Журнал "Биология внутренних вод"
№ 2 за 2015 год
С.И. Генкал*, С.Ф. Комулайнен**
Новые данные к флоре Bacillariophyta рек южного (Поморского) побережья Белого моря (Республика Карелия).
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Институт биологии Карельского научного центра РАН, 185910 г. Петрозаводск, ул. Пушкинская, 11
e-mail: genkal@ibiw.yaroslavl.ru
Изучение фитоперифитона восьми рек южного (Поморского) побережья Белого моря с помощью сканирующей электронной микроскопии выявило >200 таксонов Bacillariophyta видового и внутривидового рангов. Среди них 36 видов и разновидностей – новые для флоры Карелии, в том числе 19 – для флоры России, 23 формы определены до рода. Максимальное видовое богатство отмечено в реках Урокса и Шоба. К наиболее распространенным в исследованных реках относятся виды Eunotia implicatа Nörpel-Schempp et Lange-Bertalot, Gomphonema parvulum (Kützing) Grunow, Rossithidium linearis (W. Smith) Round et Bukhtiyarova, Aulacoseira subarctica (O. Müller) Haworth, Frustulia erifuga Lange-Bertalot et Krammer.
Ключевые слова: фитоперифитон, Bacillariophyta, реки, Республика Карелия, электронная микроскопия.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Балонов И.М. Подготовка диатомовых и золотистых водорослей к электронной микроскопии // Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. М.: Наука, 1975. С. 87–90.
2. Белое море и его водосбор под влиянием климатических и антропогенных факторов. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН, 2007. 334 с.
3. Вислянская И.Г. Фитопланктон // Современное состояние водных объектов Республики Карелия. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН, 1998. С. 112–115.
4. Вислянская И.Г. Фитопланктон // Состояние водных объектов Республики Карелия. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН, 2007. С. 147–151.
5. Комулайнен С.Ф. Методические рекомендации по изучению фитоперифитона в малых реках. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН, 2003. 43 с.
6. Комулайнен С.Ф. Экология фитоперифитона малых рек Восточной Фенноскандии. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН, 2004. 182 с.
7. Комулайнен С.Ф., Круглова А.Н., Барышев И.А. Структура и функционирование сообществ водных организмов в реках южного (Поморского) побережья Белого моря // Тр. Кольск. науч. центра РАН. 2012. Вып. 1. С. 109–126.
8. Комулайнен С.Ф., Чекрыжева Т.А., Вислянская И.Г. Альгофлора озер и рек Карелии. Таксономический состав и экология. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН, 2006. 78 с.
9. Ресурсы поверхностных вод СССР. Т. 2: Карелия и Северо-Запад. Л.: Гидрометеоиздат, 1972. 525 с.
10. Чекрыжева Т.А. Фитопланктон и оценка сапробности водоемов озерно-речных систем Карельского и Поморского побережий Белого моря // Исследование некоторых элементов экосистемы Белого моря и его бассейна: Оперативно-информационные материалы. Петрозаводск: Изд-во Карельск. фил. АН СССР, 1985. С. 37–40.
11. Komulaynen S.F. Algological studies of fluvio-lacustrine systems in the northern European part of Russia // Int. J. Algae. 2007. № 2. P. 139–149.
12. Krammer K. Diatoms of Europe. V. 1: Pinnularia. Ruggell: A.R.G. Gantner Verlag K.G., 2000. 703 p.
13. Krammer K. Diatoms of Europe. V. 3: Cymbella. Ruggell: A.R.G. Gantner Verlag K.G., 2002. 584 p.
14. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 1: Naviculaceae // Süsswasserflora von Mitteleuropa. Jena: VEB Gustav Fischer Verlag, 1986. Bd 2/1. 876 S.
15. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 2: Epithemiaceae, Bacillariaceae, Surirellaceae. Jena: VEB Gustav Fischer Verlag, 1988. Bd 2/2. 536 S.
16. Krammer K., Lange-Bertalot H. Bacillariophyceae. Teil 4: Achnanthaceae, Kritische Erganzungen zu Navicula (Lineolatae) und Gomphonema. Jena: VEB Gustav Fischer Verlag, 1991. Bd 2/4. 437 S.
17. Lange-Bertalot H., Bak M., Witkowski A. Diatoms of Europe. V. 6: Eunotia and some related genera. Ruggell: A.R.G. Gantner Verlag K.G., 2011. 747 p.
Ж.В. Корнева*, Н.М. Пронин**
Тонкое строение копулятивного аппарата Nippotaenia mogurndae Yamaguti et Miyato, 1940 (Cestoda, Nippotaeniidea).
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Институт общей и экспериментальной биологии СО РАН, 670047 г. Улан-Удэ, ул. Сахьяновой, 6
e-mail: janetta@ibiw.yaroslavl.ru
Методом трансмиссионной электронной микроскопии изучено тонкое строение копулятивного аппарата Nippotaenia mogurndae Yamaguti et Miyato. Описаны строение сумки цирруса и полового атриума, ультраструктурная организация половых протоков копулятивного аппарата, а также одноклеточных предстательных желез, локализованных в сумке цирруса. На поверхности эпителия атриума наблюдаются трубчатые и конусовидные микротрихии, аналогичные тегументальным микротрихиям. Установлено отсутствие микротрихий на апикальной поверхности эпителия цирруса и вагины, а также увеличение количества слоев подстилающей мускулатуры у этих протоков по сравнению с другими отделами копулятивного аппарата. На основании особенностей строения копулятивных аппаратов, а также поведения и биологии N. mogurndae сделан вывод о возможности перекрестного оплодотворения за счет активной подвижности отделившихся от стробилы члеников с развитыми половыми комплексами и не сформированной маткой. Приведен сравнительный анализ особенностей строения копулятивных аппаратов и их вооружения у цестод из различных отрядов.
Ключевые слова: Cestoda, Nippotaenia mogurndae, половая система, копулятивный аппарат, ультраструктура.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Беклемишев В.Н. Основы сравнительной анатомии беспозвоночных. Т. 2: Органология. М.: Наука, 1964. 446 с.
2. Галактионов К.В., Добровольский А.А. Гермафродитное поколение трематод. Л.: Наука, 1987. 192 с.
3. Гуляев В.Д., Корниенко С.А. О причинах и механизмах возникновения миниатюрных полимерных Hymenolepididae (Cyclophyllidea, Cestoda) – паразитов бурозубок // Тр. Зоол. ин-та РАН. 2009. Т. 313. № 3. С. 249–256.
4. Давыдов В.Г. К вопросу о структуре, функции и происхождении тегумента у представителей Cercomeromorpha // Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 1991. Т. 241. С. 138–152.
5. Давыдов В.Г., Корнева Ж.В. Строение копулятивного аппарата Sobolevicanthus gracilis (Cestoda: Cyclophyllidea) // Паразитология. 2002. Т. 36. № 3. С. 224–230.
6. Давыдов В.Г., Поддубная Л.Г., Колесникова Г.А. Ультраструктура протоков половой системы Caryophyllaeus laticeps // Паразитология. 1994. Т. 28. № 6. C. 501–509.
7. Давыдов В.Г., Поддубная Л.Г., Куперман Б.И. Ультраструктура некоторых систем органов Diplocotyle olrikii (Cestoda: Cyathocephalata) в связи с особенностями его жизненного цикла // Паразитология. 1997. Т. 31. № 2. С. 132–141.
8. Зоология беспозвоночных. Т. 1: От простейших до моллюсков и артропод. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2008. 512 с.
9. Иванов А.В., Мамкаев Ю.В. Ресничные черви (Turbellaria), их происхождение и эволюция: Филогенетические очерки. Л.: Наука, 1973. 222 с.
10. Корнева Ж.В. Ультраструктура мужской половой системы у трех протеоцефалидных цестод // Зоол. журн. 2001. Т. 80. № 8. С. 921–928.
11. Корнева Ж.В. Тонкая структура половой системы Nippotaenia mogurndae (Cestoda: Nippotaeniidea) // Зоол. журн. 2002. Т. 81. № 3. С. 266–275.
12. Корнева Ж.В. Ультраструктурная организация репродуктивной системы Triaenophorus nodulosus (Cestoda) // Зоол. журн. 2002. Т. 81. № 12. С. 1432–1438.
13. Корнева Ж.В. Тонкое строение женской репродуктивной системы у Sobolevicanthus gracilis и Cloacotaenia megalops (Cyclophyllidea) // Паразитология. 2004. Т. 38. № 2. С. 150–159.
14. Корнева Ж.В. Ультраструктурная организация и морфогенез мужского копулятивного аппарата у Microsomacanthus sp. (Cestoda, Cyclophyllidea) // Зоол. журн. 2005. Т. 84. № 3. С. 291–300.
15. Корнева Ж.В., Гуляев В.Д., Корниенко С.А. Строение и формирование мужского копулятивного аппарата цестоды Lineolepis scutigera (Cyclophyllidea; Pseudhymenolepidinae) // Зоол. журн. 2009. Т. 88. № 1. С. 3–10.
16. Корнева Ж.В., Давыдов В.Г. Ультраструктура женской половой системы Gangesia parasiluri (Cestoda, Proteocephalidea, Proteocephalidae) // Зоол. журн. 2001. Т. 80. № 2. С. 131– 144.
17. Корнева Ж.В., Корниенко С.А., Гуляев В.Д. Морфология и ультраструктура репродуктивных органов Monocercus arionis (Cestoda: Cyclophyllidea) // Биология внутр. вод. 2011. № 1. С. 26–33.
18. Мамкаев Ю.В. Методы и закономерности эволюционной морфологии // Современная эволюционная морфология. Киев: Наук. думка, 1991. С. 33–55.
19. Мамкаев Ю.В. Дарвинизм и номогенез // Фундаментальные зоологические исследования: Теория и методы. М.; СПб.: Товарищество науч. изданий КМК, 2004. 318 с.
20. Подвязная И.М. Тонкое строение мужской половой системы и генитального атриума паразита летучих мышей Allassogonoporus amphoraeformis (Trematoda: Allassogonoporidae) // Паразитология. 1996. Т. 30. № 3. С. 229–235.
21. Подвязная И.М. Особенности строения мужской половой системы трематод рода Prosthodendrium (Trematoda: Lecithodendriidae) // Паразитология. 1999. Т. 33. № 1. С. 7–12.
22. Поддубная Л.Г. Ультраструктура протоков половой системы Diphyllobothrium latum (Cestoda, Pseudophyllidea): протоки женских репродуктивных органов // Паразитология. 2002. Т. 36. № 1. С. 79–87.
23. Поддубная Л.Г. Ультраструктурная организация протоков мужской половой системы Diphyllobothrium latum (Cestoda, Pseudophyllidea) // Зоол. журн. 2002. Т. 81. № 4. С. 394–405.
24. Поддубная Л.Г. Строение половой системы амфикотилидной цестоды Eubothrium rugosum (Cestoda, Pseudophyllidea) в зависимости от условий обитания // Журн. эвол. биохим. и физиол. 2003. Т. 39. № 3. С. 271–280.
