with higher aquatic vegetation in backwaters of the river that testifies to the presence of the marginal effect typical for the ecotone.

Keywords: small river, littoral zone, macrophytes, reservoir, zooplankton, qualitative and quantitative characteristics, ecotone.

А.В. Крылов*, Б. Мендсайхен**, Б. Ганццоож**

Зоопланктон пересыхающего озера Орог (Монголия).

* Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
** Институт геоэкологии академии наук Монголии, 211238 Улан-Бaтор, Баруун Сэлбэ, 13, Монголия
e-mail: krylov@ibiw.yaroslavl.ru

Межгодовые различия показателей зоопланктона пересыхающего оз. Орог зависят от уровня воды и влияния притока. При высоком уровне, когда пастбища максимально приближены к урезу воды, трофический статус озера по структуре зоопланктона соответствует гипертрофным водоемам. При снижении уровня, когда пастбища удалены от уреза воды, а значительную долю водной массы составляют воды притока, структура зоопланктона характеризует озеро как олиготрофный водоем, при пересыхании притока – мезотрофный.

Ключевые слова: озера аридной зоны, структура зоопланктона, уровень воды.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Андроникова И.Н. Структурно-функциональная организация зоопланктона озерных экосистем разных трофических типов. Спб.: Наука, 1996. 189 с.
2. Дгебуадзе Ю.Ю. Экологические закономерности изменчивости роста рыб. М.: Наука, 2001. 276 с.
3. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 240 с.
4. Мяэметс А.Х. Изменения зоопланктона // Антропогенное воздействие на малые озера. Л.: Наука, 1980. С. 54–64.

А.V. Krylov*, B. Mendsaikhan**, B. Gantstsooz**

Zooplankton of intermittent lake Orog (Mongolia).

* Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia
** Institute of Geo-Ecology MAS, 211238 Ulaanbaator, Baruum Selbe-13, Mongolia

The interannual differences in zooplankton indices in an intermittent Lake Orog depend on the water level and the influence of the tributary. At high water level when pastures are close to the shoreline the zooplankton structure corresponds to hypertrophic waterbodies. When the water level drops and pastures are remote from the water edge the water masses in the lake are formed by waters of the tributary. The zooplankton structure characterizes the lake as an oligotrophic waterbody and at drying up of the tributary the lake is considered as a mesotrophic waterbody.

Keywords: lakes of arid zone, zooplankton structure, water level.

Д.В. Барков, Е.А. Курашов

Популяционная характеристика и жизненный цикл байкальского вселенца Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) (Сrustacea: Amphipoda) в Ладожском озере.

Институт озероведения РАН, 196105 Санкт-Петербург, ул. Севастьянова, 9
e-mail: evgeny_kurashov@mail.ru

Исследованы динамика размерно-возрастной и половой структур популяции, особенности размножения и жизненного цикла байкальского вселенца Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) в Ладожском озере. Изученные характеристики имеют черты как сходства, так и отличия от популяций вида из других водоемов. Установлено, что изменения размерно-возрастной структуры популяции G. fasciatus в годовом аспекте происходят под влиянием комплекса факторов внешней среды. Половая структура популяции динамична, но в годичном цикле поддерживается соотношение полов ~ 1:1. Выделено шесть основных периодов выхода молоди. Первостепенное влияние на сроки начала и завершения размножения G. fasciatus оказывает температурный фактор. Масса яиц (в энергетическом эквиваленте ~21.5 кал), отложенных самкой за весь жизненный цикл, составляет ~60% массы тела.

Ключевые слова: Ладожское озеро, Gmelinoides fasciatus, размерно-возрастная структура, половая структура, размножение, жизненный цикл, численность, биомасса.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Базикалова А.Я. Материалы по изучению размножения байкальских амфипод // Изв. АН СССР. 1941. № 3. С. 407–426.
2. Базикалова А.Я. Амфиподы озера Байкал // Тр. Байкальск. лимнол. ст. 1945. Т. 11. 440 с.
3. Барков Д.В. Экология и биология байкальского вселенца Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) и его роль в экосистеме Ладожского озера: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. СПб., 2006. 26 с.
4. Бекман М.Ю. Экология и продукция Micruropus possolkii Sow. и Gmelinoides fasciatus Stebb. // Тр. Лимнол. ин-та. 1962. Т. 2. Ч. 1. С. 141–155.
5. Березина Н.А. Сезонная динамика структуры и плодовитость популяции байкальского бокоплава (Gmelinoides fasciatus, Amphipoda, Crustacea) в зарослевой зоне Невской губы // Зоол. журн. 2005. Т. 84. № 4. С. 411–419.
6. Березина Н.А., Панов В.Е. Популяции амфипод в прибрежных зонах эстуария р. Невы и крупных озер бассейна Балтийского моря // Закономерности гидробиологического режима водоемов разного типа. М.: Науч. мир, 2004. C. 179–189.
7. Вершинин Н.В. Биология и расселение Gmelinoides fasciatus (Stebb.) в условиях Братского водохранилища // Зоол. журн. 1967. Т. 46. № 7. С. 1024–1029.
8. Волков В.В., Потина И.И. Распространение, размеры и плодовитость Gmelinoides fasciatus (Stebb.), акклиматизированного в Горьковском водохранилище // Рыбохозяйственное изучение внутренних водоемов. Л.: ГосНИОРХ, 1977. № 21. С. 18–21.
9. Гигиняк Ю.Г. Изменения калорийности водных беспозвоночных в процессе развития на примере некоторых ракообразных // Энергетические аспекты роста и размножения водных беспозвоночных. Минск: Наука и техника, 1975. С. 141–150.
10. Грезе И.И. Амфиподы Черного моря и их биология. Киев: Наук. думка, 1977. С. 40–141.
11. Камалтынов Р.М., Томилов А.А. Динамика популяции Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) (Crustacea, Amphipoda) в Братском водохранилище // Природные ресурсы Забайкалья и проблемы природопользования: Матер. науч. конф. Чита, 2001. С. 490–492.
12. Кузьмич В.Н., Синицин Г.К. Продуктивность зообентоса озера Котокель // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. 1988. Вып. 279. С. 88–105.
13. Курашов Е.А., Барков Д.В., Анисимов А.А. Роль байкальского вселенца Gmelinoides fasciatus (Stebbing) в формировании литоральных биоценозов о. Валаам (Ладожское озеро) // Биология внутр. вод. 2006. № 1. С. 74–84.
14. Курашов Е.А., Барков Д.В., Русанов А.Г., Барбашова М.А. Роль байкальского вселенца Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) в формировании трансграничного потока вещества и энергии в литоральной зоне Ладожского озера // Проблемы изучения краевых структур биоценозов: Матер. науч. конф. Саратов, 2008. С. 54–58.
15. Матафонов Д.В. Сравнительная экология бокоплавов: Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) и Gammarus lacustris (Sars, 1863) в Ивано-Арахлейских озерах: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Улан-Удэ, 2003. 20 с.
16. Мельник М.М., Михайлов А.Е. Особенности биологии бокоплава Gmelinoides fasciatus (Stebb.) в Псковско-Чудском озере // VIII съезд Гидробиол. о-ва РАН: Тез. докл. Калининград, 2001. T. 2. С. 85.
17. Мицкевич О.И. Эколого-физиологические и продукционные особенности гаммарид, акклиматизируемых в озера северо-запада (на примере Gmelinoides fasciatus Stebb. и Chaetogammarus ischnus Stebb.): Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Л., 1987. 21 с.
18. Мордухай-Болтовской Ф.Д., Чиркова З.Н. О распространении байкальского бокоплава Gmelinoides fasciatus (Stebbing) в Горьковском водохранилище // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1971. № 9. С. 39–41.
19. Панов В.Е. Байкальская эндемичная амфипода Gmelinoides fasciatus Stebb. в Ладожском озере // Докл. РАН. 1994. Т. 336. № 2. С. 279–282.
20. Панов В.Е., Павлов А.М. Методика количественного учета водных беспозвоночных в зарослях камыша и тростника // Гидробиол. журн. 1986. Т. 22. № 6. С. 87–88.
21. Скальская И.А. Структура популяции байкальского бокоплава Gmelinoides fasciatus (Stebb.) в Рыбинском водохранилище // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Спб., 1996. № 99. С. 29–35.
22. Хмелева Н.Н. Закономерности размножения ракообразных. Минск: Наука и техника, 1988. 208 c.
23. Цветкова И.Л. Прибрежные гаммариды северных и дальневосточных морей СССР и сопредельных вод. Л.: Наука, 1975. 256 с.
24. Edmodson W.T. Reproductive rates of Rotifers in natural populations // Mem. Ist. Ital. Hydrobiol. 1960. V. 12. P. 21–77.
25. Koch-Kallnbach M.E., Meijering M.P.D. Duration of instars and praecopulae in Gammarus pulex (Linnaeus, 1758) and Gammarus roeselii Gervais, 1835 under semi-natural conditions // Crustaceana Suppl. 1977. V. 4. P. 119–127.
26. Kurashov E.A., Telesh I.V., Panov V.E. et al. Invertebrate communities associated with macrophytes in Lake Ladoga: effects of environmental factors // Hydrobiologia. 1996. V. 322. P. 49–55.
27. Panov V.E. Establishment of the Baikalian endemic amphipod Gmelinoides fasciatus Stebb. in Lake Ladoga // Hydrobiologia. 1996. V. 322. P. 187–192.
28. Panov V.E., Berezina N.A. Invasion history, biology and impacts of the Baikalian amphipod Gmelinoides fasciatus // Invasive Aquatic Species of Europe – Distribution, Impacts and Management. Dordrecht; The Netherlands: Kluwer Acad. Publ., 2002. P. 96–103.
29. Steele D.H., Steele V.J. The biology of Gammarus (Crustacea, Amphipoda) in the north-western Athlantic. VII. The duration of embryonic develop­ment in the five species at various temperatures // Can. J. Zool. 1973. V. 51. P. 995–999.
30. Welton J.S. Life-history and production of the amphipod Gammarus pulex in a Dorset chalk stream // Freshwater Biol. 1979. V. 9. P. 263–275.

