Журнал "Биология внутренних вод"
№ 4 за 2013 год
Ж.В. Корнева*, С.А. Корниенко**
Морфология и ультраструктура матки Lineolepis scutigera (Dujardin, 1845) Karpenko, 1985 (Cestoda, Cyclophyllidea, Hymenolepididae) в процессе формирования маточных капсул.
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Институт систематики и экологии животных СО РАН, 630091 Новосибирск, ул. Фрунзе, 11
e-mail: janetta@ibiw.yaroslavl.ru
У циклофиллидной цестоды Lineolepis scutigera исследованы микроанатомия и ультраструктура матки на разных этапах развития. На начальных этапах развивающиеся зародыши свободно лежат в полости единой матки, которая впоследствии разделяется на отдельные ячейки. В результате формируются многочисленные сферические маточные капсулы, содержащие по одному сформированному яйцу. Капсулы представляют собой фрагментированную, но активно функционирующую матку. Вокруг располагаются мышечные клетки, содержащие многочисленные липидные включения. Между яйцами и эпителием капсул на заключительных этапах формируются плацентоподобные отношения. Представлен сравнительный морфофункциональный анализ маточных капсул у цестод. Особое внимание уделено формированию тесных взаимоотношений между маточным эпителием и развивающимися яйцами.
Ключевые слова: Cestoda, половая система, матка, ультраструктура.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Гуляев В.Д., Корниенко С.А. О причинах и механизмах возникновения миниатюрных полимерных Hymenolepididae (Cyclophyllidea, Cestoda) – паразитов бурозубок // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2009. Т. 313. № 3. С. 249–256.
2. Корнева Ж.В. Взаимоотношения плацентарного типа и эволюционные тенденции развития матки у цестод // Журн. эвол. биохимии и физиологии. 2005. Т. 41. № 5. С. 442–449.
3. Корнева Ж.В., Корниенко С.А. Морфофункциональные взаимодействия в системе матка – эмбрион у циклофилидных цестод // Современные проблемы эволюционной морфологии животных: Матер. II Всерос. конф. СПб., 2011. С. 192–195.
4. Корнева Ж.В., Корниенко С.А., Гуляев В.Д. Морфологические и ультраструктурные изменения матки в онтогенезе Ditestolepis diaphana (Cestoda: Cyclophyllidea) и формирование синкапсул // Зоол. журн. 2010. Т. 89. № 10. С. 1181–1189.
5. Свидерский З., Ткач В.В. Сравнительная ультраструктура и дифференциация яйцезащитных образований паренхиматозного происхождения у некоторых циклофиллидных цестод // Проблемы цестодологии. СПб.: Зоол ин-т РАН, 1998. С. 116–128.
6. Buchanan G.D. Occurrence of the cestode Mathevotaenia surinamensis (Cohn, 1902) Spaskii, 1951 in a North American armadillo // J. Parasitol. 1956. V. 42. P. 34–38.
7. Chomicz L. Comparative ultrastructural studies on uterus-egg interrelations in some species of hymenolepidids (Cestoda) with aquatic life cycles // Acta Parasitol. 1996. V. 41. № 4. P. 191–198.
8. Chomicz L., Grytner-Ziecina B., Walski M. Morphological studies on envelopes of oncospheres of the hymenolepidid cestode, Fimbriaria fasciolaris (Pallas, 1781) // Acta Parasitol. 1995. V. 40. № 1. P. 26–30.
9. Chomicz L., Czubaj A. Transmission electron micrograph studies of developing oncospheral envelopes of Fimbriaria fasciolaris (Hymenolepididae) // Parasitol. Res. 1991. V. 77. P. 503–508.
10. Chomicz L., Swiderski Z. Functional ultrastructure of the oncospheral envelopes of twelve hymenolepidid species with aquatic life cycles // Acta Parasitol. 2004. V. 49. № 3. P. 177–181.
11. Chomicz L., Walski M., Grytner-Ziecina B., Rebandel H. Morphology and fine structure of oncospheral envelopes in gravid proglottids of Diploposthe laevis (Bloch, 1782) Jacobi, 1897 (Cestoda, Hymenolepididae) // Acta Parasitol. 1999. V. 44. № 3. P. 241–247.
12. Coil W.H. Studies on the embryogenesis of the tapeworm Cittotaenia variabilis (Stiles, 1895) using transmission and scanning electron microscopy // Z. Parasitenkd. 1979. V. 59. № 2. Р. 151–159.
13. Conn D.B. Life cycle and postembryonic development of Oochoristica anolis (Cyclophyllidea: Linstowiidae) // J. Parasitol. 1985. V. 71. № 1. P. 10–16.
14. Conn D.B. The role of cellular parenchyma and extracellular matrix in the histogenesis of the paruterine organ of Mesocestoides lineatus (Platyhelminthes: Cestoda) // J. Morphol. 1988. V. 197. № 3. P. 303–314.
15. Conn D.B. Ultrastructure of the gravid uterus of Hymenolepis diminuta (Platyhelminthes: Cestoda) // J. Parasitol. 1993. V. 79. № 4. P. 583–590.
16. Conn D.B. Ultrastructure of the embryonic envelopes and associated maternal structures of Distoichometra bufonis (Platyhelminthes, Cestoidea, Nematotaeniidae) // Acta Parasitol. 1999. V. 44. № 1. P. 4–10.
17. Conn D.B., Etges F.J. Fine structure and histochemistry of the parenchyma and uterine egg capsules of Oochoristica anolis (Cestoda: Linstowiidae) // Z. Parasitenkd. 1984. V. 70. № 6. P. 769–779.
18. Conn D.B., Etges F.J., Sidner R.A. Fine structure of the gravid paruterine organ and embryonic envelopes of Mesocestoides lineatus (Cestoda) // J. Parasitol. 1984. V. 70. № 1. P. 68–77.
19. Jones M.K. Formation of the paruterine capsules and embryonic envelopes in Cylindrotaenia hickmani (Jones, 1985) (Cestoda, Nematotaeniidae) // Austral. J. Zool. 1988. V. 36. P. 545–563.
20. Meggitt F.J. On some tapeworms from the bullsnake (Pityopis sayi), with remarks on the species of the genus Oochoristica (Cestoda) // J. Parasitol. 1934. V. 20. № 3. P. 181–189.
21. Okafor F.C. Oochoristica agamae Baylis, 1919 (Eucestoda, Linstowiidae) in one reptile and two bat species from Nsukka (Anambra State, Nigeria) // Misc. Zool. 1988. V. 12. P. 11–15.
22. Procopic J. Three species of the genus Ctenophthalmus (Siphonoptera) as new natural intermediate host for Hymenolepis scutigera // Folia Parasitol. 1969. T. 16. P. 264.
23. Procopic J., Mauer Zd. Nectere poznatky o biologii tazemnic z drobnich savcu // Zpravy Ceskoslov. Spol. Parasit. 1969. T. 9. S. 22–30.
24. Quentin J.-Cl., Beaucournu J.-Cl. Cysticercoides d'Hymenolepididae parasites d'Insectivores chez des Siphonapteres // C. r. Acad. sci. D. 1966. T. 262. S. 2059–2062.
25. Roca V., Carretero M.A., Jorge F. et al. The helminth community of the skink Chalcides sexlineatus from Gran Canaria (Canary Inlands) // J. Helminthol. 2012. V. 86. P. 237–240.
26. Rybicka K. Embryogenesis in cestodes // Adv. Parasitol. 1966. V. 20. P. 759–767.
27. Stunkard H.W. Cycloskrjabinia taborensis (Loewen, 1934), a cestode from the red bat, Lasiurus borealis (Müller, 1776) and a review of the family Anoplocephalidae // J. Parasitol. 1961. V. 47. P. 847–856.
28. Swiderski Z., Tkach V. Differentiation and ultrastructure of the paruterine organs and paruterine capsules, in the nematotaeniid cestode Nematotaenia dispar (Goeze, 1782) Luhe, 1910, a parasite of amphibians // Int. J. Parasitol. 1997. V. 27. № 6. P. 635–644.
29. Ubelaker J.E. The morphology, development and evolution of tapeworm larvae. Biology of Eucestoda. L.: Acad. Press, 1983. V. 1. 235 p.
30. Yildirimnah H.S., Bursey C.R., Altunel F.N. Helminth parasites of the Balkan green lizard, Lacerta trilineata Bedriada 1886, from Bursa, Turkey // Turk. Zool. 2011. V. 35. № 4. P. 519–535.
В.Г. Гагарин, В.А. Гусаков
Описание двух видов свободноживущих нематод (Nematoda) из пресных водоемов Вьетнама.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: gagarin@ibiw.yaroslavl.ru
Описаны новый для науки вид нематод Monhystera longivaginata sp. n. и редкий Mononchulus nodicaudatus (Daday, 1901), обнаруженные в водоемах Вьетнама. Monhystera longivaginata sp. n. морфологически близка к M. paludicola de Man, 1881, но имеет более длинный и стройный хвост у самок, глазки располагаются ближе к переднему концу тела, имеется поствульварная железистая клетка и более длинная вагина. На основе проведенной ревизии рода Monhystera Bastian, 1865 ряд видов (M. lemani Juget, 1969, M. macramphus Filipjev, 1923, M. amabilis Gagarin, 1997, M. hamata Gagarin, Nguyen Vu Thanh, 2005 и M. melnikae Gagarin, Naumova, 2010) переведены в род Eumonhystera Andrássy, 1981: E. lemani (Juget, 1969) comb. nov., E. macramphus (Filipjev, 1929) comb. nov., E. amabilis (Gagarin, 1997) comb. nov., E. hamata (Gagarin, Nguyen Vu Thanh, 2005) comb. nov. и E. melnikae (Gagarin, Naumova, 2010) comb. nov.