25. Поддубная Л.Г. Ультраструктурная организация репродуктивных органов и протоков прогенетического вида Archigetes sieboldi (Cestoda, Caryophyllidea) // Зоол. журн. 2003. Т. 82. № 9. С. 1038–1050.
26. Поддубная Л.Г. Тонкая морфология сумки цирруса и вагины у прогенетического вида Diplocotyle olrikii (Cestoda: Spathebothriidea) // Паразитология. 2007. Т. 41. № 4. С. 299–308.
27. Пронин Н.М. Об экологических последствиях акклиматизационных работ в бассейне озера Байкал //Биологические ресурсы Забайкалья и их охрана. Улан-Удэ: Бурят. фил. СО АН СССР, 1982. С. 3–18.
28. Пронин Н.М., Болонев Е.М. О современном ареале вселенца ротана Perccotus glenii (Perciformis: Odontobuidae) в Байкальском регионе и проникновение его в экосистему открытого Байкала // Вопр. ихтиологии. 2006. Т. 46. № 4. С. 564–566.
29. Пронин Н.М., Селгеби Д.Х., Литвинов А.Г., Пронина С.В. Сравнительная экология и паразитофауна экзотических вселенцев в Великие озера мира: ротана-головешки (Perccottus giehni) в оз. Байкал и ерша (Gymnocephalus cernuus) в оз. Верхнее // Сиб. экол. журн. 1998. Т. 5. № 5. С. 397–406.
30. Beveridge I., Smith K. An ultrastructural study of the cirrus and vagina of Phyllobothrium vagans // Z. Parasitenkd. 1985. V. 71. № 5. P. 609–616.
31. Davydov V.G, Korneva J.V. Differentiation and structure of a uterus for Nippotaenia mogur1dae Yamaguti et Miato, 1940 (Cestoda: Nippotaeniidea) // Helmintologia. 2000. V. 37. № 2. P. 77–82.
32. Jones M.K. Ultrastructure of the cirrus pouch of Cylindrotaenia hickmani (Cestoda, Nematotaeniidae) // Int. J. Parasitol. 1989. V. 19. № 8. P. 919–930.
33. Jones M.K. Ultrastructure of the male accessory glands and sperm ducts of Cylindrotaenia hickmani (Cestoda, Cyclophyllidea) // Acta Zoologica. 1994. V. 75. № 3. P. 269–275.
34. Gupta B.C., Guraya S.S., Parshad V.B. Morphological and histochemacal studies on prostate gland of developing and adult Paramphistomum cervi (Digenea: Paramphistomatidae) // Int. J. Parasitol. 1983. V. 6. P. 219–228.
35. Hendow H.T., James B.L. The ultrastructure of the male reproductive ducts in Maritrema linguilla (Digenea: Microphallidae) // Int. J. Parasitol. 1988. V. 18. № 2. P. 221–229.
36. Korneva J.V. Ultrastructure of the female genital system in Proteocephalus torulosus and P. exiguus (Cestoda: Proteocephalidea) // Helmithologia. 2001. V. 38. № 2. P. 67–74.
37. Poddubnaya L.G., Mackiewicz J.S. Ultrastructure of the cirrus sac of echinophallid tapeworms (Cestoda, Bothriocephallidea) and the terminology of cirrus hard structures // Int. J. Parasitol. 2008. V. 39. № 3. P. 381–390.
38. Poddubnaya L.G., Mackiewicz J.S., Bruňanská M., Dezfuli B. Fine structure of the male reproductive ducts vagina and seminal receptacle of Cyathocephalus truncatus (Cestoda, Spathebothriidea) // Folia Parasitol. 2005. V. 52. P. 193–204.
39. Poddubnaya L.G., Pospekhova N.A. Ultrastructure of the cirrus sac of the male strobila of Shipleya inermis (Fuhrmann, 1908) (Cestoda: Cyclophyllidea) // Helminthologia. 2011. V. 48. № 3. P. 174–183.
40. Threadgold L.T. Electron microscope studies of Fasciola hepatica: 3. Fine structure of the prostate gland // Exp. Parasitol. 1975. V. 37. № 1. P. 117–124.
41. Williams H.H., McVicar A. Sperm transfer in Tetraphyllidea (Platyhelminthes: Cestoda) // Nytt Magasin for Zoologi. 1968. V. 16. P. 61–71.
42. Wittrock D.D. Histochemical and ultrastructural studies of the prostate gland of Quinqueserialis quinqueserialis (Trematoda: Notocotylidae) // Trans. Amer. Microsc. Soc. 1986. V. 105. № 4. P. 365–375.
В.Г. Гагарин, В.А. Гусаков
Два новых вида свободноживущих нематод рода Dorylaimoides Thorne, Swanger, 1939 из мелких пресных водоемов Вьетнама.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: gagarin@ibiw.yaroslavl.ru
Приведены иллюстрированные описания двух новых видов свободноживущих нематод из рода Dorylаimoides, обнаруженных в мелких пресных водоемах Вьетнама. D. curvicaudatus sp. n. морфологически близок к D. singaporensis Ahmad, Mushtaq, 2004 и D. elongatus Husain, Khan, 1968, но отличается от них более коротким хвостом, более длинным базальным расширением фаринкса, иной длиной преректума у самок и более длинными спикулами у самцов. D. vietnamicus sp. n. морфологически близок к D. leptidus Timm, 1964 и D. elaboratus Siddigi, 1965, но имеет более короткое копье, иные размеры спикул и меньшее число супплементарных органов у самцов.
Ключевые слова: Вьетнам, пресные водоемы, свободноживущие нематоды, Dorylaimoides curvicaudatus sp. n., Dorylaimoides vietnamicus sp. n..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Гагарин В.Г., Гусаков В.А. Два вида дорилаймид (Nematoda, Dorylaimida) из водоемов Вьетнама // Биология внутр. вод. 2013. № 3. С. 1–8.
2. Гагарин В.Г., Гусаков В.А. Два новых вида семейства Actinolaimidae (Nematoda) из водоемов Вьетнама // Зоол. журн. 2013. Т. 92. № 3. С. 359–365.
3. Ahmad W., Mushtaq P. Five new species of Dorylaimoides Thorne et Swanger (Nematoda: Dorylaimida) from Singaporа // Int. J. Nematol. 2004. V. 14. P. 99–110.
4. Andrassy I. Free-living nematodes of Hungary (Nematoda errantia). Budapest: Hugar. Nat. History. Mus. and System. Zool. Res. Group. Hungar. Acad. Sci., 2009. V. 3. 608 p.
5. Biolog catalog: Nematoda, Family Mydonomidae. Entomology at Texas A&M University. Updated 24 March 2008 [cited 12 June 2013]. A vailable from
6. Gagarin V.G., Gusakov V.A. Mesodorylaimus dolichurus sp. nov. (Nematoda, Dorylaimida) from freshwater body of Vietnam // Zoosystematica Rossica. 2012. V. 21. № 2. P. 189–192.
7. Husain S.I., Khan A.M. Basirotyleptus modestus n. sp. and two new species of Dorylaimoides Thorne et Swanger, 1936 from India) // Nematologica. 1968. V. 14. P. 362–368.
8. Nguyễn Vũ Thanh. Guin trón sống tự do Monhysterida, Araeolaimida, Chromadorida, Rhabditida, Enoplida, Mononchida, Dorylaimida. Hà Nội: Nhà xuất bản khoa học và kỹ thuật, 2007. 455 t.
9. Pedram M., Pourjam E., Vinciguerra M.T. Description of Dorylaimoides alborzicus sp.n. (Dotylaimida: Nematoda) from Iran, with updated compendium and key to the species of Dorylaimoides // Zootaxa. 2011. № 3022. P. 56–68.
10. Peña-Santiago R. Dorylaimida. Part I: Superfamilies Belondiroidea, Nygolaimoidea and Tylencholaimoidea // Freshwater Nematodes: Ecology and Taxonomy. Wallingford; Oxfordshire: CABI Publ., 2006. P. 326–391.
11. Siddigi M.R. Five new species of soil nematodes in the genera Dorylaimoides Thorne et Swanger, 1936, and Discolaimium Thorne, 1939 from India // Nematologica. 1965. V. 11. P. 100–108.
12. Thorne G., Swanger H.H. A monograph of the nematode genera Dorylaimus, Aporcelaimus, Dorylaimoides and Pungentus // Capita Zool. 1936. V. 6. № 4. 223 p.
13. Timm R.W. Nematodes of the super family Dorylaimoidea from East Pakistan // Proc. Helminth. Soc. Wash. 1964. V. 31. P. 144–153.
14. Williams D.D., Williams N.E. A counterstaining technique for use in sorting benthic samples // Limnol., Oceanogr. 1974. V. 19. P. 152–154.
Е.В. Федосеева, Д.И. Стом
Реакции предпочтения и избегания некоторых байкальских амфипод и голарктического Gammarus lacustris Sars, 1863 по отношению к гуминсодержащему препарату.
Иркутский государственный университеm, 664003 г. Иркутск, ул. Карла Маркса, 1
e-mail: elenfedoseeva@gmail.com
Изучены реакции преференции и избегания четырех байкальских видов амфипод и голарктического Gammarus lacustris Sars, 1863 на присутствие гуминсодержащего препарата (ГП). Обнаружены различия в поведенческих реакциях амфипод, которых по степени предпочтения ими ГП можно расположить в ряду (по уменьшению): G. lacustris > Gmelinoides fasciatus Stebbing, 1899 ≥ Eulimnogammarus cyaneus (Dybowski, 1974) > E. vittatus (Dybowski, 1874). Глубоководный байкальский вид Ommatogammarus flavus (Dybowski, 1874) не проявлял ни реакций предпочтения, ни избегания на присутствие ГП. Обсуждена возможная взаимосвязь между обнаруженными откликами амфипод, условиями и глубинами их обитания и широтой распространения за пределами оз. Байкал.
Ключевые слова: гуминовые вещества, озеро Байкал, амфиподы, байкальские и голарктические виды, поведенческие реакции, предпочтение, избегание.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Базикалова А.Я. Амфиподы оз. Байкал // Тр. Байкальск. лимнол. cт. АН СССР. 1945. Т. 11. 440 с.
2. Брагинский Л.П., Игнатюк А.А. Визуально фиксируемые реакции пресноводных гидробионтов как экспресс-индикаторы токсичности водной среды // Гидробиол. журн. 2005. Т. 41. № 4. С. 89–103.
3. Вейнберг И.В., Камалтынов Р.М. Сообщества макрозообентоса каменистого пляжа озера Байкал // Зоол. журн. 1998. Т. 7. Вып. 2. С. 158–165.
4. Ветров В.А., Кузнецова А.И. Микроэлементы в природных средах региона озера Байкал. Новосибирск: СО РАН НИЦОИГГМ, 1997. 373 с.
5. Вотинцев К.К., Мещерякова А.И., Поповская В.И. Круговорот органического вещества в озере Байкал. Новосибирск: Наука, 1975. 190 с.
6. Галазий Г.И. Байкал в вопросах и ответах. Иркутск: Вост.-Сиб. книж. изд-во, 1987. 384 с.