D.V. Barkov, E.А. Kurashov

Population Characteristics and Life Cycle of Baikal Invader Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) (Сrustacea: Amphipoda) in Lake Ladoga.

Institute of Limnology RAS, 196105 St. Petersburg, ul. Sevastyanova, 9, Russia

Dynamics of the size-age structure and sexual structure of the population, features of reproduction and life cycle of the Baikal invader Gmelinoides fasciatus (Stebbing, 1899) in Lake Ladoga have been studied. It is shown, that the studied characteristics have features both of similarity, and difference from populations of this species in other reservoirs. It is found, that the size-age structure of G. fasciatus population in annual aspect can be exposed to certain fluctuations under effect of a complex of environmental factors. The sexual structure of the population of G. fasciatus is dynamical, but this dynamics supports a sex-ratio of approximately 1:1 in a year cycle. During the reproduction period it is possible to indicate 6 periods of hatching. Temperature has been considered the main factor influencing the terms of hatching in G. fasciatus population. The weight of the eggs (the energy equivalent with an average near 21.5 cal) released by the female during the whole life cycle, amounts to 60% of female body weight.

Keywords: Gmelinoides fasciatus, Lake Ladoga, size-age structure, sexual structure, reproduction, life cycle, number, biomass.

Е.Г. Пряничникова, А.В. Тютин, Г.Х. Щербина

Сравнительный анализ структуры поселений двух видов дрейссенид (Mollusca, Dreissenidae) и фауны их эндосимбионтов в верхневолжских водохранилищах.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: pryanik@ibiw.yaroslavl.ru

Приведены результаты исследований структуры поселений двух видов дрейссенид (аборигенной Dreissena polymorpha Pallas, 1771 и быстро расселяющейся D. bugensis Andrusov, 1897) в Горьковском и Рыбинском водохранилищах. Выявлены существенные межвидовые и межпопуляционные различия у моллюсков по основным количественным показателям и фауне эндосимбионтов.