Ключевые слова: Вьетнам, пресные водоемы, свободноживущие нематоды, Monhystera longivaginata sp. n., Monоnchulus nodicaudatus (Daday, 1901), ревизия рода Monhystera.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Гагарин В.Г. Виды рода Monhystera Bastian, 1865 пресных водоемов Европейской части СССР // Фауна и биология пресноводных организмов. Л.: Наука, 1987. С. 156–174.
2. Гагарин В.Г. Свободноживущие нематоды пресных вод России и сопредельных стран. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С. 1–352.
3. Филипьев И.Н. Нематоды восточного района Финского залива и Невской губы // Исследования реки Невы и ее бассейна. Л.: Изд-во Гидрол. ин-та, 1929. Вып. 5. С. 3–22.
4. Цалолихин С.Я. Тропические нематоды – новые и редкие виды // Нематол. сб. Л.: Зоол. ин-т АН CCCР, 1988. С. 59–67.
5. Цалолихин С.Я. К фауне свободноживущих пресноводных нематод Юго-Восточной Азии // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2009. Т. 313. № 4. С. 427–434.
6. Andrássy I. Revision of the order Monhysterida (Nematoda) inhabiting soil and inland waters // Opusc. zool. 1981. T. 17, 18. P. 13–47.
7. Andrássy I. Free-living nematodes of Hungary (Nematoda errantia). Budapest: Hungar. Nat. History Mus. and System. Zool. Res. Group. Hungar. Acad. Sci., 2005. V. I. 609 p.
8. Coomans A., Eyualem A. Order Monhysterida. Freshwater nematodes. Ecology and taxonomy. L.: ABI Publ., 2005. P. 574–603.
9. Coomans A., Loof P.A.A. Morphology and taxonomy of Bathiodontina (Dorylaimida) // Nematologica. 1970. V. 16. P. 180–196.
10. Daday E. Mikroskopische Süsswassertiere aus Deutsch-New-Guinea // Termesz. Füzetek. 1901. T. 24. S. 1–56.
11. Gagarin V.G. New species of freshwater nematodes of the order Monhysterida from the Novaya Zemlya archipelago (Nematoda) // Zoosystematica Rossica. 1997. V. 6. P. 21–30.
12. Gagarin V.G., Naumova T.V. Two new species of free-living nematodes from lake Baikal, Russia // Rus. J. Nematol. 2010. V. 18. № 2. P. 103–110.
13. Gagarin V.G., Nguyen Vu Thanh. Three new species of free-living nematodes from freshwater bodies of North Vietnam // Int. J. Nematol. 2005. V. 15. № 1. P. 110–116.
14. Jaget J. Description de queques formes raraes on nouvelles de Nematodes libres du basin du Leman // Bull. Soc. vaud. sci. natur. 1965. V. 70. P. 141–173.
15. Jairajpuri M.S., Khan W.U. Predatory nematodes (Mononchida) with special reference to India. New Delhi: Assoc. Publ., 1982. 131 р.
16. Jairajpuri M.S., Loof P.A.A. The systematic position of Mononchulus // Nematologica. 1965. V. 11. P. 496–500.
17. Loof P.A.A. Freshwater nematodes from Suriname // Zool. verhand. Leiden. 1973. № 129. P. 3–47.
18. Schneider W. Freilebende Nematoden der Deutschen Limnologischen Sundaexpedition nach Sumatra, Jawa und Bali // Arch. Hydrobiol. 1937. Bd 15. S. 30–108.
Е.В. Румянцева, Д.Б. Косолапов, Н.Г. Косолапова, Д.В. Кулаков
Динамика планктонных микроорганизмов и вирусов в литорали рыбинского водохранилища: влияние колониальных поселений птиц.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: elivic.rum@gmail.com
В прибрежных водах Рыбинского водохранилища исследовано влияние колониальных поселений чаек и цапель на динамику гетеротрофных бактерий, жгутиконосцев и вирусов. Установлено, что литораль водохранилища характеризуется высоким уровнем количественного развития микроорганизмов и вириопланктона. Выявлены особенности сезонной динамики этих компонентов микробного сообщества на участках, заселенных птицами. В открытом прибрежье около поселения цапель обнаружено увеличение численности и биомассы бактерий, отсутствовавшее в фоновом биотопе. Максимальные значения этих параметров зарегистрированы в защищенном прибрежье вблизи гнездования чаек. В период интенсивной орнитогенной нагрузки количество микроорганизмов и вирусов было выше на участках, расположенных около птичьих колоний. Показано, что наиболее сильное влияние на планктонное микробное сообщество оказывают чайки в защищенной литорали, обособленной от открытой части водохранилища и характеризующейся высокими концентрациями растворимых органических веществ и азота.
Ключевые слова: бактериопланктон, вириопланктон, гетеротрофные жгутиконосцы, литораль водохранилища, влияние гидрофильных птиц.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Копылов А.И., Косолапов Д.Б. Бактериопланктон водохранилищ Верхней и Средней Волги. М.: Современный гуманитарный ун-т, 2008. 377 с.
2. Копылов А.И., Косолапов Д.Б., Заботкина Е.А. Вирусы в планктоне Рыбинского водохранилища // Микробиология. 2007. Т. 76. № 6. С. 879–887.
3. Крылов А.В., Кулаков Д.В., Касьянов Н.А. и др. Зоопланктон защищенного зарастающего мелководья Рыбинского водохранилища в условиях влияния колониального поселения птиц // Биология внутр. вод. 2009. № 2. С. 56–61. (Krylov A.V., Kulakov D.V., Kasyanov N.A. et al. The Influence of Bird Colonies on the Zooplankton in the Rybinsk Reservoir Overgrown Shallows // Inland Water Biology. 2009. V. 2. № 2. P. 157–161. DOI: 10.1134/S1995082909020084).
4. Кулаков Д.В., Косолапов Д.Б., Крылов А.В. и др. Планктон высокотрофного озера в условиях влияния продуктов жизнедеятельности колонии серой цапли (Ardea cinerea L.) // Поволж. экол. журн. 2010. № 3. С. 274–282.
5. Чуйков Ю.С. Экология массовых видов планктонных беспозвоночных в водоемах, находящихся под влиянием колониальных поселений птиц: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 1982. 21 с.
6. Benner R., Strom M. A critical evaluation of the analytical blank associated with DOC measurements by high-temperature catalytic oxidation // Mar. Chem. 1993. V. 41. P. 153–160.
7. Blais J.M., Kimpe L.E., McMahon D. et al. Arctic seabirds transport marine-derived contaminants // Science. 2005. V. 309. P. 445.
8. Caron D.A. Technique for enumeration of heterotrophic and phototrophic nanoplankton, using epifluorescence microscopy and comparison with other procedures // Appl. Environ. Microbiol. 1983. V. 46. № 2. Р. 491–498.
9. Girdwood R.W.A., Fricker C.R., Munro D. et al. The incidence and significance of salmonella carriage by gulls (Larus spp.) in Scotland // J. Hyg. 1985. V. 95. P. 229–241.
10. Gould D.J., Fletcher M.R. Gull droppings and their effects on water quality // Water Res. 1978. V. 12. P. 665–672.
11. Hagström Å., Larsson U., Hörstedt P., Normark S. Frequency of dividing cells, a new approach to the determination of bacterial growth rates in aquatic environments // Appl. Environ. Microbiol. 1979. V. 37. P. 805–812.
12. Jacquet S., Miki T., Noble R. et al. Viruses in aquatic ecosystems: important advancements of the last 20 years and prospects for the future in the field of microbial oceanography and limnology // Adv. Oceanogr., Limnol. 2010. V. 1. № 1. P. 71–101.
13. Kitchell J.F., Schindler D.E., Herwig B.R. et al. Nutrient cycling at the landscape scale: The role of diel foraging migrations by geese at the Bosque del Apache National Wildlife Refuge, New Mexico // Limnol., Oceanogr. 1999. V. 44. № 3. P. 828–836.
14. Landry M. R., Hasset R. P. Estimating the grazing impact of marine microzooplankton // Mar. Biol. 1982. V. 67. P. 283–288.
15. Noble R.T., Fuhrman J.A. Use of SYBR Green I for rapid epifluorescence counts of marine viruses and bacteria // Aquat. Microb. Ecol. 1998. V. 14. № 2. P. 113–118.
16. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol., Oceanogr. 1980. V. 25. № 5. P. 943–948.
А.А. Глазунова, Ю.Ю. Полунина
Особенности подледного зоопланктона Куршского и Вислинского заливов Балтийского моря.
Атлантическое отделение института океанологии им. П.П. Ширшова РАН, 236000 г. Калининград, проспект Мира, д. 1
e-mail: glazunova_bio@mail.ru
В Вислинском и Куршском заливах отмечено соответственно семь и девять таксонов подледного зоопланктона. Доминировали веслоногие ракообразные и коловратки. В течение года комплекс доминирующих видов в Вислинском заливе в основном постоянен, в Куршском – существенно изменяется. В последнем зоопланктон зимой сконцентрирован в поверхностном слое воды, что обусловлено благоприятным кислородным режимом и скоплением фитопланктона подо льдом.
Ключевые слова: подледный зоопланктон, состав и структура, особенности распределения, Вислинский и Куршский заливы.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Балушкина Е.В., Винберг Г.Г. Зависимость между массой и длиной тела у планктонных ракообразных // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука, 1979. С. 169–172.