7. Камалтынов Р.М. Амфиподы (Amphipoda: Gammaroidea) // Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2001. Т. 1. Кн. 1. С. 572–831.
8. Кожов М.М. Биология озера Байкал. Иркутск: Изд-во АН СССР, 1962. 315 с.
9. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1980. 293 с.
10. Линник П.Н., Васильчук Т.А., Линник Р.П. Гумусовые вещества природных вод и их значение для водных экосистем (обзор) // Гидробиол. журн. 2004. T. 40. № 1. С. 81–107.
11. Стом Д.И., Тимофеев М.А. О реакции избегания Gammarus lacustris Sars байкальской воды // Сиб. экол. журн. 1999. № 6. С. 649–653.
12. Тарасова Е.Н., Мещерякова А.И. Современное состояние гидрохимического режима озера Байкал. Новосибирск: Наука, 1992. 143 с.
13. Тахтеев В.В. Фауна бокоплавов прибрежной зоны Байкала в районе Б. Котов. Иркутск: Изд-во Иркутск. гос. ун-та, 1993. 30 с.
14. Тахтеев В.В. Очерки о бокоплавах озера Байкал (систематика, сравнительная экология, эволюция). Иркутск: Изд-во Иркутск. гос. ун-та, 2000. 350 с.
15. Тимофеев М.А. Экологические и физиологические аспекты адаптации к абиотическим факторам среды эндемичных байкальских и палеарктических амфипод: Автореф. дис. ... докт. биол. наук. Томск, 2010. 44 с.
16. Тимошкин О.А. Озеро Байкал: разнообразие фаун, проблемы ее несмешиваемости и происхождения, экология и “экзотические” сообщества // Аннотированный список фауны озера Байкал и его водосборного бассейна. Новосибирск: Наука, 2001. Т. 1. Кн. 1. С. 16–73.
17. Федосеева Е.В. Сопоставление влияния окислительно-восстановительных условий среды на выживаемость и поведенческие реакции байкальских амфипод и голарктического Gammarus lacusrtis: Автореф. дис. ... канд. биол. наук. М., 2010. 21 с.
18. Флеров Б.А. Эколого-физиологические аспекты токсикологии пресноводных животных. Л.: Наука, 1989. 144 с.
19. Чертопруд М.В. Фауна бокоплавов (Crustacea, Amphipoda) Московской области // Биология внутр. вод. 2006. № 4. С. 17–21.
20. DeGraeve G.M. Avoidance response of rainbow trout to phenol // Prog. Fish-Cult. 1982. V. 44. № 2. Р. 82–87.
21. Fowler J., Cohen L., Jarvis P. Practical statistics for field biology. West Sussex: John Wiley and Sons Ins., 2003. 259 р.
22. Haitzer M., Höss S., Traunspurger W., Steinberg C.E.W. Effect of dissolved organic matter (DOM) on the bioconcentration of organic chemicals in aquatic organisms – a review // Chemosphere. 1998. № 37. Р. 1335–1362.
23. Hayes M.N.B., MacCarthy P., Malcolm R.L., Swift R.S. Humic Substances II // Search of Structure. N.Y.: John-Wiley, 1989. P. 339-372.
24. Kulikova N.A., Stepanova E.V., Koroleva O.V. Mitigating activity of humic substances: direct influence on biota // Use of Humic Sudstances to Remediate Polluted Environments: From Theory to Practice. Dordrecht: Springer, 2005. P. 285–309.
25. Leenher J., Croué J. Characterizing dissolved aquatic organic matter // Environ. Sci. Technol. 2003. V. 37. № 1. Р. 19–26.
26. Lindstrom M., Fortelius W. Swimming behaviour in Monoporeia affinis (Crustacea: Amphipoda) – dependance on temperature and population density // J. Exp. Mar. Biol. and Ecol. 2001. V. 256. № 1. Р. 73–83.
27. Meems N., Steinberg C.E.W., Wiegand C. Direct and interacting toxicological effects on the waterflea (Daphnia magna) by natural organic matter, synthetic humic substances and cypermethrin // Sci. Total Environ. 2004. V. 319. Р. 123–136.
28. Meinelt T., Schreckenbach K., Knopf K. et al. Humic substances increase the constitution of swordtail // Aquat. Sci. 2004. № 66. Р. 239–245.
29. Paciolla M.D., Davies G., Jansen S.A. Generation of hydroxyl radicals from metal-loaded humic acids // Environ. Sci. Technol. 1999. V. 33. № 11. Р. 1814–1818.
30. Panov V. Establishment of the Baikalian endemic amphipod Gmelinoides fasciatus in lake Ladoga // Hydrobiologia. 1996. V. 322. Р. 187–192.
31. Review of Sediment Management Standards. Bioassay protocols / Produced for ecology’s environmental review/Sediment section by Margaret Stinson. Washington, Olympia: Washington State Department of Ecology, 1995. 32 p.
32. Steinberg C.E.W., Kamara S., Prokhotskaya V.Y. et al. Dissolved humic substances – ecological driving forces from the individual to the ecosystem level? // Freshwater Biol. 2006. V. 51. Р. 1189–1210.
33. Steinberg C.E.W., Paul A., Pflugmacher S. et al. Pure humic substances have the potential to act as xenobiotic chemicals: а review // Fresenius Environ. Bul. 2003. № 12. Р. 391–401.
34. Taylor E.J., Rees E.M., Pascoe D. Mortality and a drift-related response of the freshwater amphipod Gammarus pulex (L.) exposed to natural sediments, acidification and copper // Aquat. Toxicol. 1994. V. 29. № 1–2. Р. 83–101.
35. Thurman E.M. Organic geochemistry of natural waters. Dordrecht: Martinus Nijhof/Dr. W. Junk Publ., 1985. 451 p.
36. Timofeyev M.A., Shatilina Z.M., Bedulina D.S. et al. Natural organic matter (NOM) has the potential to modify the multixenobiotic resistance (MXR) activity in freshwater amphipods Eulimnogammarus cyaneus and E. verrucosus // Comp. Biochem. and Physiol. 2007. № 146 (Part B). Р. 496–503.
37. Vehoff N.N. Waterlice from extra-tundra areas of Siberia and the Far East of Russia, with notes on systematics and zoogeography (Crustacea, Isopoda, Asellidae) // Arthropoda Selecta. 1994. V. 3. № 3–4. Р. 21–31.
38. Visser S.A. Physiological action of humic substances on microbial cells // Soil Biol. and Biochem. 1985. V. 17. Р. 457–462.
39. Wang F., Goulet R.R., Chapman P.M. Testing sediment biological effects with the freshwater amphipod Hyalella azteca: the gap between laboratory and nature // Chemosphere. 2004. V. 57. № 11. Р. 1713–1724.
40. Yakimenko O.S. Chemical and plant growth stimulatory properties in a variety of commercial humates // Humic Substances – Linking Structure to Functions. 2006. V. 45-II. P. 1017–1021.
Е.В. Румянцева*, Д.Б. Косолапов*, Н.Г. Косолапова*, Ю.В. Леванова**
бактериопланктон Рыбинского водохранилища в зоне колониальных поселений птиц сем. чайковых (Laridae).
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Ивановский государственный университет, 153025 г. Иваново, ул. Ермака, 39
e-mail: elivic.rum@gmail.com
Изучено влияние колониального поселения гидрофильных птиц сем. Чайковых на динамику бактериопланктона, гетеротрофных нанофлагеллят и внеклеточных вирусных частиц в защищенной зарастающей литорали Рыбинского водохранилища. Количественные показатели микроорганизмов и вирусов в прибрежных водах водохранилища достигают высоких значений. По сравнению с фоновыми участками на участке, заселенном птицами, отмечены значительно бόльшее варьирование биомассы бактериопланктона, а также увеличение других количественных показателей планктонного микробного сообщества в период интенсивной орнитогенной нагрузки.
Ключевые слова: бактериопланктон, гетеротрофные нанофлагелляты, вириопланктон, литораль водохранилища, влияние гидрофильных птиц.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бакастов С.С. Изменение площадей и объемов мелководий Рыбинского водохранилища в зависимости от его наполнения // Гидробиологический режим прибрежных мелководий верхневолжских водохранилищ. Ярославль: Ярослав. гос.-пед. ин-т, 1976. С. 13–22.
2. Копылов А.И., Косолапов Д.Б. Бактериопланктон водохранилищ Верхней и Средней Волги. М.: Соврем. Гуманитар. ун-т, 2008. 377 с.
3. Копылов А.И., Косолапов Д.Б., Заботкина Е.А. Вирусы в планктоне Рыбинского водохранилища // Микробиология. 2007. Т. 76. № 6. С. 879–887.
4. Крылов А.В., Кулаков Д.В., Касьянов Н.А. Зоопланктон зарастающих мелководий Рыбинского водохранилища в условиях влияния колониальных поселений птиц // Водные экосистемы: трофические уровни и проблемы поддержания биоразнообразия: Матер. Всерос. конф. Вологда, 2008. C. 173–176.
5. Крылов А.В., Кулаков Д.В., Касьянов Н.А. Влияние продуктов жизнедеятельности птиц на зоопланктон прибрежья разнотипных водоемов // Экология. 2011. № 6. С. 467–473.
6. Крылов А.В., Кулаков Д.В., Чалова И.В., Папченков В.Г. Зоопланктон пресных водоёмов в условиях влияния гидрофильных птиц. Ижевск: Издатель С.А. Пермяков, 2012. 204 с.
7. Benner R., Strom M. A critical evaluation of the analytical blank associated with DOC measurements by high-temperature catalytic oxidation // Mar. Chem. 1993. V. 41. P. 153–160.
8. Benskin С. McW. H., Wilson K., Jones K., Hartley I.R. Bacterial pathogens in wild birds: a review of the frequency and effects of infection // Biol. Rev. 2009. V. 84. № 3. P. 349–373.
9. Caron D.A. Technique for enumeration of heterotrophic and phototrophic nanoplankton, using epifluorescence microscopy and comparison with other procedures // Appl. Environ. Microbiol. 1983. V. 46. № 2. Р. 491–498.
10. Choi J.W., Sherr E.B., Sherr B.F. Relation between presence-absence of a visible nucleoid and metabolic activity in bacterioplankton cells // Limnol., Oceanogr. 1996. V. 41. № 6. P. 1161–1168.
11. Fleming R., Fraser H. The Impact of Waterfowl on Water Quality – Literature Review. Ridgetown: Ridgetown College – Univ. Guelph., 2001. 14 p.
12. Hagström Å., Larsson U., Hörstedt P., Normark S. Frequency of dividing cells, a new approach to the determination of bacterial growth rates in aquatic environments // Appl. Environ. Microbiol. 1979. V. 37. P. 805–812.
13. Noble R.T., Fuhrman J.A. Use of SYBR Green I for rapid epifluorescence counts of marine viruses and bacteria // Aquat. Microb. Ecol. 1998. V. 14. № 2. P. 113–118.
14. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPI for identifying and counting of aquatic microflora // Limnol., Oceanogr. 1980. V. 25. № 5. P. 943–948.