Ключевые слова: моллюски, Dreissena polymorpha, D. bugensis, паразиты.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Антонов П.И. О проникновении двустворчатого моллюска Dreissena bugensis (Andr.) в волжские водохранилища // Экологические проблемы бассейнов крупных рек. Тольятти: Ин-т экологии Волж. бассейна РАН, 1993. С. 52–53.
2. Дрейссена: Систематика, экология, практическое значение. М.: Наука, 1994. 240 с.
3. Куперман Б.И., Жохов А.Е., Попова Л.Б. Паразиты моллюска Dreissena polymorpha (Pallas) бассейна Волги // Паразитология. 1994. Т. 28. Вып. 5. С. 396–402.
4. Литвинов А.С., Рощупко В.Ф. Региональные изменения климата и колебания элементов экосистемы Рыбинского водохранилища // Актуальные проблемы экологии Ярославской области. Ярославль: Верхневолж. отд. Рос. экол. акад., 2005. Т. 1. Вып. 3. С. 55–60.
5. Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. 254 с.
6. Овчинников И.Ф. Дрейссена Рыбинского водохранилища // III экол. конф.: Тез. докл. Киев, 1954. С. 107–109.
7. Орлова М.И., Аракелова Е.С., Комендантов А.Ю. О совместном обитании Dreissena bugensis (Andr.) и Dreissena polymorpha (Pall.) в дельте Волги и на мелководьях Северного Каспия // Тез. докл. юбилейной науч. конф. Астрахань, 1999. С. 67–69.
8. Орлова М.И., Щербина Г.Х. О распространении Dreissena bugensis (Dreissenidae, Bivalvia) в верхневолжских водохранилищах // Зоол. журн. 2002. Т. 81. № 5. С. 515–520.
9. Перова С.Н., Щербина Г.Х. Сравнительный анализ структуры макрозообентоса Рыбинского водохранилища в 1980 и 1990 гг. // Биология внутр. вод. 1998. № 2. С. 52–61.
10. Песенко Ю.А. Принципы и методы количественного анализа в фаунистических исследованиях. М.: Наука, 1982. 287 с.
11. Пряничникова Е.Г. Динамика размерно-весовой структуры дрейссенид Волжского плеса Рыбинского водохранилища // Дрейссениды: эволюция, систематика, экология: Матер. I-ой Междунар. шк.-конф. Борок, 2008. С. 116–119.
12. Пряничникова Е.Г., Щербина Г.Х. Сравнение скоростей фильтрации моллюсков Dreissena polymorpha (Pall.) и D. bugensis (Andr.) в эксперименте // Биологические ресурсы пресных вод: Беспозвоночные. Рыбинск: Дом печати, 2005. С. 278–290.
13. Скальская И.А. Дрейссена (Dreissena polymorpha (Pall.)) Верхней Волги: расселение, структура популяций и современные темпы воспроизводства численности // Биология внутр. вод. 2000. № 3. С. 68–78.
14. Соколова Е.А. Сезонная и многолетняя динамика численности велигеров дрейссены в Рыбинском водохранилище // Дрейссениды: эволюция, систематика, экология: Матер. I-ой Междунар. шк.-конф. Борок, 2008. С. 135–138.
15. Тютин А.В. Каспийская килька – новый промежуточный хозяин гельминтов в верхневолжских водохранилищах // Актуальные проблемы экологии Ярославской области: Матер. конф. Ярославль, 2005. Т. 1. С. 304–308.
16. Тютин А.В., Щербина Г.Х., Медянцева Е.Н. Многолетняя динамика зараженности Dreissena polymorpha (Bivalvia, Dreissenidae) партенитами трематод в верхневолжских водохранилищах // Биологические ресурсы пресных вод: беспозвоночные. Рыбинск: Дом печати, 2005. С. 374–384.
17. Харченко Т.А. Дрейссена: ареал, экология, биопомехи // Гидробиол. журн. 1995. Т. 31. № 3. С. 3–20.
18. Щербина Г.Х. Многолетние изменения структуры донных макробеспозвоночных Рыбинского водохранилища // Матер. VII съезда Гидробиол. о-ва РАН. Казань, 1996. Т. 1. С. 224–226.
19. Щербина Г.Х. Макрозообентос // Современная экологическая ситуация в Рыбинском и Горьковском водохранилищах: состояние биологических сообществ и перспективы рыборазведения. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. ун-та, 2000. С. 216–231.
20. Щербина Г.Х. Роль Dreissena polymorpha (Pall.) в пресноводных сообществах бассейна Верхней Волги // Моллюски: проблемы систематики, экологии и филогении: Тез. докл. Спб., 2000. С. 161–163.
21. Щербина Г.Х. Роль Dreissena polymorpha (Pall.) в экосистеме Рыбинского водохранилища // Водные экосистемы и организмы: Тез. докл. М., 2000. С. 92.
22. Щербина Г.Х. Современное распространение, структура и средообразующая роль дрейссенид // Дрейссениды: эволюция, систематика, экология: Матер. I-ой Междунар. шк.-конф. Борок, 2008. С. 23–43.
23. Щербина Г.Х., Архипова Н.Р., Баканов А.И. Об изменении биологического разнообразия зообентоса верхневолжских и Горьковского водохранилищ // Проблемы биологического разнообразия водных организмов Поволжья. Зоопланктон, зообентос. Тольятти: Ин-т экологии Волж. бассейна, Гидробиол. о-во РАН, 1997. С. 108–114.
24. Mills L., Rosenberg G., Spiedle A.P. et al. A review of the Biology and ecology of the Quagga mussel (Dreissena bugensis), a second species of freshwater Dreissenidае introduced to North America // Amer. Zool. 1996. V. 36. P. 271–286.
25. Molloy D.P., Karatayev A.Y., Burlakova L.E. et al. Natural enemies of zebra mussels: predators, parasites and ecological competitors // Rev. Fish. Sci. 1997. V. 5. № 1. P. 27–97.
26. Molloy D.P., Roitman V.A., Shields J.D. Survey on the parasites of zebra mussels (Bivalvia: Dreissenidae) in Northwestern Russia, with comments on records of parasitism in Europe and North America // J. Helminthol. Soc. Wash. 1996. V. 63. № 2. P. 251–256.
27. Orlova M.I., Starobogatov Ya.I., Biochino G.I. Dreissena bugensis (Andr.) range expansion in the Volga River and in the Northern Caspian Sea: further invasion perspectives for the Baltic Sea region // ASLO’2000 Meeting: Book of Abstracts. Copenhagen, 2000. P. 194.
28. Popa O.P., Popa L.O. The most wet ward European occurrence point for Dreissena bugensis (Andrusov, 1897) // Malacol. Bohemosl. 2006. V. 5. P. 3–5.
29. Shcherbina G.Kh., Buckler D.R. Distribution and Ecology of Dreissena polymorpha (Pallas) and D. bugensis (Andrusov) in the Upper Volga Basin // J. of ASTM Int. 2006. V. 3. № 4. P. 1–11.

E.G. Pryanichnikova, A.V. Tyutin, G.Kh. Shcherbina

Comparative Analysis of the Structure and Endosymbionts Fauna of Communities of two Dreissenid Species (Mollusca, Dreissenidae) in the Upper Volga Reservoirs.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

This study presents the results of investigations into the structure of communities of two dreissenid species (native Dreissena polymorpha Pallas, 1771 and invasive D. bugensis Andrusov, 1897) in the Gorky and Rybinsk Reservoirs (the Upper Volga basin). Significant interspecific and interpopulational differences in the main quantitative parameters and the endosymbionts fauna are revealed between these molluscs.

Keywords: molluscs, Dreissena polymorpha, D. bugensis, parasites.

Л.В. Яныгина

Современное состояние и многолетняя динамика зообентоса Новосибирского водохранилища.

Институт водных и экологических проблем СО РАН, 656038 г. Барнаул, ул. Молодежная, 1
e-mail: zoo@iwep.asu.ru

Проанализированы состав, структура и пространственное распределение зообентоса Новосибирского водохранилища. Отмечено уменьшение видового богатства и увеличение обилия беспозвоночных от верхних участков водохранилища к нижним, что обусловлено сменой типа донных отложений. На основе сравнительного анализа структуры донных сообществ за 50-летний период (1959–2008 гг.) показано снижение биомассы крупных двустворчатых моллюсков и увеличение биомассы инвазийных видов в водохранилище.