2. Гидрометеорологические условия шельфовой зоны морей СССР. Т. 1: Балтийское море. Вып. 3: Куршский и Вислинский заливы. Л.: Гидрометеоиздат, 1985. 72 с.
3. Ермолаева Н.И. Состав и функционирование зимних зоопланктонных сообществ Новосибирского водохранилища // Сиб. экол. Журн. 2000. № 2. С. 165–171.
4. Крылова О.И. Функционирование планктона и бентоса Куршского и Вислинского заливов Балтийского моря в связи с их экологическими различиями: Автореф. дис. … канд. Биол. Наук. М., 1984. 23 с.
5. Ланге Е.К. Характеристика зимнего фитопланктона Куршского залива Балтийского моря // Ледовые и термические процессы на водных объектах России: Тр. III Всерос. конф. Онега, 2011. С. 311–326.
6. Методические рекомендации по сбору и обработке материалов при гидробиологических исследованиях на пресноводных водоемах. Зоопланктон и его продукция. Л.: Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 1984. 34 с.
7. Науменко Е.Н. Зоопланктон Вислинского залива. Калининград: Изд-во Калинигр. Гос. техн. ун-та, 2007. 210 с.
8. Науменко Е.Н. Зоопланктон прибрежной части Куршского залива. Калининград: Изд-во АтлантНИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 2006. 178 с.
9. Полунина Ю.Ю., Глазунова А.А. Зоопланктон прибрежной зоны Куршского залива в 2011 году // Проблемы изучения и охраны природного и культурного наследия национального парка "Куршская коса": Cб. науч. ст. Калининград: Изд-во Балтийского Фед. Ун-та им. И. Канта, 2012. Вып. 8. С. 106–115.
10. Полунина Ю.Ю., Глазунова А.А. Видовой состав, пространственное распределение, сезонная и межгодовая динамика зоопланктона // Состояние морской среды и береговых ландшафтов российского сектора юго-восточной Балтики на рубеже XX–XXI веков. Калининград: Изд-во Терра Балтика, 2013. Вып. 3. (В печати).
11. Полунина Ю.Ю., Матвий С.Г. Зоопланктон в прибрежных водах Калининградского взморья (Балтийское море) // Комплексные исследования процессов, характеристик и ресурсов российских морей Северо-Европейского бассейна (проект подпрограммы "Исследование природы Мирового океана" ФЦП "Мировой океан"). Апатиты: Изд-во Кольск. Науч. центра РАН, 2007. Вып. 2. С. 460–469.
12. Ривьер И.К. Особенности функционирования зоопланктонных сообществ водоемов различных типов // Структура и функционирование пресноводных экосистем. Л.: Наука, 1988. С. 80–111.
13. Ривьер И.К. Холодноводный зоопланктон озер бассейна Верхней Волги. Ижевск: Издатель Пермяков С.А., 2012. 390 с.
14. Черевичко А.В. Зоопланктон озер Полистовского заповедника // Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. 2009. Т. 18. № 3. С. 132–137.
15. Щука Т.А. Характеристика современного состояния зоопланктона Балтийского моря: Автореф. дис. … канд. биол. наук. М., 2002. 28 с.
М.В. Чертопруд, Д.М. Палатов
Реофильные сообщества макробентоса юго-западной части кольского полуострова.
Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, 119992 Москва, Воробьевы горы, д. 1, корп. 12
e-mail: lymnaea@yandex.ru
На оригинальном материале описана фауна и разнообразие сообществ макрозообентоса водотоков Хибинских тундр, окружающих их равнин и Кандалакшского побережья Белого моря в Мурманской обл. Приведен список из 110 выявленных таксонов, среди которых преобладают личинки двукрылых, ручейников, поденок и веснянок. Описан 21 тип сообществ макробентоса, образующих две параллельные серии: горную холодноводную, характерную для Хибин (11 типов), и равнинную, относительно тепловодную (10 типов). Граница между ними проходит по летней температуре воды 12–14ºС и обычно связана с протеканием водотоков через озера в предгорной зоне. Рассматривается смена донных сообществ по продольному профилю водотоков региона, где основным фактором также выступает летняя температура воды, но при этом не выполняются основные положения концепции речного континуума Ваннота и продольной зональности водотоков Иллиеса. Фаунистически равнинная часть водотоков региона близка к другим регионам Восточной Европы, вплоть до Московской обл., а горная серия со своеобразной и резко обедненной фауной заслуживает выделения в отдельную зоогеографическую провинцию.
Ключевые слова: макробентос, сообщества, водотоки, Кольский полуостров, арктическая фауна, температурный эффект.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Алимов А.Ф. Интенсивность обмена у водных пойкилотермных животных // Общие основы изучения водных экосистем. Л.: Наука , 1979. С. 5–20.
2. Барышев И.А. Фауна амфибиотических и водных насекомых Карелии. На сайте: Бентос рек Карелии и Кольского полуострова. 2006. http://home.onego.ru/~baryshev/fauna.htm
3. Барышев И.А., Кухарев В.И., Круглова А.Н. Влияние озерного зоопланктона на структуру и продукцию зообентоса порожистой реки в летнюю межень (на примере оз.Кедрозера, р. Лижма, бассейн Онежского озера) // Экология водных беспозвоночных: Матер. Междунар. конф. Борок, 2010. С. 34–36.
4. Задорина В.М. Гидробиологическая характеристика некоторых рек Кольского полуострова // Экология и воспроизводство проходных лососевых рыб в бассейнах Белого и Баренцева морей. Мурманск: Поляр. НИИ мор. рыб. хоз-ва и океаногр., 1985.С. 138–148.
5. Миркин Б.М., Наумова Л.Г., Соломещ А.И. Современная наука о растительности. М.: Логос, 2001. 263 с.
6. Палатов Д.М., Чертопруд М.В. Реофильная фауна и сообщества беспозвоночных тундровой зоны на примере Южного Ямала // Биология внутр. вод. 2012. № 1. С. 23–32. (Palatov D.M., Chertoprud M.V. The Rheophilic Fauna and Invertebrate Communities of the Tundra Zone: A Case Study of the Southern Yamal // Inland Water Biology. 2012. V. 5. № 1. P. 19–28. DOI: 10.1134/S1995082912010117).
7. Фролов А.А. Биология некоторых видов двустворчатых моллюсков надсемейства Pisidioidea из водоемов и водотоков Мурманской области // Экология водных беспозвоночных: Матер. Междунар. конф. Борок, 2010. С. 318–321.
8. Чертопруд М.В. Родниковые сообщества макробентоса Московской области // Журн. общ. биологии. 2006. Т. 67. № 5. С. 376–384.
9. Чертопруд М.В. Биогеографическое районирование пресных вод Евразии по фауне макробентоса // Журн. общ. биологии. 2010. Т. 71. № 2. С. 144–162.
10. Чертопруд М.В. Разнообразие и классификация реофильных сообществ макробентоса средней полосы Европейской России // Журн. общ. биологии. 2011. Т. 72. № 1. С. 51–73. (Chertoprud M.V. Diversity and Classification of Rheophilic Communities of Macrozoobenthos in Middle Latitudes of European Russia // Biology Bulletin Reviews. 2011. V. 1. № 3. P. 165–184. DOI: 10.1134/S2079086411030017).
11. Яковлев В.А. Пресноводный зообентос Северной Фенноскандии (разнообразие, структура и антропогенная динамика). Апатиты: Кольск. науч. центр РАН, 2005. Ч. 2. 145 с.
12. Brittain J., Saltveit S., Castella E. et al. The macroinvertebrate communities of two contrasting Norvegian glacial rivers in relation to environmental variables // Freshwater Biol. 2001. V. 46. № 12. P. 1723–1736.
13. Fureder F., Schutz C., Wallinger M., Burger R. Physico-chemistry and aquatic insects of a glacier-fed and a spring-fed alpine stream // Freshwater Biol. 2001. V. 46. № 12. P. 1673–1681.
14. Hoffsten P. Distribution of filter-feeding caddisflies (Trichoptera) and plankton drift in a Swedish lake-outlet stream // Aquat. Ecol. 1999. V. 33. P. 377–386.
15. Illies J. Versuch einer allgemeinen biozonotischen Gliederung der Fliessgewasser // Int. Rev. Ges. Hydrobiol. 1961. Bd 46. Н. 2. S. 205–213.
16. Lods-Crozet B., Castella E., Cambin D. et al. Macroinvertebrate community structure in relation to environmental variables in a Swiss glacial stream // Freshwater Biol. 2001. V. 46. № 12. P. 1641–1655.
17. Milner A., Brittain J., Castella E., Petts G. Trends of macroinvertebrate community structure in glacier-fed rivers in relation to environmental conditions: A synthesis // Freshwater Biol. 2001. V. 46. № 12. P. 1833–1847.
18. Milner A., Pett G. Glacial rivers: physical habitat and ecology // Freshwater Biol. 1994. V. 32. № 2. P. 295–307.
19. Vannote R., Minshall G., Cummins K. et al. The river continuum concept // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 1980. V. 37. № 1. P. 130–137.
20. Wotton R. Temperature and lake-outlet communities // J. Therm. Biol. 1995. V. 20. № 1–2. P. 121–125.
И.А. Барышев*, Е.Н. Белякова**, А.Е. Веселов*
Зообентос пороговых участков лососевых рек юго-востока Кольского полуострова.