15. Stets E.G., Cotner J.B. Littoral zones as sources of biodegradable dissolved organic carbon in lakes // Can. J. Fish. and Aquat. Sci. 2008. V. 65. № 11. P. 2454–2460.
16. Wright J.P., Jones C.G. Predicting effects of ecosystem engineers on patch-scale species richness from primary productivity // Ecology. 2004. V. 85. № 8. Р. 2071–2081.
Л.В. Снитько*, А.Г. Рогозин*, О.А. Тимошкин**
Термоиндикаторные свойства видов фитопланктона (на примере водоемов Южного Урала).
*Ильменский государственный заповедник Уральского отделения РАН, 456317 Миасс, ул. Ильменский заповедник, д. 1
**Лимнологический институт Сибирского отделения РАН, 664033 Иркутск, ул. Улан-Баторская, д. 3
e-mail: snitko@ilmeny.ac.ru
Определены термоиндикаторные свойства фитопланктона водоемов Южного Урала и составлен список видов-индикаторов температурных условий. Выделены группы стенотермных и эвритермных видов, а также криобионтов, криофилов, термофилов и термобионтов. Проведено сравнение температурных индикаторов с таковыми в известных сводках. Представленный список видов-термоиндикаторов позволит анализировать изменения, проходящие в водоемах под воздействием глобального потепления.
Ключевые слова: биоиндикация, фитопланктон, виды-термоиндикаторы, водоемы Южного Урала.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Баринова С.С., Медведева Л.А., Анисимова О.В. Биоразнообразие водорослей –индикаторов окружающей среды. Тель-Авив: Русское изд-во, 2006. 498 с.
2. Безносов В.Н., Суздалева А.Л. Возможные изменения водной биоты в период глобального потепления климата // Вод. ресурсы. 2004. Т. 31. № 4. С. 498–503.
3. Белякова Р.Н., Волошко Л.Н., Гаврилова О.В. и др. Водоросли, вызывающие “цветение” водоемов Северо-Запада России. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2006. 367 с.
4. Бондаренко Н.А. Экология и таксономическое разнообразие планктонных водорослей в озерах горных областей Восточной Сибири: Автореф. дис. … докт. биол. наук. Борок, 2009. 46 с.
5. Коршиков О.А. Пiдклас протококовi (Protococcineae) // Визначник прiсноводних водоростей Украïнськоi РСР. Киïв: Наук. думка, 1953. Т. 5. 421 с.
6. Лосева Э.И., Стенина А.С., Марченко-Вагапова Т.И. Кадастр ископаемых и современных диатомовых водорослей Европейского Северо-Востока. Сыктывкар: Изд-во Геопринт, 2004. 160 с.
7. Определитель пресноводных водорослей СССР. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1951. Т. 1. 202 с. 1951. Т. 4. 620 с. 1953. T. 2. 651 c. 1954. Т. 3. 188 с. 1954. Т. 6. 212 с. 1955. Т. 7. 284 с. 1959. Т. 8. 232 с. 1962. Т. 5. 274 с. 1980. Т. 13. 250 с. 1982. Т. 11. 622 с. 1983. Т. 14. 192 с. 1986. Т. 10. 362 с.
8. Протасов А.А., Сергеева О.А., Кафтанникова О.Г. и др. Гидробиология водоемов-охладителей тепловых и атомных станций Украины. Киев: Наук. думка, 1991. 192 с.
9. Разумовский Л.В. Реконструкция температурных циклов и сукцессионных изменений по диатомовым комплексам из донных осадков на примере Галичского озера // Вод. ресурсы. 2008. Т. 35. № 5. С. 598–608.
10. Разумовский Л.В., Гололобова М.А. Реконструкция температурного режима и сопряженных гидрологических параметров по диатомовым комплексам из озера Глубокого // Вод. ресурсы. 2008. Т. 35. № 4. С. 490–504.
11. Сиделев С.И., Бабаназарова О.В. Экология и сукцессия планктотрихетового типа (на примере озера Неро, Ярославская область, Россия) // Водоросли: таксономия, экология, использование в мониторинге. Екатеринбург: УрО РАН, 2011. С. 212–217.
12. Снитько Л.В., Рогозин А.Г. К оценке структурной организации фитопланктона озера Большое Миассово (Южный Урал) // Экология. 2002. № 6. С. 426–431.
13. Шитиков В.К., Розенберг Г.С., Зинченко Т.Д. Количественная гидроэкология: методы системной идентификации. Тольятти: Ин-т экологии Волжск. бассейна РАН, 2003. 463 с.
14. Экология озера Большое Миассово. Миасс: Ильменск. гос. заповедник Уральск. отд. РАН, 2000. 286 с.
15. Экология озера Тургояк. Миасс: Ильменск. гос. заповедник Уральск. отд. РАН, 1998. 153 с.
16. Hutchinson G.E. Eutrophication, past and present // Eutrophication: causes, consequences, correctives. Washington: Nat. Acad. Sci., 1969. P. 197–209.
17. Zelinka M., Marvan P. Zur Prazisierung der biologischen Klassification der Reinheit flissender Gewasser // Arch. Hydrobiol. 1961. Bd 57. № 3. S. 389–407.
А.М. Чернова
Сезонная динамика продуктивности кубышки жёлтой Nuphar lutea (L.) Smith (Nymphaeaceae) в малой реке Ильдь (Ярославская область).
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: nuphar@mail.ru
В сезонной динамике надземной биомассы кубышки жёлтой выделено несколько подъёмов. Максимальной величины надземная биомасса достигает в период массового цветения – начала плодоношения. Накопление растительного опада в течение вегетационного периода происходит неравномерно, максимальные его величины связаны со сменами одних типов листьев другими. Чистая надземная годовая продукция кубышки превышает величину максимальной надземной биомассы в среднем в 2 раза. Вычислено, что 1 м² зарослей даёт в среднем 349 г органического углерода.
Ключевые слова: биомасса, продукция, Nuphar lutea.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Довбня И.В. Продукция гидрофильной растительности озера Неро // Биология внутренних вод: Информ. бюл. СПб., 1995. № 98. С. 13–16.
2. Карманова И.В. Математические методы изучения роста и продуктивности растений. М.: Наука, 1976. 223 с.
3. Катанская В.М. Биомасса высшей водной растительности в озёрах Карельского перешейка // Тр. лаб. озероведения. 1954. Т. 3. С. 102–117.
4. Катанская В.М. Продуктивность растительного покрова некоторых озёр Карельского перешейка // Тр. лаб. озероведения. 1960. Т. 11. С. 151–177.
5. Корелякова И.Л. Продукция высшей растительности Киевского водохранилища // Киевское водохранилище. Гидрохимия, биология, продуктивность. Киев: Наук. думка, 1972. 460 с.
6. Курашов Е.А., Крылова Ю.В., Чернова А.М., Митрукова Г.Г. Компонентный состав летучих низкомолекулярных органических веществ Nuphar lutea (Nymphaeaceae) в начале вегетационного сезона // Вода: химия и экология. 2013. №5 (59). С. 67–80.
7. Марков М.В. Популяционная биология растений. М.: Товарищество науч. изданий, 2012. 387 с.
8. Марков М.В., Плещинская Е.Н. Репродуктивное усилие у растений // Журн. общ. биологии. 1987. Т. 48. № 1. С. 77–83.
9. Папченков В.Г. Растительный покров водоёмов и водотоков Среднего Поволжья. Ярославль: ЦМП МУБиНТ, 2001. 213 с.
10. Распопов И.М. Фитомасса и продукция макрофитов Онежского озера // Микробиология и первичная продукция Онежского озера. Л.: Наука, 1973. С. 123–142.
11. Распопов И.М. Высшая водная растительность больших озёр Северо-Запада СССР. Л.: Наука, 1985. 200 с.
12. Распопов И.М., Рычкова М.И. Биомасса некоторых группировок макрофитов Ладожского озера в сезонном аспекте // Гидробиология и ихтиология внутренних водоёмов Прибалтики. Рига: АН Латвийской ССР, 1963. С. 177–182.
13. Чернова А.М. Сезонная динамика продуктивности кубышки жёлтой (Nuphar lutea, Nymphaeaceae) в условиях малых рек Верхнего Поволжья: Дис… канд. биол. наук. Борок, 2013. 129 с.
14. Чернова А.М., Папченков В.Г. Расчётный метод определения фитомассы Nuphar lutea (Nymphaeaceae) по морфометрическим показателям // Растительн. ресурсы. 2012. Т. 48. Вып. 4. С. 614–625.
15. Экзерцев В.А., Довбня И.В. Годовая продукция гидрофильной растительности водохранилищ Волги // Вторая конф. по изучению водоёмов бассейна Волги “Волга–2”. Борок, 1974. С. 24–28.
16. Экзерцев В.А., Лисицына Л.И., Довбня И.В. Флористический состав и продукция водной растительности Угличского водохранилища // Флора, фауна и микроорганизмы Волги: Рыбинск: Ин-т биологии внутр. вод АН СССР, 1974. С. 76–99.
17. Asaeda T., Hal D.N., Manatunge J.et al. Latitudinal characteristics of below- and above-ground biomass of Typha: a Modelling approach // Ann. Bot. 2005. V. 96. P. 299–312.
18. Asaeda T., Rajapakse L., Fujino T. Applications of organ-specific growth models; modelling of resource translocation and the role of emergent aquatic plants in element cycles // Ecol. Modelling. 2008. V. 215. P. 170–179.
19. Bartleson R.D., Kemp W.M., Stevenson J.C. Use of a simulation model to examine effects of nutrient loading and grazing on Potamogeton perfoliatus L. communities in microcosms // Ecol. Modelling. 2005. V. 185. P. 483–512.
20. Best E.P.H., Boyd W.A. A Simulation model for growth of the submersed aquatic macrophyte eurasian watermilfoil (Myriophyllum spicatum L.) // Aquatic Plant Control. Techn. Report. Vicksburg, 1999. 113 p.
21. Calado G., Duarte P. Modelling growth of Ruppia cirrhosa // Aquat. Bot. 2000. V. 68. P. 29–44.
22. Hutchinon G.E. A treatise on limnology. III. Limnological botany. N.Y.; L.; Sydney: Toronto: John Wiley& Sons, 1975. 660 p.
23. Lacy R., Blanton J. Primary productivity and biomass distribution // Primary productivity and mineral cycling in aquatic macrophyte communities of the Chovan river, North Carolina. Greenville: Department of Biology college of Arts and Sciences East Carolina Univ., 1976. P. 8–35.
24. Van der Heide T., Roijackers R.M.M., Van Nes E.H., Peeters E.T.H.M. A simple equation for describing the temperature dependent growth of free-floating macrophytes // Aquat. Bot. 2006. V. 84. P. 171–175.
25. Westlake D.F., Kvet J., Szczepanski A. The production ecology of wetlands. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1998. 568 p.
26. Wolfer S.R., van Nes E.H., Straile D. Modelling the clonal growth of the rhizomatous macrophyte Potamogeton perfoliatus // Ecol. Modelling. 2006. V. 192. P. 67–82.
27. Wortmann J.A Modelling approach for determining the freshwater requirements of estuarine macrophytes. Submitted in fulfilment of the requirements for the degree of PhD: Doct. Diss. Natal, 1998. 212 p.