Ключевые слова: зообентос, Новосибирское водохранилище, пространственное распределение.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алексевнина М.С., Преснова Е.В. Изменение донных сообществ Воткинского водохранилища за время его существования (1962–2006 гг.) // Современное состояние водных биоресурсов: Матер. междунар. конф. Новосибирск, 2008. С. 272–273.
2. Андреев Н.И., Андреева С.И., Винарский М.В. и др. Viviparus viviparus (L., 1758) (Mollusca: Gastropoda) – новый вид для фауны Новосибирского водохранилища // Современное состояние водных биоресурсов: Матер. междунар. конф. Новосибирск, 2008. С. 118–120.
3. Биологические инвазии в водных и наземных экосистемах. М.: КМК, 2004. 436 с.
4. Благовидова Л.А. Особенности распространения моллюсков в Новосибирском водохранилище // Вопросы малакологии Сибири. Томск: Томск. гос. ун-т, 1969. С. 113–116.
5. Благовидова Л.А. Состояние зообентоса водохранилища на втором десятилетии его существования // Биологический режим и рыбохозяйственное использование Новосибирского водохранилища. Новосибирск: Зап.-Сиб. книж. изд-во, 1976. С. 83–98.
6. Васильев О.Ф., Савкин В.М., Двуреченская С.Я. и др. Экологическое состояние Новосибирского водохранилища // Сиб. экол. журн. 2000. № 2. С. 149–163.
7. Жукинский В.Н., Харченко Т.А., Лященко А.В. Адвентивные виды и изменение ареалов аборигенных гидробионтов в поверхностных водных объектах Украины. Сообщение 1. Водные беспозвоночные // Гидробиол. журн. 2006. T. 42. № 6. С. 3–21.
8. Иоганзен Б.Г., Петкевич А.Н. Гидробиологическая и рыбохозяйственная характеристика Верхней Оби в связи с гидростроительством // Проблемы гидробиологии внутренних вод. 1957. Вып. 7. С. 207–214.
9. Истомина А.М. Структура сообществ Камского водохранилища // Современное состояние водных биоресурсов: Матер. междунар. конф. Новосибирск, 2008. С. 107–110.
10. Константинов А.С., Митропольский В.И., Попченко В.И., Соколова Н.Ю. Макрозообентос волжских водохранилищ // Биологическая продуктивность и качество воды Волги и ее водохранилищ. М.: Наука, 1984. С. 73–79.
11. Макрушин А.В. В промышленно развитых странах Unionidae (Bivalvia, Mollusca) вымирают. А в России? // Актуальные проблемы экологии Ярославской области. Ярославль: Верхневолж. отд. Рос. экол. акад., 2002. Т. 2. С. 77–79.
12. Мамина Н.Д. Биологическая характеристика р. Оби и ее притоков в зоне г. Новосибирска // Сб. работ Новосибирского НИИ гигиены и санитарии. 1940. Вып. 8. С. 66–75.
13. Миронова Е.Б. Зообентос Новосибирского водохранилища // Комплексные исследования Новосибирского водохранилища. М.: Гидрометеоиздат, 1985. С. 109–119.
14. Мордухай-Болтовской Ф.Д. Бентос крупных водохранилищ на Волге // Волга-1. Проблемы изучения и рационального использования биологических ресурсов водоемов: Матер. конф. Куйбышев, 1971. С. 124–131.
15. Подлипский Ю.И. К вопросу организации и некоторые итоги комплексных исследований Новосибирского водохранилища // Комплексные исследования Новосибирского водохранилища. М.: Гидрометеоиздат, 1985. С. 3–15.
16. Романова Г.П. К изучению зоопланктона и зообентоса верхнего течения реки Оби // Тр. Томск. гос. ун-та. 1963. T. 152. С. 117–125.
17. Савкин В.М. Водохранилища Сибири, водно-экологические и водно-хозяйственные последствия их создания // Сиб. экол. журн. 2000. № 2. С. 109–121.
18. Селезнева М.В. Оценка современного экологического состояния Новосибирского водохранилища по структурно-функциональным показателям сообществ макрозообентоса: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Новосибирск, 2005. 21 с.
19. Щербина Г.Х. Структура и функционирование биоценозов донных макробеспозвоночных верхневолжских водохранилищ // Динамика разнообразия гидробионтов во внутренних водоемах России. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. техн. ун-та, 2002. С. 121–142.

L.V. Yanygina

Current state and long-term changes of zoobenthos in the Novosibirsk reservoir.

The Institute for Water and Environmental Problems SB RAS, 656038 Barnaul, ul. Molodezhnaya, 1, Russia

The composition, structure and spatial distribution of zoobenthos in the Novosibirsk reservoir are analyzed. The decrease in species richness along with the increase of invertebrates abundance from upper to low sites of the reservoir caused by change in bottom sediment types are observed. The comparative analysis of the benthos community structure clearly demonstrates that with the increase of invasive species biomass, large bivalve decreases in importance.

Keywords: zoobenthos, Novosibirsk reservoir, spatial distribution.

Ихтиология

Д.С. Павлов*, А.Д. Мочек*, Э.С. Борисенко*, А.И. Дегтев**, Е.А. Дегтев*

Распределение рыб в пойменно-русловом комплексе нижнего участка р. Иртыш.

* Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Ленинский проспект, 33
** ООО Промгидроакустика, 185034 г. Петрозаводск, 4-й Родниковый пер., 17
e-mail: amochek@yandex.ru

Исследованы состав, размещение и перемещение рыб в русле, русловых ямах и пойменных водоемах нижнего участка р. Иртыш. Работа выполнена с помощью компьютеризированных гидроакустических комплексов различного назначения. Выявлена суточная и сезонная динамика перемещений, численности и состава скоплений рыб на обследованных участках. Показано биологическое единство рыбного населения пойменно-руслового комплекса в целом.

Ключевые слова: экология рыб, распределение рыб, гидроакустические исследования.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Иоганзен Б.Г. Зональное и биотопическое распределение рыб в долине Оби // Биологические ресурсы поймы Оби. Новосибирск: Изд-во Наука, 1972. С. 270–291.
2. Мартинсен Ю.В. Движение рыб в реке // Рыб. хоз-во. 1937. № 2. С. 27–30.
3. Мартинсен Ю.В. Влияние течений на поведение рыб // Рыб. хоз-во. 1940. № 12. С. 23–27.
4. Мочек А.Д. Концентрация рыб в пересеченных биотопах // Тобольск – научный: Матер. четвертой региональной науч.-практ. конф. Тобольск, 2007. С. 35–36.
5. Мочек А.Д., Павлов Д.С., Борисенко Э.С., Дегтев А.И. Распределение рыб в системе пойма – русло – русловая яма р. Иртыш // Проблемы использования водных биоресурсов Сибири в XXI веке: Матер. Всерос. конф. Красноярск, 2009. С. 341–345.
6. Павлов Д.С. Биологические основы управления поведением рыб в потоке воды. М.: Наука, 1979. 319 с.
7. Павлов Д.С., Барекян А.Ш., Рипинский И.И. и др. Экологический способ защиты рыб на повороте струй открытого потока. М.: Наука, 1982. 112 с.
8. Павлов Д.С., Мочек А.Д. Биологическое значение русловых ям в связи со стратегией сохранения рыбных ресурсов Обь-Иртышского бассейна // Экология рыб Обь-Иртышского бассейна. М.: КМК, 2006. С. 370–376 с.
9. Павлов Д.С., Мочек А.Д. Распределение рыб в речных системах как динамичное явление // Успехи соврем. биологии. 2009. Т. 129. № 6. С. 528–537.
10. Поддубный А.Г., Малинин Л.К. Миграции рыб во внутренних водоемах. М.: Агропромиздат, 1988. 224 с.
11. Правдин И.Ф. Руководство по изучению рыб. Л.: Изд-во ЛГУ, 1939. 245 с.
12. Юданов К.И., Калихман И.Л., Теслер В.Д. Руководство по проведению гидроакустических съемок. М.: Всесоюз. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 1984. 124 с.
13. Pavlov D.S., Mochek A.D., Borisenko E.S. et al. Comparative analysis of fish aggregation in channel depression of the Irtish // J. Ichthyol. 2008. V. 48. № 11. P. 919–936.
14. Welcomme R.L. River fisheries. Rome: FAO Fish. Tech. Pap., 1985. № 262. 330 p.