*Институт биологии Карельского научного центра РАН, 185910 Петрозаводск, ул. Пушкинская, 11
**Петрозаводский государственный университет, 185910 Петрозаводск, пр. Ленина, 33
e-mail: i_baryshev@mail.ru
Исследованы видовой состав и количественные характеристики зообентоса лососевых рек юго-востока Кольского полуострова. Выявлено малое число видов, низкие значения численности и биомассы. Это обусловлено суровостью климатических условий и малым поступлением растительной органики в водотоки. Наибольшее число видов и обилие зообентоса обнаружено на скально-обломочных грунтах и в местах поступления листового опада в лесотундровой зоне. Биологическое разнообразие организмов максимально на порогах с зарослями мха Fontinalis. В тундровых реках кормовые условия для молоди лососевых рыб оценены как скудные, на юге региона в зоне лесотундры – как средние.
Ключевые слова: зообентос, видовой состав, видовое разнообразие, численность и биомасса, лососевые реки, Кольский полуостров.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Барышев И.А., Веселов А.Е. Количественная характеристика зообентоса некоторых рек бассейна Белого моря (Карельский, Терский и Архангельский берега). Лососевидные рыбы Восточной Фенноскандии. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН, 2005. С. 23–30.
2. Барышев И.А., Веселов А.Е. Зообентос рекультивированных нерестово-выростных участков лососевых рыб в реках бассейна Онежского озера // Биоразнообразие: проблемы и перспективы сохранения: Матер. Междунар. науч. конф. Пенза, 2008. Ч. 2. С. 124–126.
3. Барышев И.А., Веселов А.Е., Зубченко А.В., Калюжин С.М. Беспозвоночные организмы выростных участков молоди атлантического лосося в бассейне реки Варзуги // Биология, воспроизводство и состояние запасов анадромных и пресноводных рыб Кольского полуострова. Мурманск: Изд-во Поляр. НИИ мор. рыб. хоз-ва и океаногр., 2005. С. 21–30.
4. Барышев И.А., Кухарев В.И. Влияние проточного озера на структуру зообентоса в реке с быстрым течением (на примере р. Лижма, бассейн Онежского озера) // Уч. зап. Петрозавод. гос. ун-та. 2011. № 6 (119). С. 16–19.
5. Гиляров А.М. Соотношение биомассы и видового разнообразия в планктонном сообществе // Зоол. журн. 1969. Т. 48. № 4. С. 485–493.
6. Жадин В.И. Фауна рек и водохранилищ. М.: Изд-во АН СССР, 1940. C. 698–722.
7. Задорина В.М. Гидробиологическая характеристика некоторых рек Кольского полуострова // Экология и воспроизводство проходных лососевых рыб в бассейнах Белого и Баренцева морей. Мурманск: Поляр. НИИ мор. рыб. хоз-ва и океаногр., 1985. С. 138–148.
8. Зубченко А.В., Веселов А.Е., Калюжин С.М. и др. Репродуктивный потенциал атлантического лосося, воспроизводящегося в реках Кольского полуострова // Исследования по ихтиологии и смежным дисциплинам на внутренних водоемах в начале XXI века. СПб.; М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2007. Вып. 337. С. 375–385.
9. Каталог рек Мурманской области. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1962. 152 с.
10. Методические рекомендации по изучению гидробиологического режима малых рек. Петрозаводск: Ин-т биологии Карельск. науч. центра АН СССР, 1989. 42 с.
11. Нилова О.И. Гидробиологическая характеристика реки Поноя и ее притоков // Рыбы Мурманской области. Мурманск: Мурманск. кн. изд-во, 1966. С. 105–112.
12. Определитель пресноводных беспозвоночных Европейской части СССР. Л.: Гидрометеоиздат, 1977. 511 с.
13. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 3: Паукообразные и низшие насекомые. СПб.: Наука, 1997. 440 с. Т. 4: Высшие насекомые. Двукрылые. 1999. 1000 с. Т. 5: Высшие насекомые (ручейники, чешуекрылые, жесткокрылые, сетчатокрылые, большекрылые, перепончатокрылые). 2001. 836 с.
14. Хренников В.В. Механизм и скорость формирования донных биоценозов в лососевых реках // Лососевые (Salmonidae) Карелии. Петрозаводск: Ин-т биологии Карельск. фил. АН СССР, 1983. С. 146–162.
15. Хренников В.В. Сезонная динамика бентофауны в лососевых реках Карелии и Кольского полуострова // Вопросы лососевого хозяйства на Европейском Севере. Петрозаводск: Ин-т биологии Карельск. фил. АН СССР. 1987. С. 65–69.
16. Хренников В.В., Барышев И.А., Шустов Ю.А. и др. Зообентос рек Карелии и Кольского полуострова, кормовые ресурсы для молоди лосося // Проблемы изучения, рационального использования и охраны ресурсов Белого моря: Матер. IX междунар. конф. Петрозаводск, 2005. С. 318–322.
17. Шустов Ю.А. Экология молоди атлантического лосося. Петрозаводск: Карелия, 1983. 152 с.
18. Яковлев В.А. Пресноводный зообентос Северной Фенноскандии (разнообразие, структура и антропогенная динамика). Апатиты: Изд-во Кольск. науч. центра РАН, 2005. Ч. 1. 161 с. Ч. 2. 145 с.
19. Khrennikov V.V., Baryshev I.A., Shustov Y.A. et al. Zoobenthos of salmon rivers in the Kola Peninsula and Karelia (north east Fennoscandia) // Ecohydrol., Hydrobiol. 2007. V. 7. № 1. P. 71–77.
20. Lillehammer A. Stoneflies (Plecoptera) of Fennoscandia and Denmark // Fauna Entomologica scandinavica. 1988. № 21. 165 p.
Т.И. Кочурова*, Г.Я. Кантор**
Макрозообентос среднего течения р. Вяткa в районе объекта уничтожения химического оружия.
*Государственный научно-исследовательский институт промышленной экологии, 610004 г. Киров, проспект Октябрьский, 24
**Вятский государственный гуманитарный университет, 610002 г. Киров, ул. Красноармейская, 26
e-mail: kochurovati@mail.ru
Приведены результаты пятилетних исследований макрозообентоса р. Вятка в районе объекта уничтожения химического оружия (пос. Мирный Кировской обл.) на этапе обезвреживания фосфорорганических отравляющих веществ. Рассмотрен таксономический состав, динамика количественных показателей и структуры сообществ донных беспозвоночных. Дана биоиндикационная оценка качества воды. Установлено сохранение общего таксономического богатства и рост общей биомассы зообентоса. Выявлены процессы органического загрязнения и эвтрофирования р. Вятка.
Ключевые слова: макрозообентос, таксономический состав, численность, биомасса, количественная структура, биоиндикация, эвтрофирование.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Ашихмина Т.Я., Менялин С.А., Титова В.А. и др. Состояние окружающей природной среды в районе действующего объекта хранения и уничтожения химического оружия "Марадыковский" в Кировской области // Региональные и муниципальные проблемы природопользования: Матер. 10-ой Всерос. науч.-практ. конф. Кирово-Чепецк, 2008. С. 59–61.
2. Баканов А.И., Законнов В.В., Литвинов А.С. Бентос Чебоксарского водохранилища: влияние загрязнений и мониторинг грунтов // Биология внутр. вод. 2006. № 4. С. 77–85.
3. Балушкина Е.В. Хирономиды как индикаторы степени загрязнения вод // Методы биологического анализа пресных вод. Л.: Зоол. ин-т АН СССР, 1976. С. 106–118.
4. Балушкина Е.В. Значение структурных и функциональных характеристик биотической компоненты в оценке состояния экосистем (на примерах водоемов и водотоков Северо-Запада России) // Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем: Матер. докл. Междунар. конф. СПб., 2007. С. 262–266.
5. Гланц С. Медико-биологическая статистика. М.: Практика, 1998. 439 с.
6. Горохов Н.Г. Реализация программы уничтожения химического оружия в Кировской области // Теор. и приклад. экология. 2007. № 2. С. 20–22.
7. ГОСТ 17.1.3.07-82. Охрана природы. Гидросфера. Правила контроля качества воды водоемов и водотоков. М.: Стандартинформ, 1982. 12 с.
8. Кликашева А.Н. Реки // Энциклопедия Земли Вятской. Киров: Обл. писательская организация, 1997. Т. 7: Природа. С. 175–199.
9. Константинов А.С. Общая гидробиология. М.: Высш. шк., 1986. 472 с.
10. Кочурова Т.И. Зообентос водоемов бассейна р. Вятка в условиях антропогенного влияния: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Киров, 2008. 22 с.
11. Лешко Ю.В. Зообентос бассейна реки Вятка в условиях промышленного загрязнения // Изв. Самар. науч. центра РАН. 2005. № 9. С. 138–141.
12. Мордухай-Болтовской Ф.Д., Ривьер И.К. Беспозвоночные как показатели эвтрофирования водоемов // Научные основы контроля качества поверхностных вод по гидробиологическим показателям: Тр. Сов.-англ. семинара. Л.: Гидрометеоиздат, 1977. С. 28–31.
13. Новикова Е.А., Ашихмина Т.Я. Картографирование содержания соединений фосфора в почве и снежном покрове вблизи объекта уничтожения химического оружия // Экология родного края – проблемы и пути их решения: Матер. четвертой обл. науч.-практ. конф. молодежи. Киров, 2009. С. 126–128.
14. Определитель пресноводных беспозвоночных Европейской части СССР. Л.: Гидрометеоиздат, 1977. 281 с.
15. Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. СПб.: Наука, 1994. Т. 1. 395 с. 1995. Т. 2. 628 с. 1997. Т. 3. 439 с. 1999. Т. 4. 998 с. 2001. Т. 5. 836 с.
16. Растегаев О.Ю., Чупис В.Н., Марьин В.И. и др. Фосфорорганические отравляющие вещества. Свойства и методы определения. Саратов: Фиеста-2000, 2009. 219 с.
17. Руководство по гидробиологическому мониторингу пресноводных экосистем. СПб.: Гидрометеоиздат, 1992. 319 с.
18. Руководство по методам гидробиологического анализа поверхностных вод и донных отложений. Л.: Гидрометеоиздат, 1983. 239 с.
19. Садырин В.М. Данные по бентосу р. Вятки // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л.: Наука, 1973. № 19. С. 22–23.
20. Семенченко В.П. Экологическое качество поверхностных вод. Минск: Беларус. навука, 2011. 329 с.
21. Щербина Г.Х., Аюушсурэн Ч. Структура макрозообентоса некоторых озер Монголии // Биология внутр. вод. 2007. № 2. С. 62–70.
22. Woodiwiss F.S. The biological system of stream classification used by the Trent River Board // Chem. and Ind. 1964. V. 14. P. 443–447.
Н.Н. Чукалова, О.А. Шухгалтер, Г.Н. Родюк
Встречаемость кожных неоплазий у леща Abramis brama L. Куршского залива Балтийского моря.
Атлантический научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии, 236022 Калининград, ул. Дм. Донского, д. 5
e-mail: chukalova@gmail.com
В 1999–2010 гг. исследованы неоплазии кожи леща Куршского залива Балтийского моря. Обследовано 12 163 экз. рыб. Выявлено два типа неоплазий: эпидермальные гиперплазии и папилломы, составляющие стадии эпизоотического папилломатоза кожи рыб. Заболевание отмечено у 18.5% рыб >5 лет. С возрастом доля больных особей увеличивалась, достигая 62.5% в 15 лет. Встречаемость неоплазий у самцов достоверно выше (12%), чем у самок (5.3%). В зимний период больные рыбы встречались чаще (30.2%), чем в летний (15.6%). Максимальная доля рыб с неоплазиями отмечена в 2006 г. (40%). С 2007 г. наметилась тенденция к снижению заболеваемости и в 2009–2010 гг. встречаемость больных рыб в среднем составила 7.3%. Высокие значения встречаемости заболевания у леща свидетельствуют о неблагополучной экологической ситуации в водоеме.
Ключевые слова: лещ Abramis brama L., Куршский залив, Балтийское море, болезни рыб, неоплазии кожи, эпизоотический папилломатоз..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Белых О.И., Гладких А.С., Тихонова И.В., Дмитриева О.А. Выявление генов синтеза цианобактериальных токсинов в различных водоемах России: молекулярно-генетический подход к оценке качества воды // Тез. докл. X съезда Гидробиол. о-ва РАН. Владивосток, 2009. С. 39.
2. Белых О.И., Дмитриева О.А., Гладких А.С., Сороковикова Е.Г. Идентификация токсикогенных цианобактерий рода Microcystis в Куршском заливе Балтийского моря // Океанология. 2013. T. 53. № 1. С. 78–87.
3. Васюков А.И. Эпизоотолого-географическая ситуация по опухолевым болезням леща и плотвы Куршского залива // Водные биоресурсы и аквакультура. Калининград: Изд-во Калинингр. гос. техн. ун-та, 1994. С. 75–80.
4. Васюков А.И. Результаты исследования фибросаркомы леща Куршского залива // Некоторые аспекты физиологии и патологии гидробионтов. Калининград: Изд-во Калинингр. гос. техн. ун-та, 1995. С. 126–132.
5. Волкова О.В., Елецкий Ю.К. Основы гистологии с гистологической техникой. Л.: Медицина, 1982. 320 с.
6. Гланц С. Медико-биологическая статистика. М.: Практика, 1998. 459 с. (Glanz S. Biomedical statistics. М.: Practica, 1998. 459 p.)
7. Дмитриева О.А., Семенова А.С., Чукалова Н.Н. Влияние "цветения" синезеленых водорослей на экологическую ситуацию в Куршском заливе // Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы: Матер. III Всерос. конф. по водной токсикологии. М., 2008. Ч. 2. С. 229–232.
8. Старовойтов В.К. Опухоли пресноводных рыб как показатель загрязнения водоема и возможная роль паразитов в их возникновении // Проблемы современной паразитологии: Матер. Междунар. конф. и III Съезда паразитол. о-ва при РАН. СПб., 2003. С. 124–125.
9. Старовойтов В.К. Изменение климата Голарктики, энтрофикация водоемов и опухоли бентосоядных рыб Куршского залива // Паразиты Голарктики: Сб. науч. статей Междунар. cимп. Петрозаводск, 2010. С. 96–98.
10. Хлопников М.М., Голубкова Т.А., Репечка Р. Промысловая характеристика ихтиофауны // Рыбохозяйственный кадастр трансграничных водоемов России (Калининградская область). Калининград: Изд-во "ИП Мишуткина", 2008. С. 37–54.
11. Чукалова Н.Н. Результаты изучения болезней леща (Abramis brama L.) Куршского залива в 2006 году // Проблемы изучения и охраны природного и культурного наследия национального парка "Куршская коса". Калининград: Изд-во Рос. гос. ун-та им. Канта, 2007. С. 235–249.
12. Anders K., Yoshimizu M. Role of viruses in the induction of skin tumours and tumour-lake proliferations of fish // Diseases aquat. organisms. 1994. V. 19. P. 215–232.
13. Baumann P.C. The use of tumors in wild populations of fish to assess ecosystem health // J. Aquat. Ecosyst. Health. 1992. V. 1. P. 135–146.
14. Bowser P.R., Casey J.W. Retroviruses of fish // Ann. Rev. fish Diseases. 1993. P. 209–224.
15. Getchell R.G., Casey J.W., Bowser P.R. Seasonal Occurrence of Virally Induced Skin Tumors in Wild fish // J. Aquat. Ecosyst. Health. 1998. V. 10. P. 191–201.
16. Getchell R.G., Wooster G.A., Rudstam L.G. et al. Prevalence of Walleye Epidermal Hyperplasia by age-class in Wallyeys from Oneida Lake, New York // J. Aquat. Ecosyst. Health. 2004. V. 16. P. 23–28.
17. Hoole D., Bucke D., Burgess P., Wellby I. Diseases of Carp ad other Cyprinid fishes. Oxford: Blackwell Sci., 2001. 280 p.
18. Kemeza V. Kletas zuvu naviko atveju (Several cases of fish tumour) // Zuvininkyste Lietvoje. Vilnius, 1998. V. 3. P. 247–258. (in Lithuanian).
19. Korkae-aho T.L., Partanen J.M., Kiviniemi V. et al. Association between environmental stress and epidermal papillomatosis of roach Rutillus rutillus // Diseases aquat. organisms. 2006. V. 72. P. 1–8.
20. Korkae-aho T.L., Vainikka A., Kortet R., Taskinen J. Facrors affecting between-lake variation in the occurrence of epidermal papillomatosis in roach, Rutillus rutillus (L.) // Diseases aquat. organisms. 2009. V. 32. P. 263–270.
21. Kortet R., Taskinen J., Vainikka A., Ylonen H. Breeding tubercles, Papillomatosis and Dominance Behaviour of Male roach (Rutillus rutillus) during the Spawning period // Ethology. 2004. V. 110. P. 591–601.
22. Kortet R., Vainikka A., Rantala M.J. et al. Sexual ornamentation, androgens and papillomatosis in male roach (Rutillus rutillus) // Evol. Ecol. Res. 2003. V. 5. P. 411–419.
23. Kortet R., Vainikka A., Taskinen J. Epizootic cutaneous papillomatosis in roach Rutillus rutillus: sex and size dependence, seasonal occurrence and between–population differences // Diseases aquat. organisms. 2002. V. 52. P. 185–190.
24. Kortet R., Vainikka A., Taskinen J. Effect of epidermal papillomatosis on survival of the freshwater fish Rutillus rutillus // Diseases aquat. organisms. 2003. V. 57. P. 163–165.
25. Lang T., Rodjuk G. Guidelines for fish disease monitoring in the Baltic Sea. Report of the ICES // BSRP Sea-going Workshop on Fish Disease Monitoring in the Baltic Sea (WKFDM) // ICES Council Meeting Paper. 2006. BCC: 02 (Annex 6). P. 68–84.
26. Sano T., Morita N., Shima N., Akimoto M. A preliminary report on pathogenicity and oncogenicity of cyprinid herpesvirus // Bull. Eur. Assoc. Fish Pethol. 1990. V. 10(1). P. 11–13.
27. Sudarev R.V., Starovoitov V.K. Tumour-like infection of cyprinid fish (Cyprinidae) from Curonian Lagoon (the Baltic Sea) // Bull. Scandinav. Soc. parasitol. with Proc. Symp. ecol. parasitol. 2000. V. 10. № 2. P. 132.
28. Vainikka A., Kortet R., Taskinen J. Epizootic cutaneous papillomatosis, cortisol and male ornamentation during and after breeding in the roach Rutillus rutillus // Diseases aquat. organisms. 2004. V. 60. P. 189–195.