28. Zimmerman R.C., Cabello-Pasini A., Alberte R.S. Modelling daily production of aquatic macrophytes from irradiance measurements: a comparative analysis // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1994. V. 114. P. 185–196.
С.В. Быкова
экологическая специфика и пространственно-временное распределение инфузорий пелагического планктона пресного меромиктического водоема.
Институт экологии Волжского бассейна РАН, 445003 Тольятти, ул. Комзина, 10
e-mail: svbykova@rambler.ru
Приведены данные по изменению в течение года вертикального распределения свободноживущих инфузорий в пресном меромиктическом пруду (г. Самара). Специфика этого водоема в том, что таксономическое разнообразие инфузорий пелагического планктона в основном складывается за счет инфузорий узкоспециализированных экологических групп: миксотрофов, “бентосных мигрантов”, и сапропелебионтов, а не обычных истинно планктонных видов. Фауна инфузорий сходна с таковой термически стратифицированных водоемов с сульфидным гиполимнионом. Максимумы численности и биомассы инфузорий в течение года и высокий уровень их абсолютных значений определяются существованием устойчивых градиентов абиотических факторов: в первую очередь, содержания кислорода, сероводорода, и соответственно, окислительно-восстановительного потенциала.
Ключевые слова: инфузории, меромиксис, вертикальное распределение, сезонная динамика, анаэробные инфузории, бентосные мигранты, миксотрофные инфузории.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Быкова С.В. Фауна и экология инфузорий малых водоемов Самарской Луки и Саратовского водохранилища: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Тольятти, 2005. 19 с.
2. Быкова С.В., Жариков В.В. Вертикальное распределение инфузорий планктона в небольшом меромиктическом водоеме в летний период // Изв. Самар. науч. центра РАН. 2007. Т. 9. № 4. С. 996–1006.
3. Быкова С.В., Уманская М.В. Микромасштабное распределение простейших и бактерий в хемоклине меромиктического водоема // Вода: химия и экология. 2012. № 9. С. 43–49.
4. Винберг Г.Г. Температурный коэффициент Вант-Гоффа и уравнение Аррениуса в биологии // Журн. общ. биол. 1983. Т. 44. Вып. 1. С. 31–42.
5. Горбунов М.Ю., Уманская М.В. К вертикальному распределению прокариотического фототрофного планктона в нижнем пруду Самарского ботанического сада // Самарская Лука: Бюл. 2007. Т. 16. № 1–2 (19–20). С. 144–155.
6. Горбунов М.Ю., Уманская М.В., Краснова Е.С. Характеристика абиотических условий в экосистеме Нижнего пруда Ботанического Сада Самарского университета // Самарская Лука: Бюл. 2007. Т. 16. № 1–2 (19–20). С. 131–143.
7. Копылов А.И., Косолапов Д.Б. Микробная “петля” в планктонных сообществах морских и пресноводных экосистем. Ижевск: КнигаГрад, 2011. 332 с.
8. Павловская Т.В., Празукин А.В., Шадрин Н.В. Сезонные явления в сообществе инфузорий гиперсоленого озера Херсонесское (Крым) // Морськ. екол. журн. 2009. Т. 8. № 2. C. 53–63.
9. Рогозин Д.Ю., Зыков В.В., Трусова М.Ю., Белолипецкий В.М. Фототрофные серные бактерии в меромиктических озерах Хакасии: пространственные распределения и сезонная динамика // X съезд Гидробиол. о-ва при РАН: Тез. докл. Владивосток: Дальнаука, 2009. С. 338–339.
10. Хлебович Т.В. Методы изучения состояния кормовой базы рыбохозяйственных водоемов // Сб. тр. Гос.НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1983. Вып. 196. С. 57–60.
11. Bark A.W. Studies on ciliated protozoa in eutrophic lakes: 1. Seasonal distribution in relation to thermal stratification and hypolimnetic anoxia // Hydrobiologia. 1985. V. 124. P. 167–176.
12. Bark A.W., Goodfellow J.G. Studies on ciliated protozoa in eutrophic lakes: 2. Field and laboratory studies on the effects of oxygen and other chemical gradients on ciliate distribution // Hydrobiologia. 1985. V. 124. P. 177–188.
13. Finlay B.J. Oxygen Availability and Seasonal Migrations of Ciliated Protozoa in a Freshwater Lake // J. General Microbiol. 1981. V. 123. P. 173–178.
14. Finlay B.J. Protist taxonomy: an ecological perspective // Phil. Trans. Roy. Soc. London. B. 2004. V. 359. P. 599–610.
15. Finlay B.J., Esteban G.F. Planctonic Ciliate Species Diversity as an integral Component of ecosystem function in a freshwater pond // Protist. 1998. V. 149. P. 155–165.
16. Finlay B.J., Maberly S.C., Esteban G.F. Spectacular abundance of ciliates in anoxic pond water: contribution of symbiont photosynthesis to host respiratory oxygen requirements // FEMS Microbiol. Ecol. 1996. V. 20. P. 229–235.
17. Guhl B.E., Finlay B.J., Schink B. Seasonal development of hypolimnetic ciliate communities in a eutrophic pond // FEMS Microbiol. Ecol. 1994. V. 14. P. 293–306.
18. Guhl B., Finlay B., Schink B. Comparison of ciliate communities in the anoxic hypolimnia of three lakes: general features and the influence of lake characteristics // J. Plankton Res. 1996. V. 18. P. 335–353.
19. Jones R.I. Mixotrophy in planktonic protists: an overview // Freshwater Biol. 2000. V. 45. P. 219–226.
20. Kalytyté D., Žvikas A., Paškauskas R. Spatial and temporal changes of microplankton structure in North Lithuanian karst lakes // Botanica Lithuanica. 2002. V. 8. № 4. Р. 333–347.
21. Khromechek E.B., Barkhatov Y.V., Rogozin D.Y. Densities and distribution of flagellates and ciliates in the chemocline of saline, meromictic Lake Shunet (Siberia, Russia) // Aquat. Ecol. 2010. V. 44. P. 497–511.
22. Kusnezow S.I., Gorlenko W.M. Limnologische und mikrobiologische Eigenschaften von Karstseen der A. S. R. Mari Limnological and microbiological features of karst lakes in the Mari // Arch. Hydrobiol. 1973. V. 71. № 4. P. 475–486.
23. Massana R., Pedrós-Alió C. Role of anaerobic ciliates in planktonic food webs: abundance, feeding and impact on bacteria in the field // Appl. and Environ. Microbiol. 1994. V. 60. № 4. P. 1325–1334.
24. Miracle M.R. Vincente E., Pedrós-Alió C. Biological studies of spanish meromictic and stratified karstic lakes // Limnetica. 1992. V. 8. P. 59–77.
25. Rojo C., Rodrigo M.A., Barón-Rodríguez M.M. Dynamics of the planktonic food web in Coldada lake (Lagunas de Ruidera Natural Park) // Limnetica. 2007. V. 26. № 2. P. 257–264.
26. Small E.B., Lynn D.H. Phylum Ciliophora Doflein, 1901 // An Illustrated guide to the protozoa second edition. Kansas: Allen Press, 2000. P. 371–675.
27. Wetzel R.G. Limnology. Lake and River Ecosystems. San Diego: Acad. Press, 2001. 1006 p.
28. Zingel P., Ott I. Vertical distribution of planktonic ciliates in strongly stratified temperate lakes // Hydrobiologia. 2000. V. 435. P. 19–26.
А.С. Соколова*, Р.В. Карпенко**
Видовой состав и особенности распределения пресноводных моллюсков в разнотипных водных объектах Волгоградской области.
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Волгоградский государственный социально-педагогический университет, 400066 г. Волгоград, проспект Ленина, 27
e-mail: blueseasasha@mail.ru
В 21 водном объекте Волгоградской области обнаружен 41 вид моллюсков из 12 семейств и 18 родов. Приведены сведения о видовом составе, доминирующем комплексе и экологических особенностях моллюсков.
Ключевые слова: моллюски, видовой состав, доминантные экологические группы, жизненные формы, водотоки, водоемы, Волгоградская область.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Брылев В.А., Рябинина Н.О., Материкин Е.В. и др. Особо охраняемые природные территории Волгоградской области. Волгоград: Альянс, 2006. 150 с.
2. Жадин В.И. Методы гидробиологического исследования. М.: Высш. шк., 1960. 191 с.
3. Кантор Ю.И., Сысоев А.В. Каталог моллюсков России и сопредельных стран. М.: Товарищество науч. изданий КМК, 2005. 627 с.
4. Нехаев И.О. Жизненные формы пресноводных брюхоногих моллюсков на севере Кольского полуострова // Вестн. Мурманск. гос.-техн. ун-та. 2010. Т. 13. № 4/1. С. 661–664.
5. Старобогатов Я.И. Фауна озер как источник сведений об их истории // Общие закономерности возникновения и развития озер. Методы изучения истории озер. Л.: Гидрометеоиздат, 1986. С. 33–50.
6. Старобогатов Я.И. Новые данные о моллюсках и высших ракообразных дельты реки Волги // Вестн. зоологии. 1994. № 4–5. С. 8–12.
7. Старобогатов Я.И., Прозорова Л.А., Богатов В.В., Саенко Е.М. Моллюски // Определитель пресноводных беспозвоночных России и сопредельных территорий. Т. 6: Моллюски, полихеты, немертины. СПб.: Наука, 2004. 526 с.
8. Чернобай В.Ф., Мухин В.А., Дремкова П.П. Беспозвоночные животные Нижнего Поволжья. М.; Волгоград: Волгоград. гос. пед. ин-т, 1983. 80 c.
9. Чертопруд М.В. Экологические группировки пресноводных Gastropoda центра Eвропейской России: влияние типа водоема и субстрата // Зоол. журн. 1996. Т. 75. № 5. С. 664–676.
В.В. Кузьмина*, Г.В. Золотарева**, В.А. Шептицкий**
Влияние pН на активность гликозидаз беспозвоночных – потенциальных объектов питания планкто- и бентосоядных рыб в условиях in vitro.
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Приднестровский государственный университет им. Т.Г. Шевченко, Тирасполь, PO Box 3300, Молдова
e-mail: vkuzmina@ibiw.yaroslavl.ru
Показано, что общая амилолитическая активность относящихся к разным таксономическим группам потенциальных объектов питания планкто- и бентосоядных рыб и сопутствующей микробиоты значительно зависит от рН среды. Максимальная активность гликозидаз у всех видов беспозвоночных и микробиоты, выделенной из их организма, проявляется при рН 7.0, минимальная – при 10.0. Микробиота дрейссены и рачкового планктона может эффективно деполимеризовать полисахариды в зоне кислых значений рН.
Ключевые слова: объекты питания рыб, планктофаги, бентофаги, микробиота, беспозвоночные, гликозидазы, общая амилолитическая активность, рН.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Богатыренко Е.А. Характеристика культивируемых гетеротрофов микробного сообщества кишечника дальневосточного трепанга Apostichopus japonicus: Автореф. дис…. канд. биол. наук. Владивосток, 2013. 23 с.