D.S. Pavlov*, A.D. Моchek*, E.S. Borisenko*, A.I. Degtev**, E.A. Degtev*

Distribution of Fishes in the Floodplain-Channel Complex of the Lower Section of the Irtysh River.

* Institute of Ecology and Evolution A. N. Severtzov RAS, 119071 Moscow, Leninsky Prospect, 33, Russia
** Promgidroakustika Ltd, 185034 Petrozavodsk, 4 th Dzherel'nyi per., 17, Russia

The composition of fish, their location and movements in the channel, channel depressions and flood waters of the lower section of the Irtysh River were investigated. The study was conducted with the help of computerized sonar systems used for various purposes. Diurnal and seasonal dynamics of fish movements, number and composition of fish concentrations in the surveyed areas were revealed. The biological unity of fish populations of floodplain-channel complex was presented as a whole.

Keywords: ecology of fishes, fish distribution, acoustic surveys.

А.С. Маврин, А.П. Стрельникова

Питание, развитие и рост молоди окуня Perca fluviatilis L. в мезокосмах в присутствии моллюска-фильтратора Dreissena polymorpha Pallas.

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
е-mail: mavr_as@mail.ru

В условиях искусственных водных экосистем-мезокосмов изучены количественные и качественные изменения спектров питания и ростовые характеристики молоди окуня в присутствии моллюска-фильтратора дрейссены. Дрейссена при посадке в количестве 0.75 кг/м², изменяя кормовые условия зоопланктона, снижает его численность до значений, критических для питания рыб, способствует увеличению численности кормовых организмов макробентоса и ускоряет переход рыб на питание личинками хирономид. В результате этих изменений снижается скорость роста личинок окуня, задерживается их развитие на этапе D1, ускоряется размерная дифференцировка мальков, увеличивается их размерно-массовая изменчивость и появляются особи-хищники (каннибалы).

Ключевые слова: дрейссена, окунь, размерная дифференцировка, развитие, рост, питание, каннибализм, физическое моделирование, мезокосм.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Березина Н.А., Стрельникова А.П. Взаимосвязь между пищевым спектром молоди окуня Perca fluviatilis L. и структурой макрозообентоса в экспериментальных мезокосмах // Изв. РАН. Сер. биол. 2001. № 3. С. 372–379.
2. Биологические инвазии в водных и наземных экосистемах. М.; Спб.: Товарищество науч. изданий КМК; Зоол. ин-т РАН, 2004. 436 с.
3. Боруцкий Е.В. О кормовой базе рыб // Материалы по кормовой базе и питанию рыб. М.: Изд-во АН СССР, 1974. С. 5–61.
4. Дгебуадзе Ю.Ю. Национальная стратегия, состояние, тенденции, исследования, управление и приоритеты в отношении инвазий чужеродных видов на территории России // Амер.-рос. cимп. по инвазионным видам: Тез. докл. Борок, 2001. С. 38–40.
5. Ивлев В.С. Экспериментальная экология питания рыб. Киев: Наук. думка, 1977. 272 с.
6. Ильина Л.К. О разнокачественности молоди окуня и неравномерности роста чешуи у сеголетков окуня Perca fluviatilis L. // Вопр. ихтиологии. 1970. Т. 10. № 1. С. 170–175.
7. Комов В.Т. Природное и антропогенное закисление малых озер Северо-Запада России: причины, последствия, прогноз: Автореф. дис. докт. биол. наук. Спб., 1999. 45 с.
8. Коренева Е.А., Стрельникова А.П., Уморин П.П. Влияние молоди рыб и дрейссены на структуру зоопланктона в экспериментальных мезокосмах // Биология внутр. вод. 2005. № 3. С. 67–73.
9. Крыжановский С.Г., Дислер Н.Н., Смирнова Е.Н. Эколого-морфологические закономерности развития окуневидных рыб (Percoidae) // Тр. Ин-та морфологии животных им. А.Н. Северцова АН СССР. М.: Изд-во АН СССР, 1953. Вып. 10. С. 3–139.
10. Кудринская О.И. Условия питания и обеспеченность пищей личинок судака и окуня в верхнем участке Кременчугского водохранилища // Пищевые потребности и баланс энергии у рыб. Киев: Наук. думка, 1973. С. 183–190.
11. Кузьмина В.В., Латов В.К., Посконова Е.А. Молекулярно-массовые характеристики белковых компонентов некоторых кормовых объектов рыб // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1990. № 88. С. 73–77.
12. Кузьмина В.В., Стрельникова А.П. Влияние суточных ритмов питания на общую амилолитическую активность и активность щелочной фосфатазы кишечника у молоди рыб // Биология внутр. вод. 2008. № 2. С. 81–90.
13. Курбатова С.А. Роль моллюска Dreissena polymorpha (Pall.) в водоеме и его влияние на зоопланктонное сообщество // Биология внутр. вод. 1998. № 1. С. 39–46.
14. Курбатова С.А. Реакция зоопланктонных сообществ микро- и мезокосмов на действие природных и антропогенных факторов: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Борок, 2006. 23 с.
15. Курбатова С.А., Лаптева Н.А., Клайн Н.П., Солнцева И.О. Влияние личинок и годовиков окуня (Perca fluviatilis L.) на динамику сообществ бактерий фито- и зоопланктона // Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды. Минск; Нарочь: Белорус. гос. ун-т, 2003. С. 598–601.
16. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 352 с.
17. Монаков А.В. Питание пресноводных беспозвоночных. М.: Наука, 1998. 318 с.
18. Мотыль Chironomus plumosus L. Систематика, морфология, экология, продукция. М.: Наука, 1983. 310 с.
19. Перова С.Н. Современное состояние структуры сообществ донных макробеспозвоночных Рыбинского и Горьковского водохранилищ: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Борок, 2004. 24 с.
20. Поляков Г.Д. Экологические закономерности популяционной изменчивости рыб. М.: Наука, 1975. 159 с.
21. Примак Р. Основы сохранения биоразнообразия. М.: Изд-во Науч. и уч.-метод. центра, 2002. 140 с.
22. Спановская В.Д., Григораш В.А. О разнокачественности сеголеток окуня // Физиологическая и популяционная экология животных. Саратов, 1980. Вып. 6(8). С. 36–45.
23. Стрельникова А.П. Питание и пищевые взаимоотношения некоторых пресноводных рыб в раннем онтогенезе: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Иркутск, 1987. 20 с.
24. Стрельникова А.П. О механизме перехода сеголетков окуня Perca fluviatilis L. на хищное питание // Вторая Верещагинская байкальская конф.: Тез. докл. Иркутск, 1995. С. 197–198.
25. Уголев А.М., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. Спб: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
26. Халько В.В. К вопросу о калорийности планктона Рыбинского водохранилища // Пресноводные гидробионты и их биология. Л.: Наука, 1983. С. 94–101.
27. Чиркова З.Н. О распределении и росте сеголетков окуня в Рыбинском водохранилище // Тр. биол. ст. “Борок”. 1955. Вып. 2. С. 191–199.
28. Штейнберг Е.А. Питание молоди сибирской плотвы и леща в Красноярском водохранилище // Биологические основы рыбного хозяйства Западной Сибири. Новосибирск: Наука, 1983. С. 112–114.
29. Щербина Г.Х. Влияние моллюска Dreissena polymorpha (Pall.) на структуру макрозообентоса экспериментальных мезокосмов // Биология внутр. вод. 2001. № 1. С. 63–70.
30. Щербина Г.Х. Современное распространение, структура и средообразующая роль дрейссенид в водоемах Северо-Запада России и значение моллюсков в питании рыб-бентофагов // Дрейссениды: эволюция, систематика, экология: Матер. 1-ой Междунар. шк.-конф. Борок, 2008. С. 23–43.
31. Horgan M.J., Mills E.L. Zebra mussel filter feeding and food-limited production of Daphnia: recent changes in lower trophic level dynamics of Oneiga Lake // Hydrobiologia. 1999. V. 411. P. 78–88.
32. Mavrin A.S., Strelnicova A.P. The influence of the mollusca filtrator Dreissena polymorpha on growth and development of juvenile perch Perca fluviatilis L. under experimental conditions // PERCIS II – Second Int. Percid Fish Symp.: Symp. progr. and abstracts. Vaasa, 1995. P. 52.
33. Vinogradov G.A., Stay F., Umorin P.P. et al. The effect of heavy metals and Chlorpyrifos, separately and in Combination, on a continuous flow mesocosm aquatic system // Problems of aquatic toxicology, biotesting and water quality management: Proc. Int. Symp. Borok, 1996. P. 148–161.