Е.И. Извеков, В.А. Непомнящих
Асимметрия поведенческой реакции плотвы Rutilus rutilus (L.) (Teleostei: Cyprinidae) на незнакомый объект.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: eiizvekov@gmail.com
У молоди плотвы Rutilus rutilus (L.) (Cyprinidae) обнаружена асимметрия поведенческой реакции на модель более крупной рыбы, которую плотва видит за барьером. Асимметрия заключается в том, что плотва предпочитает обходить барьер справа, если за ним находится модель. В отсутствие модели достоверной асимметрии не наблюдается. Сравнение с литературными данными показывает, что асимметрия реакции плотвы соответствует обнаруженной ранее асимметрии других стайных рыб сем. Cyprinidae, которые в присутствии модели также предпочитают обходить барьер справа. Этим карповые рыбы отличаются от представителей некоторых других семейств, для которых характерны левосторонняя асимметрия или же ее отсутствие. Полученные результаты подтверждают предположение о связи направления поведенческой асимметрии с таксономическим положением рыб. Неясно, связана ли асимметрия обхода барьера у плотвы с функциональной асимметрией зрительного анализатора, как у некоторых других рыб, или же с моторной асимметрией, которая проявляется в присутствии незнакомого потенциально опасного объекта.
Ключевые слова: функциональная асимметрия, поведение, рыбы, Rutilus rutilus.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Извеков Е.И., Непомнящих В.А. Асимметрия начальной стадии реакции избегания у плотвы (Rutilus rutilus) при воздействии переменным электрическим током // Изв. РАН. Сер. биол. 2008. № 1. С. 39–45.
2. Извеков Е.И., Непомнящих В.А. Сравнение двух видов функциональной асимметрии у плотвы Rutilus rutilus (Teleostei: Cyprinidae) // Журн. эвол. биохим., физиол. 2010. Т. 46. № 1. C. 59–65.
3. Лещева Т.С., Жуйков А.Ю. Обучение рыб: экологические и прикладные аспекты. М.: Наука, 1989. 109 с.
4. Михайлова Г.З., Павлик В.Д., Тирас Н.Р., Мошков Д.А. Корреляция размеров маутнеровских нейронов с предпочтением золотых рыбок поворачиваться вправо или влево // Морфология. 2005. Т. 127. C. 16–19.
5. Непомнящих В.А., Извеков Е.И. Асимметрия поведенческих реакций костистых рыб: наследование, адаптивное значение и морфофункциональные корреляты // Вопр. ихтиологии. 2007. Т. 47. № 6. С. 827–836.
6. Andrew R.J. Origins of asymmetry in the CNS // Seminars in Cell and Developmental Biology. 2009. V. 20. P. 485–490.
7. Andrew R.J., Dharmaretna M., Györi B. et al. Regulation of use of lateralised brain specialisations by changes in viewing that recur with precise periodicity // Behav. Brain Res. 2009. V. 196. P. 99–105.
8. Andrew R.J., Rogers L.J. The nature of lateralisation in tetrapods // Comparative brain lateralization. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 2002. P. 94–125.
9. Bisazza A., Cantalupo C., Capocchiano M., Vallortigara G. Population lateralisation and social behaviour: A study with 16 species of fish // Laterality. 2000. V. 5. P. 269–284.
10. Bisazza A., Dadda M., Cantalupo C. Further evidence for mirror-reversed laterality in lines of fish selected for leftward or rightward turning when facing a predator model // Behav. Brain Res. 2005. V. 156. P. 165–171.
11. Bisazza A., Dadda M., Facchin L., Vigo F. Artificial selection on laterality in the teleost fish Girardinus falcatus // Behav. Brain Res. 2007. V. 178. P. 29–38.
12. Bisazza A., Facchin L., Vallortigara G. Heritability of lateralization in fish: concordance of right-left asymmetry between parents and offspring // Neuropsychologia. 2000. V. 38. P. 907–912.
13. Bisazza A., Pignatti R., Vallortigara G. Detour tests reveal task- and stimulus-specific behavioural lateralization in mosquitofish (Gambusia holbrooki) // Behav. Brain Res. 1997. V. 89. P. 237–242.
14. Bisazza A., Pignatti R., Vallortigara G. Laterality in detour behaviour: interspecific variation in poeciliid fishes // Anim. Behav. 1997. V. 54. P. 1273–1281.
15. Bisazza A., Sovrano V. A., Vallortigara G. Consistency among different tasks of left-right asymmetries in lines of fish originally selected for opposite direction of lateralization in a detour task // Neuropsychologia. 2001. V. 39. P. 1077–1085.
16. Conover W.J. Practical Nonparametric Statistics. N.Y.: John Wiley and Sons, 1999. 584 p.
17. Dadda M., Zandona E., Agrillo C., Bisazza A. The costs of hemispheric specialization in a fish // Proc. R. Soc. B. 2009. V. 276. P. 4399–4407.
18. Facchin L., Bisazza A., Vallortigara G. What causes lateralization of detour behaviour in fish? Evidence for asymmetries in eye use // Behav. Brain Res. 1999. V. 103. P. 229–234.
19. Glover T., Mitchell K. An Introduction to Biostatistics. Boston: McGraw-Hill, 2002. 416 p.
20. Heuts B. A. Lateralization of trunk muscle volume, and lateralization of swimming turns of fish responding to external stimuli // Behav. Proc. 1999. V. 47. P. 113–124.
21. Miklòsi A., Andrew R.J. Right eye use associated with decision to bite in zebra fish // Behav. Brain Res. 1999. V. 105. P. 199–205.
22. Miklosi A., Andrew R.J., Gasparini S. Role of right hemifield in visual control of approach to target in zebra fish // Behav. Brain Res. 2001. V. 122. P. 57–65.
23. Miklòsi A., Andrew R.J., Savage H. Behavioural lateralisation of the tetrapod type in the zebrafish (Brachydanio rerio) // Physiol. Behav. 1997. V. 63. P. 127–135.
24. Rogers L.J. Laterality in animals // Int. J. Comp. Psychol. 1989. V. 3. P. 5–25.
25. Takeuchi Y., Hori M., Myint O., Kohda M. Lateral bias of agonistic responses to mirror images and morphological asymmetry in the Siamese fighting fish (Betta splendens) // Behav. Brain Res. 2010. V. 208. P. 106–111.
26. Vallortigara G., Bisazza A. How ancient is brain lateralization? // Comparative vertebrate lateralization. The evolution of brain lateralization. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 2002. P. 9–69.
Г.А. Папченкова, А.В. Макрушин
Влияние инсектицида Танрек® на репродукцию и жизнедеятельность Daphnia magna Straus в 15-суточном тесте.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: gala_al@mail.ru
Исследовано влияние инсектицида Танрек® в концентрациях 3.0·10-7, 3.0·10-2 и 3.0·10-1 мг/л (в пересчете на имидаклоприд) на Daphnia magna Straus. Выявлено острое токсическое действие инсектицида Танрек в концентрации 3.0·10-1 мг/л и угнетающее действие в концентрациях 3.0·10-2 и 3.0·10-7 мг/л. Обнаружен повреждающий эффект инсектицида в период раннего развития рачков, выраженный в блокировке роста ооцитов, нарушении функционирования кишечника, замедлении роста тела, патологических изменениях тканей.
Ключевые слова: Танрек, имидаклоприд, Daphnia magna.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. ГН 1.2.1323-03. Гигиенические нормативы содержания пестицидов в объектах окружающей среды (перечень). М.: Минздрав России, 2003. 79 с.
2. Давыдовский И.В. Общая патология человека. М.: Медицина, 1969. 610 с.
3. Илларионов А.И., Деркач А.А. Токсичность и степень опасности неоникотиноидов для медоносной пчелы // Агрохимия. 2008. № 10. С. 74–81.
4. Инсектицид Танрек®. Презентация фирмы Август "Быстрый эффект и длительное воздействие" // http://www.firm-august.ru/product/?country=rf&drug_type=73&drug_id=1082.
5. Костина М.Н., Мальцева М.М., Лопатина Ю.В. и др. Имидаклоприд – новая субстанция для разработки инсектицидных препаратов в России // Дезинфекционное дело. 2004. № 3. С. 50–53.
6. Кривощеков С.Г., Леутин В.П., Диверт В.Э. и др. Системные механизмы адаптации и компенсации // Бюл. Сиб. отд. РАМН. 2004. № 2. С 128–153.
7. Лесников Л.А. Методика оценки влияния воды из природных водоемов на Daphnia magna Straus // Методики биологических исследований по водной токсикологии. М.: Наука, 1971. С. 157–166.
8. Макрушин А.В. Применение гистологической методики в токсикологических исследованиях на дафниях // Изв. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1974. Т. 98. С. 40–43.
9. Макрушин А.В. Гистопатологическое обследование некоторых ветвистоусых ракообразных Рыбинского водохранилища // Зоол. журн. 1995. Т. 74. № 9. С. 128–130.
10. Макрушин А.В., Голубков С.М. Гистопатологическое обследование Cladocera (Crustacea) из восточной части Финского залива // Региональная экология. 2010. № 4 (30). С. 31–39.
11. Орбели Л.О. Эволюционный принцип в физиологии // Проблемы советской физиологии, биохимии и фармакологии. VII Всесоюз. съезд физиологов, биохимиков и фармакологов. М.: Изд-во АН СССР, 1949. Кн. 1. С. 8–13.
12. Папченкова Г.А. Влияние инсектицида Кинмикс на молодь Daphnia magna Straus (Cladocera) // Токсикол. вестн. 2011. № 4. С. 41–45.