2. Голованова И.Л. Анализ моно-, би- и полифакторного воздействия температуры, рН и кадмия на пищеварительные карбогидразы рыб // Биология внутр. вод. 1997. № 2. С. 58–64.
3. Голованова И.Л. Влияние природных и антропогенных факторов на активность карбогидраз молоди рыб // Биология внутр. вод. 2000. № 1. С. 132–137.
4. Голованова И.Л. Раздельное и cочетанное влияние температуры, рН и тяжелых металлов (Cu, Zn) на активность карбогидраз кишечника рыб // Токсикол. вестн. 2011. № 1. С. 32–35.
5. Горомосова С.А., Шапиро А.З. Основные черты биохимии энергетического обмена мидий. М.: Наука, 1989. 120 с.
6. Егоров С.И., Ижбердиева Э.И., Виятик С.В. Исследования некоторых пищеварительных ферментов у кормовых объектов рыб // Вестн. Астрахан. гос.-техн. ун-та рыб. хоз-ва. 2000. С. 120–122.
7. Золотарева Г.В., Кузьмина В.В., Залевская Т.Г., Шептицкий В.А. Активность протеиназ химуса и энтеральной микробиоты в естественном для кишечника рыб диапазоне рН // Проблeмы биологической продуктивности животных. 2013. № 2. С. 85–92.
8. Зубкова Л.А. Бактериальная флора органов и тканей сазана (Cyprinus carpio L.) // Тр. Касп. НИИ рыб. хоз-ва. 1966. Т. 20. С. 117–121.
9. Зубкова Л.А. К вопросу о нормальной микрофлоре Волжского судака (Lucioperca lucioperca) // Тр. Касп. НИИ рыб. хоз-ва. 1967. Т. 22. С. 81–85.
10. Извекова Г.И., Извеков Е.И., Плотников А.О. Симбионтная микрофлора рыб разных экологических групп // Изв. РАН. Сер. биол. 2007. № 6. С. 1–10.
11. Извекова Г.И., Плотников А.О. Гидролитическая активность ферментов симбионтной микрофлоры кишечника щуки (Esox lucius L.) // Биология внутр. вод. 2011. Т. 4. № 1. С. 79–85. (Izvekova G.I. and Plotnikov A.O. Hydrolytic Activity of Symbiotic Microflora Enzymes in Pike (Ecox lucius L.) Intestines // Inland Water Biology. 2011. V. 4. № 1. P. 72–77. DOI: 10.1134/S1995082911010081).
12. Кузьмина В.В. Оценка полифакторных воздействий на активность протеиназ слизистой кишечника рыб // Биология внутр. вод. 1997. № 2. C. 50–57.
13. Кузьмина В.В. Влияние температуры на пищеварительные гидролазы водных беспозвоночных животных // Журн. эволюц. биохим. физиол. 1999. Т. 35. № 1. С. 15–19.
14. Кузьмина В.В. Вклад индуцированного аутолиза в процессы пищеварения вторичных консументов на примере гидробионтов // Докл. РАН. 2000. Т. 373. № 1. С. 132–134.
15. Кузьмина В.В. Физиолого-биохимические основы экзотрофии рыб. М.: Наука, 2005. 300 с.
16. Кузьмина В.В., Скворцова Е.Г. Бактерии желудочно-кишечного тракта и их роль в процессах пищеварения у рыб // Успехи соврем. биол. 2002. Т. 122. № 6. С. 569–579.
17. Кузьмина В.В., Ушакова Н.В. Активность протеиназ у беспозвоночных животных – потенциальных объектов питания рыб. Влияние температуры, рН и тяжелых металлов (медь, цинк) // Журн. эволюц. биохим. физиол. 2007. Т. 43. № 5. С. 405–409.
18. Кузьмина В.В., Ушакова Н.В. Влияние температуры, рН и тяжелых металлов (медь, цинк) на активность протеиназ слизистой оболочки пищеварительного тракта рыб бенто- и планктофагов // Биология внутр. вод. 2007. № 4. С. 71–79.
19. Лубянскене В., Вербицкас Ю., Янкявичус К. и др. Облигатный симбиоз микрофлоры пищеварительного тракта и организма. Вильнюс: Мокслас, 1989. 191 с.
20. Плисецкая Э.М. Гормональная регуляция углеводного обмена у низших позвоночных. Л.: Наука, 1975. 215 с.
21. Уголев A.M. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций. Л.: Наука, 1985. 544 с.
22. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н. Определение активности инвертазы и других дисахаридаз // Исследование пищеварительного аппарата у человека. Обзор современных методов. Л.: Наука, 1969. С. 169–173.
23. Уголев A.M., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
24. Шивокене Я.С. Симбионтное пищеварение у гидробионтов и насекомых. Вильнюс: Мокслас, 1989. 223 с.
25. Barrington E.J.W. The alimentary canal and digestion // The physiology of fishes. N.Y.; L.: Acad. Press, 1957. V. l. P. 109–161.
26. Buddington R.K., Krogdahl A., Bakke-Mckellep À.Ì. The intestines of carnivorous fish: structure and functions and relations with diet // Acta Physiol. Scand. 1997. V. 161. Suppl. 638. P. 67–80.
27. Fange R., Grove D. Digestion // Fish physiology. N.Y.; San Francisco; L.: Acad. Press, 1979. V. 8. P. 162–260.
28. Kuz'mina V.V., Skvortsova E.G., Zolotareva G.V., Sheptitskiy V.A. Influence of pH upon the activity of glycosidases and proteinases of intestinal mucosa, chyme and microbiota in fish // Fish Physiol. Biochem. 2011. V. 37. № 3. P. 345–357.
29. Mattheis Th. Ökologie der Bakterien in Darm von susswassernuttfishen // Z. Fisch. 1964. Bd 12. S. 6−10.
30. Richter-Otto W., Fehrmann M. Zur methodik von darmflora untersuchungen // Ernährungsforschung. 1956. Bd 1. S. 584–586.
В.В. Кузьмина*, Г.В. Золотарева**, В.А. Шептицкий**
Влияние pН на активность гликозидаз беспозвоночных – потенциальных объектов питания планкто- и бентосоядных рыб в условиях in vitro.
*Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
**Приднестровский государственный университет им. Т.Г. Шевченко, Тирасполь, PO Box 3300, Молдова
e-mail: vkuzmina@ibiw.yaroslavl.ru
Показано, что общая амилолитическая активность относящихся к разным таксономическим группам потенциальных объектов питания планкто- и бентосоядных рыб и сопутствующей микробиоты значительно зависит от рН среды. Максимальная активность гликозидаз у всех видов беспозвоночных и микробиоты, выделенной из их организма, проявляется при рН 7.0, минимальная – при 10.0. Микробиота дрейссены и рачкового планктона может эффективно деполимеризовать полисахариды в зоне кислых значений рН.
Ключевые слова: объекты питания рыб, планктофаги, бентофаги, микробиота, беспозвоночные, гликозидазы, общая амилолитическая активность, рН.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Богатыренко Е.А. Характеристика культивируемых гетеротрофов микробного сообщества кишечника дальневосточного трепанга Apostichopus japonicus: Автореф. дис…. канд. биол. наук. Владивосток, 2013. 23 с.
2. Голованова И.Л. Анализ моно-, би- и полифакторного воздействия температуры, рН и кадмия на пищеварительные карбогидразы рыб // Биология внутр. вод. 1997. № 2. С. 58–64.
3. Голованова И.Л. Влияние природных и антропогенных факторов на активность карбогидраз молоди рыб // Биология внутр. вод. 2000. № 1. С. 132–137.
4. Голованова И.Л. Раздельное и cочетанное влияние температуры, рН и тяжелых металлов (Cu, Zn) на активность карбогидраз кишечника рыб // Токсикол. вестн. 2011. № 1. С. 32–35.
5. Горомосова С.А., Шапиро А.З. Основные черты биохимии энергетического обмена мидий. М.: Наука, 1989. 120 с.
6. Егоров С.И., Ижбердиева Э.И., Виятик С.В. Исследования некоторых пищеварительных ферментов у кормовых объектов рыб // Вестн. Астрахан. гос.-техн. ун-та рыб. хоз-ва. 2000. С. 120–122.
7. Золотарева Г.В., Кузьмина В.В., Залевская Т.Г., Шептицкий В.А. Активность протеиназ химуса и энтеральной микробиоты в естественном для кишечника рыб диапазоне рН // Проблeмы биологической продуктивности животных. 2013. № 2. С. 85–92.
8. Зубкова Л.А. Бактериальная флора органов и тканей сазана (Cyprinus carpio L.) // Тр. Касп. НИИ рыб. хоз-ва. 1966. Т. 20. С. 117–121.
9. Зубкова Л.А. К вопросу о нормальной микрофлоре Волжского судака (Lucioperca lucioperca) // Тр. Касп. НИИ рыб. хоз-ва. 1967. Т. 22. С. 81–85.
10. Извекова Г.И., Извеков Е.И., Плотников А.О. Симбионтная микрофлора рыб разных экологических групп // Изв. РАН. Сер. биол. 2007. № 6. С. 1–10.
11. Извекова Г.И., Плотников А.О. Гидролитическая активность ферментов симбионтной микрофлоры кишечника щуки (Esox lucius L.) // Биология внутр. вод. 2011. Т. 4. № 1. С. 79–85. (Izvekova G.I. and Plotnikov A.O. Hydrolytic Activity of Symbiotic Microflora Enzymes in Pike (Ecox lucius L.) Intestines // Inland Water Biology. 2011. V. 4. № 1. P. 72–77. DOI: 10.1134/S1995082911010081).
12. Кузьмина В.В. Оценка полифакторных воздействий на активность протеиназ слизистой кишечника рыб // Биология внутр. вод. 1997. № 2. C. 50–57.
13. Кузьмина В.В. Влияние температуры на пищеварительные гидролазы водных беспозвоночных животных // Журн. эволюц. биохим. физиол. 1999. Т. 35. № 1. С. 15–19.
14. Кузьмина В.В. Вклад индуцированного аутолиза в процессы пищеварения вторичных консументов на примере гидробионтов // Докл. РАН. 2000. Т. 373. № 1. С. 132–134.
15. Кузьмина В.В. Физиолого-биохимические основы экзотрофии рыб. М.: Наука, 2005. 300 с.
16. Кузьмина В.В., Скворцова Е.Г. Бактерии желудочно-кишечного тракта и их роль в процессах пищеварения у рыб // Успехи соврем. биол. 2002. Т. 122. № 6. С. 569–579.
17. Кузьмина В.В., Ушакова Н.В. Активность протеиназ у беспозвоночных животных – потенциальных объектов питания рыб. Влияние температуры, рН и тяжелых металлов (медь, цинк) // Журн. эволюц. биохим. физиол. 2007. Т. 43. № 5. С. 405–409.
18. Кузьмина В.В., Ушакова Н.В. Влияние температуры, рН и тяжелых металлов (медь, цинк) на активность протеиназ слизистой оболочки пищеварительного тракта рыб бенто- и планктофагов // Биология внутр. вод. 2007. № 4. С. 71–79.