A.S. Mavrin, A.P. Strelnikova

The Influence of the Filtrator Mollusks Zebra Mussel Dreissena polymorpha Pallas on Probability of Survival, Nutrition, Development and Growth of Juvenile Perch Perca fluviatilis L.

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

Quantitative and qualitative changes in feeding spectra and growth characteristics of perch fry aggregations in the presence of a filter-feeding mollusk, Dreissena, are studied under conditions of artificial aquatic ecosystems – mesocosms. It is shown that at a density of 0.75 kg/м² zebra mussel changes feeding conditions of zooplankton and thus decreases its abundance to values critically low to the fish diet. From the other hand, Dreissena promotes an increase in the number of forage organisms of macrobenthos and a shift to chironomid larvae in the fish diet. Theses changes result in a reduction in the growth rate of perch larvae, retardation of their development on stage D1, an acceleration of the size differentiation in fry, an increase in their size-mass variability and the appearance of predating individuals (cannibalism).

Keywords: zebra mussel, perch, dimensional differentiation, development, growth, nutrition, preying on others, cannibalism, physical simulation, mesocosm aquatic system.

Экологическая физиология и биохимия гидробионтов

В.В. Кузьмина*, Л.К. Гавровская**, П.В. Русанова*, Е.А. Куливацкая*, О.В. Рыжова**

Влияние таурина на уровень гликемии и активность гидролаз слизистой оболочки кишечника карпа (Сyprinus carpio L.).

* Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
** НИИ экспериментальной медицины РАМН, 197376 Санкт-Петербург, ул. академика Павлова, 12
e-mail: vkuzmina@ibiw.yaroslavl.ru

Показано, что таурин (50 и 300 мг/кг) и его амидное производное таурин А (50 мг/кг) при однократном введении, как правило, слабо влияют на уровень гликемии у карпа. При длительном применении таурин (суммарная доза 1250 мг/кг) достоверно снижает концентрацию глюкозы в крови рыб, находящихся на углеводной диете. Оба препарата существенно изменяют соотношение протеолитической и амилолитической активности у всех исследованных рыб, в результате чего значительно повышается коэффициент Г/П. Предполагается, что увеличение активности гликозидаз под влиянием таурина имеет адаптивное значение для бентофага карпа, в пище которого значительна доля углеводных компонентов.

Ключевые слова: рыбы, таурин, уровень гликемии, гликозидазы, протеиназы.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Кузьмина В.В. Физиолого-биохимические основы экзотрофии рыб. М.: Наука, 2005. 300 с.
2. Мосолов В.В., Лушникова Е.Б., Афанасьев П.В. Влияние солей желчных кислот на трипсин // ДАН СССР. 1967. Т. 174. № 1. С. 230–233.
3. Нефедов Л.И. Таурин (биохимия, фармакология и медицинское применение). Гродно: Гроднен. гос. ун-т НАН Беларуси, 1999. 145 с.
4. Рипатти П.О., Попова Р.А. Определение желчных кислот животных // Экологическая биохимия животных. Петрозаводск: Ин-т биологии Карельск. науч. центра РАН, 1978. С. 33–46.
5. Рипатти П.О., Сидоров В.С. Эколого-физиологическая роль желчных кислот у рыб // Сравнительная биохимия водных животных. Петрозаводск: Ин-т биологии Карельск. науч. центра РАН, 1983. С. 17–28.
6. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н. Определение активности инвертазы и других дисахаридаз // Исследование пищеварительного аппарата у человека. Обзор современных методов. Л.: Наука, 1969. С. 169–173.
7. Anson M. The estimation of pepsin, trypsin, papain and cathepsin with hemoglobin // J. Gen. Phys. 1938. V. 22. P. 79–83.
8. Cherif H., Reusens B., Dahri S. et al. Stimulatory effects of taurine on insulin secretion by fetal rat islets cultured in vitro // J. Endocrinоl. 1996. V. 151. P. 501–506.
9. Doving K.B., Selset R., Thommsen G. Olfactory sensivity to bile salts in salmonid fish //Acta Physiol. Scand. 1980. V. 108. P. 123–131.
10. Hansen S.H. The role of taurine in diabetes and the development of diabetic complications // Diabetes/Metabol. Res. Rev. 2001. V. 17. P. 330–346.
11. Huxtable R.J. Physiological action of taurine // Physiol. Rev. 1992. V. 72. P. 101–163.
12. Kim Sh.-K., Takeuchi T., Yokoyama M. et al. Effect of dietary taurine levels on growth and feeding behavior of juvenile Japanese flounder Paralichthys ovaceus // Aquaculture. 2005. V. 250. P. 765–774.
13. Kuz’mina V.V. Influence of age on digestive enzyme activity in some freshwater teleosts // Aquaculture. 1996. V. 148. P. 25–37.
14. Lee I.K., Ashcroft F.M., Song D.K. Inhibition of ATP-sensitive K+ channels by taurine through a benzamido-binding site on sulfonylurea receptor 1 // Biochem. Pharmacol. 2004. V. 67(6). P. 1089–1096.
15. Nandhini A.T.A., Thirunavukkarasu V., Anuradha C.V. Stimulation of glucose utilization and inhibition of protein glycation and AGE products by taurine // Acta Physiol. Scand. 2004. V. 181. P. 297–303.
16. O'Flaherty L., Stapleton P.P., Redmont H.P., Bouchier-Hayes D.J. Intestinal taurine transport: a review // Eur. J. Clin. Invest. 1997. V. 27. P. 873–880.
17. Pavlov D.F., Chuiko G.M., Shabrova A.G. Adrenaline induced changes of acetylcholinesterase activity in the brain of perch (Perca fluviatilis L.) // Comp. Biochem. Physiol. 1994. V. 108C. № 1. P. 113–115.
18. Rinderknecht N., Friedman R. Effect of bile acids and ionic strength on trypsinogen activation by human enteropeptidases // Biochem. Biophys. Acta. 1978. V. 525. P. 200–208.
19. Sakai T., Nagasawa T. Simple, rapid and sensitive determination of plasma taurine by high-performance liquid chromatography using pre-column derivative formation with fuorescamin // J. Chromatogr.: Biomed. Applicat. 1992. V. 576. P. 155–157.
20. Silbergeld E.K. Blood glucose: a sensitive indicator of environmental stress in fish // Bull. Envirоn. Contam. and Toxicol. 1974. V. 11. P. 20–25.
21. Sola C., Tosi L. Bile salts and taurine as chemical stimuli for glass eels, Anguilla anguilla: a behavioural study // Environ. Biol. Fish. 1993. V. 37. P. 197–204.