13. Папченкова Г.А., Голованова И.Л., Ушакова Н.В. Репродуктивные показатели, размеры и активность гидролаз Daphnia magna в ряду поколений при действии гербицида "Раундап"// Биология внутр. вод. 2009. № 3. С. 105–110. (Papchenkova G.A., Golovanova I.L., Ushakova N.V. The Parameters of Reproduction, Sizes, and Activities of Hydrolases in Daphnia magna Straus of Successive Generations Affected by Roundup Herbicide // Inland Water Biology. 2009. V. 2. № 3. P. 286–291. DOI: 10.1134/S1995082909030158).
14. Папченкова Г.А., Гребенюк Л.П. Влияние сублетальных концентраций гербицида "Раундап" на размеры, плодовитость и морфологические параметры Daphnia magna Straus (Cladocera) // Токсикол. вестн. 2008. № 4. С. 27–30.
15. Саркисов Д.С. О применении пластических масс в гистологической технике. Л.: Изд-во Военно-мор. мед. акад., 1951. 16 с.
16. Симонович Е.И., Казадаев А.А. Биологическая эффективность применения средств защиты растений (регент – 800, актара, конфидор) от колорадского жука на картофеле в условиях Ростовской области // Докл. Рос. акад. с.-х. наук. 2010. № 2. С. 30–31.
17. Сярки М.Т., Калинкина Н.М. Оценка влияния лигносульфоната натрия на состояние природных и лабораторных популяций ветвистоусых ракообразных // Биология внутр. вод. 2010. № 4. С. 80–86. (Syarki M.T., Kalinkina N.M. Assessment of the Effect that Sodium Lignosulfonate, the Main Component of Wastewaters of Pulp and Paper Industry, has on the State of Natural and Laboratory Cladoceran Populations // Inland Water Biology. 2010. V. 3. № 4. P. 369–387. DOI: 10.1134/S1995082910040115).
18. Токсикологические методы контроля // Методика определения токсичности воды по смертности и изменению плодовитости дафний. М.: Гос. комитет РФ по охране окружающей среды, 1999. 35 с.
19. Mehlhorn H., Mencke N., Hansen O. Effects of imidacloprid on adult and larval stages of the flea Ctenocephalides felis after in vivo and in vitro application: a light- and electron-microscopy study // Parasitol. Res. 1999. V. 85. P. 625–637.
20. Pautou M.-P., Rey D., Meyran J.-C. Toxisity of vegetable tannins on Crustacea associated with alpine mosquito breeding sites // Ecotoxicol. and Environ. safety. 2000. V. 47. № 3. P. 323–332.
21. Peters R.H., De Bernardi R. Daphnia // Mem. Ist. Ital. Idrobiol. 1987. V. 45. 502 p.
22. Rey D., Long A., Pauton M.P. et al. Comparative histopathology of some Diptera and Crustacea of aquatic alpine ecosystems after treatment with Bacillus thuringiens var. israelensis // Entomol. exp. et appl. 2004. V. 88. № 3. P. 255–263.
23. Zanuncio J.C., Jusselino-Filho P., Ribeiro R. et al. Hormetic Responses of a Stinkbug Predator to Sublethal Doses of Pyrethroid // Bull. Environ. Contam. and Toxicol. 2011. V. 87. № 6. P. 608–614.
А.И. Аминов, И.Л. Голованова, А.А. Филиппов
Влияние гербицида Раундап на активность гликозидаз в организме беспозвоночных животных и молоди рыб.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: golovan@ibiw.yaroslavl.ru
Исследована активность мальтазы, сахаразы и амилолитической активности в целом организме беспозвоночных и молоди рыб при действии in vitro гербицида Раундап в концентрации 0.1–50 мкг/л. Гликозидазы у беспозвоночных менее чувствительны к действию гербицида, чем у молоди рыб. Раундап оказывает больший ингибирующий эффект на активность гликозидаз в тканях реальной жертвы (плотвы, извлеченной из желудка щуки) по сравнению с потенциальной жертвой (плотвой из водоема). Величина и направленность эффектов зависят от вида животных и концентрации токсиканта.
Ключевые слова: гербицид, Раундап, рыбы, беспозвоночные, пищеварительные ферменты, гликозидазы.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Голованова И.Л., Кузьмина В.В., Урванцева Г.А. и др. Влияние меди и цинка на активность карбогидраз у молоди карпа и личинок хирономид // Современные проблемы водной токсикологии: Матер. Всерос. конф. Борок; Ярославль, 2002. С. 34–35.
2. Голованова И.Л., Папченкова Г.А. Влияние гербицида Раундап на активность карбогидраз рачкового зоопланктона и молоди плотвы // Токсикол. вестн. 2009. № 4. С. 32–35.
3. Голованова И.Л., Таликина М.Г. Влияние низких концентраций хлорофоса в период раннего индивидуального развития на пищеварительные карбогидразы сеголетков плотвы Rutilus rutilus // Вопр. ихтиологии. 2006. Т. 46. № 3. С. 412–416. (Golovanova I.L., Talikina M.G. On the impact of low concentrations of chlorophos in the period of early ontogenesis on digestive carbohydrases of underyearlings of roach Rutilus rutilus // J. Ichthyol. 2006. V. 46. № 5. P. 404–408. DOI: 10.1134/S0032945206050079).
4. Голованова И.Л., Таликина М.Г., Филиппов А.А. и др. Влияние сверхмалых концентраций N-метил-N’-нитро-N-нитрозогуанидина на ранний онтогенез плотвы Rutilus rutilus: Активность карбогидраз и кинетические характеристики гидролиза углеводов в кишечнике сеголетков // Вопр. ихтиологии. 2008. Т. 48. № 2. С. 276–283. (Golovanova I.L., Talikina M.G., Filippov A.A. et al. Effect of ultralow сoncentrations of N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine upon early development in roach (Rutilis rutilus): intestine carbohydrase activities and kinetic characteristics of carbohydrate hydrolysis in the intestine of underyearlings // J. Ichthyol. 2008. V. 48. № 3. P. 268–274. DOI: 10.1134/S0032945208030090).
5. Голованова И.Л., Филиппов А.А., Аминов А.И. Влияние гербицида Раундап in vitro на активность карбогидраз молоди рыб // Токсикол. вестн. 2011. № 5. С. 31–35.
6. Жиденко А.А., Бибчук Е.В. Изменения биохимических показателей в печени карпа в условиях действия Раундапа // Современные проблемы теоретической и практической ихтиологии: Тез. II междунар. науч.-практ. конф. Севастополь, 2009. С. 50–52.
7. Жиденко А.А., Бибчук Е.В., Кривопишина В.В., Барбухо Е.В. Изменения энергетических показателей печени карпа в условиях гербицидной нагрузки разной интенсивности // Экологические проблемы пресноводных рыбохозяйственных водоемов России: Матер. Всерос. науч. конф. СПб., 2011. С. 167–171.
8. Кузьмина В.В. Вклад индуцированного аутолиза в процессы пищеварения вторичных консументов на примере гидробионтов // Докл. РАН. 2000. Т. 339. № 1. С. 172–174.
9. Папченкова Г.А. Исследование хронической токсичности гербицида "Раундап" в ряду поколений Daphnia magna // Токсикол. вестн. 2007. № 5. С. 14–17.
10. Папченкова Г.А., Голованова И.Л., Ушакова Н.В. Репродуктивные показатели, размеры и активность гидролаз у Daphnia magna в ряду поколений при действии гербицида "Раундап" // Биология внутр. вод. 2009. № 3. С. 105–110. (Papchenkova G.A., Golovanova I.L., Ushakova N.V. The parameters of reproduction, sizes, and activities of hydrolases in Daphnia magna Straus of successive generations affected by Roundup herbicide // Inland Water Biology. 2009. V. 2. № 3. P. 286–291. DOI: 10.1134/S1995082909030158).
11. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н. Определение активности инвертазы и других дисахаридаз // Исследование пищеварительного аппарата у человека. Л.: Наука, 1969. С. 192–196.
12. Cattaneo R., Clasen B., Loro V.L. et al. Toxicological responses of Cyprinus carpio exposed to a commercial formulation containing glyphosate // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 87. № 6. P. 597–602.
13. Cox С. Glyphosate // J. pesticide reform. 2004. V. 24. № 4. P. 10–15.
14. Dimetrio P.M., Bulus Rossini G.D., Bonetto C.A., Ronco A.E. Effects of pesticide formulations and active ingredients on the Coelenterate Hydra attenuata (Pallas, 1766) // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 88. № 1. P. 597–602.
15. el-GendyK.S., Aly N.M., el-Sebae A.H. Effects of edifenphos and glyphosate on the immune response and protein biosintesis of bolti fish (Tilapia nilotica) // J. Environ. Sci. Heals. 1998B. V. 133. № 2. P. 135–149.
16. Folmar L.C., Sanders H.O., Julin A.M. Toxicity of the herbicide glyphosate and several of its formulations to fish and aquatic invertebrates // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1979. V. 8. № 3. P. 269–278.
17. Giesy J.P., Dobson S., Solomon K.R. Ecotoxicological risk assessment for Roundup herbicide // Rev. Environ. Contam. Toxicol. 2000. V. 167. P. 35–120.
18. Glusczak L., Miron D. dos S., Crestani M. et al. Effect of glyphosate herbicide on acetylcholinesterase activity and metabolic and hematological parameters in piava (Leporinus obtusidens) // Ecotoxicol. Environ. Safety. 2006. V. 65. № 2. P. 237–241.
19. Glusczak L., Miron D. dos S., Moraes B.S. et al. Acute effects of glyphosate herbicide on metabolic and enzymatic parameters of silver catfish (Rhamdia quelen) // Comp. Biochem. Physiol. 2007C. V. 146. № 4. P. 519–524.