19. Лубянскене В., Вербицкас Ю., Янкявичус К. и др. Облигатный симбиоз микрофлоры пищеварительного тракта и организма. Вильнюс: Мокслас, 1989. 191 с.
20. Плисецкая Э.М. Гормональная регуляция углеводного обмена у низших позвоночных. Л.: Наука, 1975. 215 с.
21. Уголев A.M. Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций. Л.: Наука, 1985. 544 с.
22. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н. Определение активности инвертазы и других дисахаридаз // Исследование пищеварительного аппарата у человека. Обзор современных методов. Л.: Наука, 1969. С. 169–173.
23. Уголев A.M., Кузьмина В.В. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. 238 с.
24. Шивокене Я.С. Симбионтное пищеварение у гидробионтов и насекомых. Вильнюс: Мокслас, 1989. 223 с.
25. Barrington E.J.W. The alimentary canal and digestion // The physiology of fishes. N.Y.; L.: Acad. Press, 1957. V. l. P. 109–161.
26. Buddington R.K., Krogdahl A., Bakke-Mckellep À.Ì. The intestines of carnivorous fish: structure and functions and relations with diet // Acta Physiol. Scand. 1997. V. 161. Suppl. 638. P. 67–80.
27. Fange R., Grove D. Digestion // Fish physiology. N.Y.; San Francisco; L.: Acad. Press, 1979. V. 8. P. 162–260.
28. Kuz'mina V.V., Skvortsova E.G., Zolotareva G.V., Sheptitskiy V.A. Influence of pH upon the activity of glycosidases and proteinases of intestinal mucosa, chyme and microbiota in fish // Fish Physiol. Biochem. 2011. V. 37. № 3. P. 345–357.
29. Mattheis Th. Ökologie der Bakterien in Darm von susswassernuttfishen // Z. Fisch. 1964. Bd 12. S. 6−10.
30. Richter-Otto W., Fehrmann M. Zur methodik von darmflora untersuchungen // Ernährungsforschung. 1956. Bd 1. S. 584–586.
Р.А. Запруднова, И.М. Камшилов, Ю.П. Чалов
Функциональные свойства гемоглобина в адаптации рыб к низким значениям pН среды.
Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: rimma@ibiw.yaroslavl.ru
Изучена связь устойчивости рыб к закислению среды с функциональными свойствами гемоглобина на представителях 21 вида из 9 семейств, относящихся к пресноводным, морским и проходным. Впервые выявлена прямая зависимость между устойчивостью рыб к низким pH среды и величиной эффекта Бора. На основании проведенных исследований эффект Бора предлагается в качестве характеристики буферных свойств гемоглобина и кислотоустойчивости рыб. У самых неустойчивых к закислению среды рыб (осетровых) кривые кислородного равновесия гемоглобина инвариантны. Максимальные нарушения инвариантности в кислом буферном растворе отмечены у наиболее кислотоустойчивых рыб: щуки, окуня. Эффективность гемоглобиновой буферной системы снижалась с понижением устойчивости рыб к закислению водной среды.
Ключевые слова: рыбы, буферная система гемоглобина, эффект Бора, сродство гемоглобина к кислороду, устойчивость к закислению воды.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Бабаскин А.В. Влияние концентраций водородных ионов на выживаемость икры и мальков Acipenser ruthenus L. // Уч. зап. Казан. ун-та, 1980. Т. 30. С. 497–549.
2. Берг Л.С. Рыбы пресных вод и сопредельных стран. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1949. Ч. 3. 1382 с.
3. Березов Т.Т., Коровкин Б.Ф. Биологическая химия. Учебник. М.: Медицина, 1990. 528 с.
4. Брюхатова А.Л. Влияние активной кислотности на прибавление веса карася и карпа в воде с малым содержанием солей Са и других электролитов // Уч. зап. МГУ. 1937. Вып. 9. С. 1739.
5. Виноградов Г.А. Процессы ионной регуляции у пресноводных рыб. М.: Наука, 2000. 200 с.
6. Запруднова Р.А., Камшилов И.М. Межвидовые различия дыхательных функций эритроцитов некоторых пресноводных рыб // Вопр. ихтиологии. 2008. Т. 48. № 4. С. 553–562.
7. Запруднова Р.А., Камшилов И.М. Буферные и дыхательные свойства и ионное окружение гемоглобина стерляди Acipenser ruthenus // Журн. эвол. биохим. и физиол. 2010. Т. 46. № 3. С. 242–244.
8. Иванов А.А. Физиология рыб. Учебник. М.: Мир, 2003. 284 с.
9. Иpжaк Л.И. Гемоглобины и их свойства. M.: Наука, 1975. 240 с.
10. Камшилов И.М. Методика определения функциональных свойств у рыб (влияние метгемоглобина и АТФ) // Биология. внутр. вод. 2001. № 1. С. 96–101.
11. Камшилов И.М., Запруднова Р.А. Межвидовые различия буферных свойств гемоглобина и ионного окружения у некоторых пресноводных рыб // Журн. эвол. биохим. и физиол. 2009. Т. 45. № 2. С. 242–244.
12. Кляшторин Л.Б. Водное дыхание и кислородные потребности рыб. М.: Легк. и пищ. пром-сть, 1982. 168 с.
13. Комов В.Т. Природное и антропогенное закисление малых озер Северо-Запада России: причины, последствия, прогноз: Автореф. дис... докт. биол. наук. СПб., 1999. 45 с.
14. Комов В.Т. Причины и последствия антропогенного закисления озер. Нижний Новгород: Вектор-ТиС, 2007. 112 с.
15. Краюшкина Л.С., Семенова О.Г. Осмотическая и ионная регуляция у различных видов осетровых (Acipenseriformes, Acipenseridae) // Вопр. ихтиологии. 2006. Т. 46. № 1. С. 108–111.
16. Матей В.Е. Жабры пресноводных костистых рыб. СПб.: Наука, 1996. 204 с.
17. Махотин А.А. Выживаемость плотвы и карася при различных концентрациях водородных ионов // Тр. гидробиол. ст. на Глубоком озере. 1923. Т. 6. № 2–3. С. 75–78.
18. Новикова Т.В. Влияние рН среды на дыхание карпа и окуня // Уч. зап. МГУ. 1939. Вып. 33. С. 117–121.
19. Парфенова И.А. Функциональное состояние гемоглобина и эритроцитов морских рыб, устойчивых к внешней гипоксии: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Симферополь, 2006. 20 с.
20. Свиренко Е.Г. Поглощение кислорода стерлядью в зависимости от изменения физико-химических факторов внешней среды // Уч. зап. МГУ. 1937. Вып. 9. С. 3.
21. Северцов А.Н. Морфологические закономерности эволюции. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1939. 610 с.
22. Строганов Н.С. Акклиматизация и выращивание осетровых рыб в прудах. М.: Изд-во МГУ, 1968. 377 с.
23. Токсикозы рыб с основами патологии. Справочная книга. СПб.: Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва, 2006. 179 с.
24. Флеров Б.А. Биологические последствия загрязнения: Экологический прогресс и экологическая деградация планеты. Причины эколого-экономического кризиса на примере состояния водных ресурсов // Физиология и токсикология пресноводных животных. Рыбинск: Дом печати, 2007. С. 291–321.
25. Хочачка П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. М.: Мир, 1977. 398 с. (Hochachka P.R., Somero G.N. Strategies of biochemical adaptation. L.; Toronto: W.B. Saunders Company Philadelphia, 1973. 211 p.).
26. Шилов И.А. Экология. М.: Высш. шк., 2000. 512 с.
27. Almer B.W., Dickson W., Ekstrom G. et al. Effects of acidification on Swedish lakes // Ambio. 1974. V. 3. № 3. P. 30–36.
28. Beamish R.J. Acidification of lakes in Canada by acidic precipitation and the effects on fishes // Water Air. Soil. Pollut. 1976. V. 6. P. 501–504.
29. Brown D.J.A., Sadler K. Fish survival in acid waters // Acid Toxicity and Aquatic Animals. Cambridge: Society for Experimental Biology Seminar Series, 1989. V. 4. P. 31–44.
30. EIFAC. Water quality criteria for European freshwater fish. Report on extreme pH values and inland fisheries // Techn. Paper, Rome. 1968. № 4. P. 1–18.
31. Evans D.H., Piermarini P.M., Choe K.P. The multifunctional fish gill: dominant site of gas exchange, osmoregulation, acidbase regulation, and excretion of nitrogenous waste // Physiol. Rev. 2005. V. 85. P. 97–177.
32. Gonzalez R.J., Wilson R.W. Pattern of ion regulation in acidophilic fish native to the ion-poor, acidic Rio Negro // J. Fish. Biol. 2001. V. 58. P. 1680–1690.
33. Haines T.A. Acidic precipitation and its consequences for aquatic ecosystems: a review // Trans. Amer. Fish. Soc. 1981. V. 110. № 6. P. 669–707.
34. Hirata T., Kaneko T., Nakazato T. et al. Mechanism of acid adaptation of fish living in a pH 3.5 lake // Amer. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2003. V. 284. № 5. P. R1199–R1212.
35. Holopainen I.J., Oikari A. Ecophysiological effects of temporary acidification on crucian carp, Carassius carassius (L.): a case history of a forest pond in eastern Finland // Ann. zool. fenn. 1992. V. 29. P. 29–38.
36. Lee R.M., Gerking S.D., Jezierska B. Electrolyte balance and energy mobilization in acid-stressed rainbow trout, Salmo gairdneri and their relation to reproductive success // Environ. Biol. Fishes. 1983. V. 8. № 2. P. 115–123.
37. Kennedy C.J., Picard C. Chronic low pH exposure affects the seawater readiness of juvenile Pacific sockeye salmon // Fish Physiol. Biochem. Online FirstTM, 24 January 2012. 13 p.
38. Kitamura S., Ikuta K. Acidification severely suppresses spawning of hime salmon (land-locked sockeye salmon, Oncorhynchus nerka) // Aquat. Toxicol. 2000. V. 51. P. 107–113.
39. Raitaniemi J. The Growth Responses of Fish to Differences in Acidity-Related Lake Characteristics and Fish Species Composition: Acad. dis. Helsinki: Department of Ecology and Syst. Division of Population Biol. Univ. of Helsinki, 1999. 24 p.
40. Ultsch G.R., Ott M.E., Heisler N. Acid-base and electrolyte status in carp (Cyprinus carpio) exposed to low environmental pH // J. Exp. Biol. 1981. V. 93. P. 65–80.
41. Wendelaar B.S.E., Dederen L.H.T. Effects of acidified water on fish // Endeavour. 1986. V. 10. P. 198–202.
42. Wright R.F., Snekvik E. Acidic precipitation: chemistry and fish populations in 700 lakes in southernmost Norway // Verh. Int. Ver. theor. und angew. Limnol. 1978. V. 20. P. 765–775.
Л.В. Худая, А.И. Худый, М.М. Марченко
Особенности функционирования системы восстановления метгемоглобина в эритроцитах стерляди при нитритной интоксикации.