V.V. Kuz’mina*, L.K. Gavrovskaya**, P.V. Rusanova*, E.A. Kulivatskaya*, O.V. Ryzhova**

Influence of Taurine on Glycemia level and the activity of intestinal Mucosa hydrolases in carp (Сyprinus carpio L.).

*Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia
**Scientific Research Institute of Experimental Medicine of RAMS, 197376 Saint-Petersburg, ul. аkad. Pavlova, 12, Russia

It is shown, that taurine (50 and 300 mg/kg) and its amid derivative taurine A (50 mg/kg) at single injection, irrespective of the diet and forms of stress, as a rule, influence poorly the glycemia level in carp. The durable load of taurine (the total doze 1250 mg/kg) reduces significantly the glucose concentration in blood of fishes which are kept on the carbohydrate diet. The both preparations change essentially the ratio of proteolytic (PA) and amylolitic (AA) activities in all studied fish. As a result in the value of the А/P coefficient increases considerably. It is suggest ed that the increase of glycosidase activity under taurine injections has adaptive importance for benthophage carp which diet includes a significant portion of carbohydrate components.

Keywords: fish, taurine, glycemia level, glycosidases, proteinases.

Водная токсикология

И.Л. Голованова, В.В. Кузьмина, Г.М. Чуйко, Н.В. Ушакова, А.А. Филиппов

Влияние полихлорированных бифенилов на активность протеиназ и карбогидраз в кишечнике молоди плотвы Rutilus rutilus (L.).

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
е-mail: golovan@ibiw.yaroslavl.ru

Впервые исследовано хроническое действие полихлорированных бифенилов (ПХБ) на активность протеиназ и карбогидраз слизистой оболочки и химуса кишечника молоди плотвы Rutilus rutilus (L.). Экспозиция сеголетков в аквариумах с грунтом (содержание ПХБ 425.6 нг на 1 г сухой массы) при питании кормом с ПХБ (50.8 нг на 1 г сырой массы) в течение 218 сут снижала протеолитическую активность слизистой оболочки в большей степени, чем амилолитическую. Активность сахаразы изменялась разнонаправленно. У двухлетков плотвы, получавших ПХБ исключительно с кормом (50.8 нг на 1 г сырой массы), протеолитическая и амилолитическая активности слизистой оболочки снижались соответственно на 18 и 35% по сравнению с контролем (52 сут), активность сахаразы  на 13 (52 сут) и 22% (169 сут) соответственно. В большинстве случаев коэффициент отношения амилолитической активности к протеолитической у рыб опытных групп меньше, чем в контроле. Активность ферментов в химусе менялась разнонаправленно в зависимости от сроков и условий эксперимента.

Ключевые слова: полихлорированные бифенилы, плотва, пищеварение, протеиназы, карбогидразы.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Герман А.В., Законнов В.В. Аккумуляция полихлорированных бифенилов в Шекснинском плесе Рыбинского водохранилища // Вод. ресурсы. 2003. Т. 30. № 5. С. 571-575.
2. Герман А.В., Козловская В.И. Содержание полихлорированных бифенилов в леще Abramis brama Рыбинского водохранилища // Вопр. ихтиологии. 1999. Т. 39. № 1. С. 139-142.
3. Голованова И.Л., Таликина М.Г., Филиппов А.А. и др. Влияние сверхмалых концентраций N-метил-N′-нитро-N-нитрозогуанидина на ранний онтогенез плотвы Rutilus rutilus: Активность карбогидраз и кинетические характеристики гидролиза углеводов в кишечнике сеголетков // Вопр. ихтиологии. 2008. Т. 48. № 2. С. 276-283.
4. Изюмов Ю.Г., Таликина М.Г., Чеботарева Ю.В. Эмбриональная смертность и мутагенный эффект в первом поколении плотвы Rutilus rutilus при прямом и опосредованном действии Ароклора 1254 на спермии родителей // Вопр. ихтиологии. 2004. Т. 44. № 2. С. 265–269.
5. Козловская В.И., Герман А.В., Козловская О.И. Полихлорированные бифенилы // Экологические проблемы Верхней Волги. Ярославль: Изд-во Ярослав. гос. техн. ун-та, 2001. С.243–248.
6. Кузьмина В.В., Скворцова Е.Г., Шалыгин М.В. Влияние температуры на активность протеиназ химуса и слизистой оболочки кишечника рыб разных экологических групп // Журн. эвол. биохим. и физиол. 2008. Т. 44. № 5. С. 282-287.
7. Роотс О.О. Общие закономерности накопления полихлорированных дифенилов и хлорорганических пестицидов в планктоне и рыбах Балтийского моря / 1 Всес. конф. по рыбохозяйственной токсикологии: Тез. докл. Рига, 1989. Ч. 2. С. 95–96.
8. Столбунов И.А., Голованова И.Л., Кузьмина В.В.и др. Морфологические и физиолого-биохимические показатели различных экологических групп плотвы Rutilus rutilus // Комплексный подход к проблеме сохранения и восстановления биоресурсов Каспийского бассейна: Матер. междунар. науч.-практ. конф. Астрахань, 2008. С. 295-299.
9. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н. Определение активности инвертазы и других дисахаридаз // Исследование пищеварительного аппарата у человека. Л.: Наука, 1969. С. 192–196.
10. Уголев A.M., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. Спб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
11. Freeman H.C., Sangaland G., Flemming B. The sublethal effects of a polychlorinated biphenyl (aroclor 1254) diet on the Atlantic cod (Gadus morhua) // Sci. Total Environ. 1982. V. 24. № 1. P. 1–11.
12. Ito Y., Nishimura K., Murata T. Effects of PCB on lysosomes in the hepatopancreas of carp // Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 1980. V. 46. № 4. P. 469–472.
13. Karjalainen A., Pääkkönen J.–P.J., Karjalainen J. Tissue–specific and whole–fish accumulation of polychlorinated biphenyls by juvenile Baltic salmon (Salmo salar L.) after oral gavage axposure // Boreal Environ. Res. 2006. V. 11. № 6. P. 421–430.
14. Mathers R.A., Brown J.A., Johansen P.H. The growth and feeding behaviour responses of largemouth bass (Micropterus salmoides) exposed to PCP // Aquat. Toxicol. 1985. V. 6. № 3. P. 157–164.
15. Mauck W.L., Mehrle P.M., Mayer F.L. Effects of the polychlorinated biphenyl Aroclor 1254 on growth, survival, and bone development in brook trout (Salvelinus fontinalis) // J. Fish. Res. Board Can. 1987. V. 35. № 8. P. 1084–1088.
16. Melancon M.J., Lech J.J. Dose-effect relationship for induction of hepatic monooxygenase activity in rainbow trout and carp by Aroclor 1254 // Aquat. Toxicol. 1983. V. 4. № 1. P. 51–61.
17. Nakayama K., Oshima Y., Nagafuchi K. et. al. Early-life-stage toxicity in offspring form exposed parent medaka, Oryzias latipes, to mixtures of tributyltin and polychlorinated biphenyls // Environ. Toxicol. and Chem. 2005. V. 24. № 3. P. 591–596.
18. Nichols J.W., Fitzsimmons P.N., Whiteman F.W. et. al. A physiologically based toxicokinetic model for dietary uptake of hydrophobic organic compounds by fish. I. Feeding studies with 2,2',5,5'-tetrachlorobiphenyl // Toxicol. Sci. 2004. V. 77. № 2. P. 206-218.
19. Niimi A.J. PCBs in aquatic organisms // Environmental contaminants in wildlife. Interpreting tissue concentrations. Boca Raton; N.Y.; L.; Tokyo: CRC Press, 1996. Ch. 5. P. 117-151.
20. Paterson G., Drouillard K.G., Haffner G.D. An evaluation of stable nitrogen isotopes and polychlorinated biphenyls as bioenergetic tracers in aquatic systems // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 2006. V. 63. № 3. P. 628–641.
21. Rubinstein N.I., Gilliam W.T., Gregory N.R. Dietary accumulation of PCBs from a contaminated sediment source by a demersal fish (Leiostomus xanthurus) // Aquat. Toxicol. 1984. V. 5. № 4. P. 331–342.
22. Sokal R.R., Rolf F.J. Biometry. The principals and practice of statistics in biological research. N. Y.: W.H. Freeman and Co, 1995. 887 p.