20. Grisolia C.K. A comparison between mouse and fish micronucleus test using cyclophosphamide, mitomycin C and various pesticides // Mutat. Res. 2002. V. 518. № 2. P. 145–150.
21. Jiraungkoorskul W., Upatham E.S., Kruatrachue M. et al. Biochemical and histopathological effects of glyphosate herbicide on Nile tilapia (Oreochromis niloticus) // Environ. Toxicol. 2003. V. 18. № 4. P. 260–267.
22. Langiano V.C., Martinez C.B.R. Toxicity and effects of a glyphosate-based herbicide on the neotropical fish Prochilodus lineatus // Comp. Biochem. Physiol. 2008C. V. 147. № 2. P. 222–231.
23. Lushchak O.V., Kubrak O.I., Storey J.M. et al. Low toxic herbicide Roundup induces mild oxidative stress in goldfish tissues // Chemosphere. 2009. V. 52. № 7. P. 932–937.
24. Modesto K.A., Martinez C.B.R. Roundup causes oxidative stress in liver and inhibits acetylcholinesterase in muscle and brain of the fish Prochilodus lineatus // Chemosphere. 2010. V. 78. № 3. P. 294–299.
25. Necković N.K., Polecsić V., Elezovic I. et al. Biochemical and histopathological effects of glyphosate on carp, Cyprinus carpio L. // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1996. V. 56. № 2. P. 295–302.
26. Peixoto F. Comparative effects of the Roundup and glyphosate on mitochondrial oxidative phosphorylation // Chemosphere. 2005. V. 61. № 8. P. 1115–1122.
27. Rossi S.C., da Silva M.D., Piancini L.D.S. et al. Sublethal effects of waterborne herbicides in tropical freshwater fish // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2011. V. 87. № 6. P. 603–607.
28. Smith E.A., Oehme F.W. The biological activity of glyphosate to plants and animals: A literature review // Vet. Hum. Toxicol. 1992. V. 34. № 6. P. 531–543.
29. Sokal R.R., Rolf F.J. Biometry. The principals and practice of statistics in biological research. N.Y.: W.H. Freeman and Co, 1995. 887 p.
30. Szarek J., Siwisci A., Andrzejewska A. et al. Effects of herbicide Roundup on the ultrastructural pattern of hepatocytes in carp (Cyprinus carpio) // Mar. Environ. Res. 2000. V. 50. № 1–5. P. 263–266.
31. Tate T.M., Spurlock J.O., Christian F.A. Effect of Glyphosate on the Development of Pseudosuccinea columella Snails // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1997. V. 33. № 3. P. 286–289.
32. Tierney K.B., Singh C.R., Ross P.S., Kennedy C.J. Relating olfactory neurotoxicity to altered olfactory-mediated behaviors in rainbow trout exposed to three currently-used pesticides // Aquat. Toxicol. 2007. V. 81. P. 55–64.
33. Tsui M.T.K., Chu L.M. Aquatic toxicity of glyphosate-based formulations: comparison between different organisms and the effects of environmental factors // Chemosphere. 2003. V. 52. № 7. P. 1189–1197.
О.Ф. Филенко, Е.Ф. Исакова, Д.М. Гершкович
Стимуляция жизненных процессов у Ceriodaphnia affinis Lilljeborg (Crustacea, Anomopoda) при действии низких концентраций потенциально токсичных веществ.
Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, 119991 Москва, Ленинские горы, д. 1, стр. 12
e-mail: ofilenko@mail.ru
Исследовано влияние этилового спирта, хлористого калия и бихромата калия на продолжительность жизни и размножение рачка Ceriodaphnia affinis Lilljeborg в эксперименте. Установлено увеличение средней продолжительности жизни и суммарной плодовитости самок при действии этанола в концентрациях 0.002 и 0.02 мг/л и при 0.1 мг/л хлористого калия. Из всего спектра концентраций бихромата калия только концентрация 0.0001 мг Cr/л вызывала увеличение продолжительности жизни до 108% контроля. Обсуждена возможная причина наблюдаемого явления и отмечено его возможное экологическое значение.
Ключевые слова: Ceriodaphnia affinis, средняя продолжительность жизни, этиловый спирт, бихромат калия, хлористый калий, гормезис.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Врочинский к.к., щербаков ю.а. Оценка действия вещества на водные организмы с учетом фазности токсичности // Теоретические проблемы водной токсикологии. Норма и патология. М.: Наука, 1983. С. 36–43.
2. Исакова Е.Ф., Юклеевских М.Ю. Cезонные изменения резистентности лабораторной культуры D. magna Str. к бихромату калия // Биология внутр. вод. 1998. № 3. С. 76–82.
3. Методические указания по установлению эколого-рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ) загрязняющих веществ для воды водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение. М.: Всерос. НИИ рыб. хоз-ва и океаногр., 1998. 147 с.
4. Селье Г. Очерки об адаптационном синдроме. М.: Медицина, 1960. 256 с.
5. Филенко О.Ф. Динамика эффекта загрязняющих веществ в экотоксикологии // Токсикол. вестн. 2001. № 2. С. 2–6.
6. Филенко О.Ф., Исакова Е.Ф. Компенсаторные изменения в ответе дафний на летальные воздействия // Реакции гидробионтов на загрязнения. М.: Наука, 1983. С. 135–139.
7. Filenko O.F., Isakova E.F., Gershkovich D.M. The lifespan of the сladoceran Ceriodaphnia affinis Lilljeborg in a laboratory culture // Inland Water Biology. 2011. V. 4. № 3. P. 283–286. DOI: 10.1134/s 1995082911030060.
8. Gama-Flores J.L., Castellanos-Paez M.E., Sarma S.S., Nandini S. Life table demography of Ceriodaphnia dubia (Cladocera) exposed to copper at different levels and periods // J. Environ. Biol. 2007. V. 28. № 3. P. 691–698.
9. Kolts J.M., Boese C.J., Meyer J.S. Effects of dietborne copper and silver on reproduction by Ceriodaphnia dubia // Environ. Toxicol. and Chem. 2009. V. 28. № 1. P. 71–85.
10. Laughlin R.B.Jr., Ng J., Guard H.E. Hormesis: a response to low environmental concentrations of petroleum hydrocarbons // Science. 1981. V. 211. P. 705–707.
11. Stebbing A.R.D. Hormesis – stimulation of colony growth in Companularia flexuosa (Hyrozoa) by copper, cadmium and other toxicants // Aquat. Toxicol. 1981. V. 1. № 3. P. 227–238.
12. Steevens J.A., Duke B.M., Lotufo G.R., Bridges T.S. Toxicity of the explosives 2,4,6-trinitrotoluene, hexahdro-1,3,5-trinitro-1,3,5-triazine, and octahydro-1,3,5,7-tetranitro-1,3,5,7-tetrazocine in sediments to Chironomus tentas and Hyalella azteca: low-dose hormesis and high-dose mortality // Environ. Toxicol. and Chem. 2002. V. 21. P. 1475–1482.
И.А. Столбунов, М.И. Малин, Д.П. Карабанов
Находка бычка-кругляка Neogobius melanostomus (Pallas, 1814) в Рыбинском водохранилище.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: sia@ibiw.yaroslavl.ru
Приведены данные о находке самки бычка-кругляка в июне 2010 г. в приплотинном участке Главного (Центрального) плеса Рыбинского водохранилища. Наличие зрелых половых продуктов может свидетельствовать о возможности успешной акклиматизации этого вида в Рыбинском водохранилище.
Ключевые слова: бычок-кругляк, Neogobius melanostomus, Рыбинское водохранилище.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Атлас пресноводных рыб России. М.: Наука, 2003. Т. 2. 253 с.
2. Берг Л.С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1949. Т. 3. С. 926–1382.
3. Гавлена Ф.К. Каспийский бычок-кругляк Neogobius melanostomus affinis (Eichwald) – новый элемент ихтиофауны Средней Волги // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1970. № 6. С. 44–45.
4. Евланов И.А., Козловский С.В., Антонов П.И. Кадастр рыб Самарской области. Тольятти: Ин-т экологии Волж. бассейна РАН, 1998. 222 с.
5. Иванова М.Н., Касьянов А.Н. О находке бычка-кругляка Neogobius melanostomus (Pallas) (сем. Gobiidae) в пище налима Lota lota (L.) Рыбинского водохранилища // Биология внутр. вод. 2011. № 3. С. 88–91.
6. Москалькова К.И. Экологические и морфофизиологические предпосылки к расширению ареала у бычка-кругляка Neogobius melanostomus в условиях антропогенного загрязнения водоемов // Вопр. ихтиологии. 1996. Т. 36. Вып. 5. С. 615–621.
7. Соколов Л.И., Соколова Е.Л., Пегасов В.А. и др. Ихтиофауна реки Москвы в черте г. Москвы и некоторые данные о ее состоянии // Вопр. ихтиологии. 1994. Т. 34. Вып. 5. С. 634–641.
8. Шемонаев Е.В., Кириленко Е.В. Некоторые черты биологии бычка-кругляка Neogobius melanostomus (Perciformes, Gobiidae) в водах Куйбышевского водохранилища // Вопр. ихтиологии. 2009. Т. 49. Вып. 4. С. 483–487.
9. Copp G.H., Bianco P.G., Bogutskaya N.G. et al. To be, or not to be, a non-native freshwater fish? // J. Appl. Ichthyol. 2005. V. 21. P. 242–262.