Черновицкий национальный университет им. Юрия Федьковича, 58012 г. Черновцы, ул. М. Коцюбинского, 2, Украина
e-mail: lidia_khuda@email.ua
Исследовано содержание метгемоглобина и функциональное состояние системы его восстановления в эритроцитах стерляди Acipenser ruthenus L. при влиянии нитрита натрия в диапазоне концентраций 7.25–217.5 ммоль/л. Показано, что в основе специфики накопления метгемоглобина лежат функциональные особенности метгемоглобинредуктазной системы. Высокие концентрации нитритов в плазме ингибируют гем-содержащие ферменты (метгемоглобинредуктазу, каталазу), которые в норме предотвращают чрезмерное накопление метгемоглобина. В условиях нитритной интоксикации ведущая роль в функционировании системы восстановления метгемоглобина принадлежит ее неэнзиматическим компонентам (восстановленному глутатиону, аскорбату).
Ключевые слова: нитриты, метгемоглобин, эритроциты, Acipenser ruthenus L..
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Андреева А.Ю., Солдатов А.А. Чувствительность ядерных эритроцитов Scorpena porcus L. к различным концентрациям нитритов (эксперименты in vitro) // Матер. ІІІ Междунар. ихтиол. науч.-практ. конф. Днепропетровск, 2010. С. 10–12.
2. Горячковский А.М. Клиническая биохимия в лабораторной диагностике. Одесса: Экология, 2005. 616 с.
3. Маєвська О.М., Бойко М.М., Великий М.М. Активність каталази за дії нітриту натрію // Укр. біохім. журн. 2004. Т. 76. № 5. С. 140–143.
4. Методические указания по проведению гематологического обследования рыб. №13-4-2/1487. М.: Минсельхозпрод РФ, 1999. 20 с.
5. Методы оценки оксидативного статуса. Воронеж: Изд.-полиграф. центр Воронеж. гос. ун-та, 2009. 62 с.
6. Проданчук Г.Н., Балан Г.М. Токсические метгемоглобинемии: механизмы формирования и пути оптимизации лечения // Соврем. проблемы токсикологии. 2007. № 1. С. 37–45.
7. Солдатов А.А. Особенности структуры, полиморфизм и устойчивость к окислению гемоглобинов рыб // Журн. эвол. биохим. и физиол. 2002. Т. 38. № 4. С. 305–308.
8. Худа Л.В., Марченко М.М., Хачман Я.Ю., Худий О.І. Вплив нітритної інтоксикації на систему відновлення метгемоглобіну в еритроцитах карася сріблястого // Біологічні системи. 2012. Т. 4. Вип. 4. С. 393–396.
9. Худа Л.В., Марченко М.М., Худий О.І. Інтенсивність окислювальних процесів у еритроцитах коропа за умов нітритрної інтоксикації // Біологічні системи. 2013. Т. 5. Вип. 1. С. 16–21.
10. Alexander J., Benford D., Cookburn A. Nitrite as undesirable substances in animal feed // The EFSA J. 2009. V. 1017. P. 1–47.
11. Cooper Ch. Peroxynitrite reacts with methemoglobin to generate globin-bound free radical species // Adv. Exp. Med. and Biol. 1999. V. 454. P. 195–202.
12. Gy Papp Zs., Jeney Zs., Jeney G. Comparative studies on the effect of European catfish (Silurus glanis L.) and sturgeon hybrid (Acipenser ruthenus L. × Acipenser baeri L.) // J. Appl. Ichthyol. 1995. V. 11. P. 372–374.
13. Kroupova H., Machava J., Piackova V. Nitrite intoxication of cоmmоn carp (Cyprinus carpio L.) at different water temperatures // Acta Vet. Brno. 2006. V. 75. P. 561–569.
14. Moraes G., Avilez I.M., Altran A.E. Biochemical effects of environmental nitrite in matrinxa (Brycon cephalus) // Aquatic Toxicology: Mechanisms and Consequences. International Congress on the Biology of Fish. Symposium Proceedings. Vancouver, 2002. P. 15–26.
15. Padayatty S.J., Katz A., Wang Y. et al. Vitamin C as an Antioxidant: Evaluation of Its Role in Disease Prevention // J. Amer. College Nutrit. 2003. V. 22. № 1. Р. 18–35.
16. Raja I.A., Sapkal H.P. Blood and electrolyte responses in Clarias batrachus exposed to nitrogen pollution // Biosci. Biotech. Res. Comm. 2011. V. 4. № 2. P. 219–222.
17. Saleh M.C., McConkey S. NADH-dependent cytochrome b5 reductase and NADPH methemoglobin reductase activity in the erythrocytes of Oncorhynchus mykiss // Fish Physiol. Biochem. 2012. V. 38. № 6. Р. 1807–1813.
18. Svobodova Z., Machova J., Poleszczuk G. Nitrite poisoning of fish in aquaculture facilities with water-recirculating system // Acta Vet. Brno. 2000. V. 74. P. 129–137.
19. Verlhac V., Gabaudan J. The effect of vitamin C on fish health. Roche Technical Buletin. Basel: Hoffmann-La Roche Ltd, 1997. 30 p.
В.В. Безматерных, Г.Х. Щербина
Размерно-массовая характеристика личинок старших возрастов хирономид (Diptera, Chironomidae), наиболее распространенных в бассейне Верхней Волги.
Институт биологии внутренних вод им И. Д. Папанина РАН, 152742 пос. Борок, Ярославская обл., Некоузский р-н
e-mail: gregory@ibiw.yaroslavl.ru
Приведены экстремальные значения длины тела, сырой массы и ширины головной капсулы, а также средние значения сырой массы личинок третьего и четвертого возрастов для 45 наиболее распространенных видов и групп хирономид бассейна Верхней Волги.
Ключевые слова: хирономиды, головная капсула, возраст, длина, масса.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Балушкина Е. В. Функциональное значение личинок хирономид в континентальных водоемах. Л.: Наука, 1987. 180 с.
2. Житенева Т.С. Питание леща на разных биотопах Рыбинского водохранилища // Биология внутренних вод: Информ. бюл. Л., 1980. № 46. С. 26–30.
3. Константинов А.С. Биология хирономид и их разведение // Тр. Саратов. отд. ВНИРО. 1958. Т. 5. 359 с.
4. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсем. Orthocladiinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae). Л.: Наука, 1970. 344 с.
5. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсем. Podonominae и Tanypodinae фауны СССР (Diptera, Chironomidae). Л.: Наука, 1977. 152 с.
6. Панкратова В.Я. Личинки и куколки комаров подсемейства Chironomidae фауны СССР (Diptera, Chironomidae). Л.: Наука, 1983. 295 с.
7. Черновский А.А. Определитель личинок комаров семейства Tendipedidae. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1949. 240 с.
8. Шилова А.И. Хирономиды Рыбинского водохранилища. Л.: Наука, 1976. 253 с.
9. Щербина Г. Х. Хирономиды озер Прибалтики, их продукция и роль в питании рыб-бентофагов: Дис. … канд. биол. наук. Калининград, 1984. 195 с.
10. Щербина Г.Х. Таксономический состав и сапробиологическая значимость донных макробеспозвоночных различных пресноводных экосистем северо-запада России // Экология и морфология беспозвоночных континентальных вод. Махачкала: Наука ДНЦ, 2010. С. 426–466.
С.Г. Соколов*, О.А. Новожилов**
Зараженность ротана Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Actinopterygii, Odontobutidae) паразитами в копаных прудах.
*Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН, 119071 Москва, Ленинский проспект, 33
**Калининградский государственный технический университет, 236022 Калининград, Советский проспект, 1
e-mail: sokolovsg@mail.ru
Исследования выполнены в двух небольших по площади и глубине копаных прудах, расположенных на незначительном расстоянии друг от друга, но существенно различающихся по зарастаемости мягкой водной растительностью (30 и 100%). Ротаны из этих водоемов различались по зараженности инфузорией Trichodinella epizootica (Raabe, 1950). Встречаемость и индекс обилия данного паразита были значимо выше у рыб из пруда с зарастаемостью 30%.
Ключевые слова: Perccottus glenii, Trichodinella epizootica, копаные пруды, зарастаемость водоема, обилие паразитов.
Показать список литературы
Cписок литературы
1. Абдулхамидов Д.М., Алиева К.Г., Алиев И.А. Исследование эколого-гидрохимического состояния Южно-Аграханского залива // Фундаментальные исследования. 2008. № 1. С. 157–159 .
2. Быховская-Павловская И.Е. Паразиты рыб. Руководство по изучению. Л.: Наука, 1985. 117 с.
3. Гуревич Ф.А. Фитонциды как экологический фактор // Проблемы экологии. Томск: Томск. гос. ун-т, 1983. Т. 5. С. 21–26.
4. Гуревич Ф.А., Ястребова О.Л. О протистоцидных свойствах некоторых видов водных и прибрежно-водных растений Красноярского края // Тр. Красноярск. отд. Сиб. науч.-исслед. и проект.-конструкт. ин-та рыб. хоз-ва. 1975. Т. 10. С. 106–113.
5. Корсак Н.В., Мякушко В.К. Формирование качества воды на мелководьях Южного водохранилища (канал Днепр – Кривой Рог) под влиянием зарослей высшей водной растительности // Гидробиол. журн. 1981. Т. 17. № 1. С. 48–51.
6. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 352 с.
7. Обухович И.И. Распространение ротана-головешки (Perccottus glenii Dybowski, 1877) в урбанизированных водоемах Беларуси // Вестн. Мордов. ун-та. Сер. биол. науки. 2009. № 1. C. 140–141.
8. Соколов С.Г., Мошу А.Я. Первые сведения о паразитах ротана Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Actinopterygii: Odontobutidae) в водоемах Республики Молдова // Изв. Самарск. науч. центра РАН. 2013. Т. 15. № 3. С. 213–221.
9. Соколов С.Г., Протасова Е.Н., Решетников А.Н. Паразитофауна ротана Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Osteichthyes, Odontobutidae) в некоторых водоемах европейской части России // Поволжск. экол. журн. 2011. № 4. С. 507–522.
10. Соколов С.Г., Протасова Е.Н., Решетников А.Н., Шедько М.Б. Паразиты ротана Perccottus glenii Dybowski, 1877 (Actinopterygii: Odontobutidae), интродуцированного в водоемы европейской части России // Успехи соврем. биологии. 2012. Т. 132. № 5. С. 487–502.
11. Чернышева Н.Б. Влияние абиотических и биотических факторов среды на паразитов молоди хищных рыб // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1979. Вып. 140. С. 143–155.
12. Юнчис О.Н., Нестеренко В.Н., Кононов А.А., Хохлова А.Н. Влияние высших водных растений на паразитофауну молоди плотвы // Сб. науч. тр. Гос. НИИ озер. и реч. рыб. хоз-ва. 1983. Вып. 197. С. 39–48.
13. Kvach Y., Drobiniak O., Kutsokon Y., Hoch I. The parasites of the invasive Chinese sleeper Perccottus glenii (Fam. Odontobutidae), with the first report of Nippotaenia mogurndae in Ukraine // Knowl. Managt. Aquat. Ecosyst. 2013. V. 409. № 5. P. 1–5.