I.L. Golovanova, V.V. Kuz’mina, G.M. Chuiko, A.A. Filippov, N.V. Ushakova

Effect of Polychlorinated Biphenyls on Activities of Intestinal Proteinases and Carbohydrases in Young Roach Rutilus rutilus (L.).

Institute for Biology of Inland Waters RAS, 152742 Borok, Russia

The chronic effects of polychlorinated biphenyls (PCB) on activities of proteinases and carbohydrates in intestinal mucosa and chime in young roach Rutilus rutilus (L.) have been studies for the first time. The exposition of fingerling in aquariums with a ground (contents PCB 425.6 ng/g dry mass) at a feeding by a forage with PCB 50.8 ng/g wet mass during 218 day in the greater degree reduced proteolytic than amilolytic activity of mucosa; the activity of sucrase changed in different directions. In second-year fish, receiving PCB exclusively with a forage (50.8 ng/g wet mass), proteolytic and amilolytic activities of the mucosa reduced by 18 and 35% in comparison with the control (52 day), the sucrase activity reduced by 13% (52 day) and 22% (169 day). In most cases the relation of amilolytic activity to proteolytic activity in fish of experimental groups was less, than in the control. The enzyme activities in chime changed in different directions depending on terms and conditions of experiment.

Keywords: PCB, roach, digestion, proteinases, carbohydrases.

Краткие сообщения

Н.И. Андреев*, С.И. Андреева**, А.Н. Красногорова**

Находки Sphaerium mamillanum (Westerlund, 1871) (Mollusca, Bivalvia, Sphaeriidae) в водоемах Урала и Западно-Сибирской равнины.

* Омский государственный университет путей сообщения, 644046 Омск, проспект Маркса, 35
** Омский государственный педагогический университет, 644099 Омск, набережная Тухачевского, 14
e-mail: nik_andreyev@mail.ru

Приведены краткое описание, распространение и изменчивость нового для водоемов Урала и Западно-Сибирской равнины вида Sphaerium mamillanum (Westerlund, 1871), отмечаемого ранее только в пресных водах Европы.

Ключевые слова: Bivalvia, Sphaeriidae, Sphaerium mamillanum, Урал, Западно-Сибирская равнина.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Андреева С.И., Красногорова А.Н. К вопросу об изменчивости сфериид (Mollusca, Bivalvia) водоемов Омской области // Ежегодник ОмГПУ. Естественные науки и экология. Омск, 2006. Вып. 10. С. 73–76.
2. Долгин В.Н. Пресноводные моллюски Субарктики и Арктики Сибири (фауна, экология, зоогеография): Автореф. дис. … докт. биол. наук. Томск, 2001. 55 с.
3. Кантор Ю.И., Сысоев А.В. Каталог моллюсков России и сопредельных стран. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2005. 527 с.
4. Корнюшин А.В. Двустворчатые моллюски надсемейства Pisidioidea Палеарктики: Фауна, систематика, филогения. Киев: Ин-т зоологии НАН Украины, 1996. 175 с.
5. Старобогатов Я.И., Богатов В.В., Прозорова Л.А., Саенко Е.М. Моллюски // Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Спб.: Наука, 2004. Т. 6. С. 9–492.
6. Korniushin A.V. Review of the European species of the genus Sphaerium (Mollusca, Bivalvia, Pisidioidea) // Ruthenica. 1994. V. 4. № 1. P. 43–60.
7. Westerlund C.A. Exposé critique des mollusques de terre et d'eau douce de la Suède et de la Norvège // Nova Acta Sosietalis Regiae Scientiarum Upsaliensis. 1871. Ser. 3. V. 8(1). P. 1–200.
8. Westerlund C.A. Fauna der in der Paläarktischen Region lebenden Binnenconchylien. VII. Malacozoa Acephala. Lund: H. Ohlsson's Buchdr., 1890. 319 S.

N.I. Andreev*, S.I. Andreeva**, A.N. Krasnogorova**

Records of Sphaerium mamillanum (Westerlund, 1871) (Mollusca, Bivalvia, Sphaeriidae) in Waterbodies of Urals and Western Siberian Plain.

* Omsk State Railway University, 644046 Omsk, K. Marx ave., 35, Russia
** Omsk State Pedagogical University, 644099 Omsk, Tukhachevskogo emb., 14, Russia

The species Sphaerium mamillanum (Westerlund, 1871) has previously been only recorded in the European fresh waters. Here the first records of this species from waterbodies of Urals and Western Siberian Plain are reported. The brief description, distribution and variation of the species are presented.

Keywords: Bivalvia, Sphaeriidae, Sphaerium mamillanum, Urals, Western Siberian Plain.

Хроника

Международная конференция "Экология водных беспозвоночных"

А.В. Крылов

The International Conference "Ecology of aquatic invertebrates"

А.V. Krylov

Четвертая всероссийская конференция "Поведение рыб"с международным участием

В.К. Голованов, Ю.В. Герасимов

The IV All-Russian Conference "Fish Behavior" with international participation

V.K. Golovanov, Yu.V. Gerasimov

© 2008-2017 ИБВВ РАН

Написать вебмастеру

Яндекс цитирования Рейтинг@Mail.ru Яндекс.Метрика
перечень продукции подлежащей пожарной сертификации, qiwi. Смотрите на сайте сколько стоит установить автозапуск цена. душевые кабины и сантехника.