Журнал "Биология внутренних вод"

Cписок литературы

Дорофеев П.И. 1966. О миоценовой флоре из окрестностей с. Юровского на Иртыше // Бот. ж. Т. 51. № 10. С. 1480.
Капитонова О.А., Дюкина Г.Р. 2008. Новый вид Typha (Typhaceae) из Удмуртии // Бот. ж. Т. 93. № 7. С. 1132.
Клоков В.М., Краснова А.М. 1972. Замiтка про українськi рогози (рiд Typha) // Укр. бот. ж. Т. 29. № 6. С. 687.
Краснова А.Н. 1987. К систематике рогоза широколистного Typha latifolia L. // Фауна и биология пресноводных организмов. Ленинград: Наука. С. 43.
Краснова А.Н. 1999. Структура гидрофильной флоры техногенно трансформированных водоёмов Северо-Двинской водной системы. Рыбинск: ОАО “Рыбинский Дом печати”.
Краснова А.Н. 2011. Гидрофильный род Рогоз (Typha L.) (в пределах бывшего СССР). Ярославль: ООО “Принтхаус-Ярославль”.
Краснова А.Н. Новый вид гидрофильного рода Typha L. (Typhaceae) Евразии // Тольятти, 2016. Самарская Лука: проблемы региональной и глобальной экологии. Т. 25. № 2. С. 201.
Краснова А.Н. 2016. Гидрофильный род Typha L. и подрод Rohrbachia (Kronf. ex Riedl) A. Krasnova (Typhaceae) в Eвразии: систематика, эволюция // Тр. Инст. биол. внутр. вод РАН. Вып. 76(79). Ярославль: Филигрань. С. 46.
Краснова А.Н., Ефремов А.Н. 2018. Новый вид гидрофильного рода Typha L. (Typhaceae) Центральной Якутии // Природные ресурсы Арктики и Субарктики. № 2. С. 105.
Красноборов И.М., Короткова Е.М. 1988. Семейство Typhaceae // Флора Сибири. Новосибирск: Наука. Т. 1. С. 86.
Крестов П.В., Баркалов В.Ю., Омелько А.А., Якубов В.В., Накамура Ю., Сато К. 2009. Реликтовые комплексы растительности современных рефугиумов Северо-Восточной Азии. Комаровские чтения. Владивосток: Дальнаука. Вып. 56. С. 5.
Леонова Т.Г. 1976. Обзор видов рода Typha L. европейской части СССР // Новости систематики высших растений. Ленинград: Наука. Т. 13. С. 8.
Леонова Т.Г. 1979. Семейство Рогозовые Typhaceae Juss. // Флора европейской части. СССР. Ленинград: Наука. Т. 4. С. 326.
Мавродиев Е.В., Капитонова О.А. 2015. Таксономический состав рогозовых (Typhaceae) флоры европейской части России // Новости систематики высших растений. Санкт-Петербург. Т. 46. С. 4.
Победимова Е.Г. 1950. Новые виды кавказской флоры // Бот. матер. герб. БИН АН СССР. Москва: АН СССР. Т. 12. С. 21.
Реймерс Н.Ф. 1990. Природопользование: Словарь. Москва: Мысль.
Решетникова Н.М., Майоров С.Р., Скворцов А.К., Крылов А.В., Воронкина Н.В., Попченков М.И., Шмытов А.А. 2010. Калужская флора: аннотированный список сосудистых растений Калужской области. Москва: Товарищество научных изданий КМК. 548 c.
Федченко Б.А. 1934. Семейство // Флора СССР. Mосква: АН СССР. Т. 1. С. 210.
Флора Даурии. 2008. Семейство Typhaceae Juss. – Рогозовые. Владивосток: Дальнаука. Т. 1. С. 100.
Цвелев Н.Н. 1996. Род Рогоз Typha L. // Сосудистые растения советского Дальнего Востока. Санкт-Петербург. Т. 8. С. 356.
Baranov A., Skvortsov B. 1943. Diagnoses plantarum novarum et minus cognitarum Mandshuriae. Harbin.
Casper S.J., Krausch H.-D. 1980. Typhaceae // Subwasserflora von Mitteleuropa. Jena. Bd 23. S. 91.
Doweld A.B. 2017. New names of Typha of Northern Eurasia (Typhaceae) // Acta Paleobotanica. № 57(2). P. 233. https:/doi.org/10.1515/acpa-2017-0010
Graebner P. 1900. Typhaceae // Das Pflanzenreich. Leipzig. V. 2 (IV, 8). S. 8.
Koch C., Sonder U. 1844. Typha schuttleworthii. Synopsis Flora Germany. Edition II. S. 786.
Kronfeld M. 1889. Monographie der Gattung Typha Tourn. // Verb. Zool.-Bot. Ges. Wien. S. 90.
Linne C. 1753. Species Plantarum. Holmiae. P. 971.
Presl C. 1849. Typha orientalis Presl. // Epimeliae Botanicae. P. 239.
Riedl H. 1970. Typhaceae // Flora Iranica. Austria. № 71/30.
Schur I.F. 1851. Zur Entwicklungsgeschichte der Gattung Typha. Hermannstadt, verhandlunge. Siebenbury. Ver. 2. 208 p. (Typha, p. 177–195).
Schur I.F. 1866. Enumeratio plantarum Transsilvaniae. Vindobonas (Vienna).
Sun Kun, Simpson D.A. 2010. Typhaceae // Fl. China. Typha. Harvard. V. 23. S. 161.

Cписок литературы

Amossé, A. Note sur des Diatomées récoltées en Indochine, Revue Algologique, Nouvelle Série, 1969, vol. 9, no 4, pp. 326–344.
Bąk, M., Witkowski, A., Zelazna-Wieczorek, J., Wojtal, A.Z., Szczepocka, E., Szulc, A. and Szulc, B. Klucz do oznaczania okrzemek w fitobentosie na potrzeby oceny stanu ekologicznego wód powierzchniowych w Polsce Biblioteka Monitoringu Srodowiska. Warszawa [Warsaw]: Glowny Inspektorat Ochrony Srodowiska, 2012.
Bahls, L.L. Northwest diatoms: a photographic catalogue of species in the Montana Diatom Collection, with ecological optima, associates, and distribution records for the nine northwestern United States, vol. 3, Hannaea, Helena, Montana, 2006.
Bahls, L.L. A checklist of diatoms from inland waters of the Northwestern United States, Proceedings of the Academy of Natural Sciences of Philadelphia, 2009, vol. 158, no 1, pp. 1–35.
Cantonati, M., Kelly, M.G. and Lange-Bertalot, H. Freshwater Benthic Diatoms of Central Europe: Over 800 Common Species Used in Ecological Assessment. Germany: Koeltz Botanical Books, 2017, pp. 1–942.
Glushchenko, A.M., Kulikovskiy, M.S. and Kociolek, J.P. New diatom species from Gomphonema subtile-group in Southeast Asia, Phytotaxa, 2017, vol. 329, no. 3, pp. 223–323. https://dx.doi.org/10.11646/phytotaxa.329.3.3
Kociolek, J.P., Glushchenko, A.M. and Kulikovskiy, M.S. Typification, valve ultrastructure, and systematic position of Gomphonema gomphopleuroides Amossé ex Kociolek, Glushchenko & Kulikovskiy, an endemic diatom from Southeast Asia, Diatom Research, 2015, vol. 30, no. 3, pp. 247–255. https://doi.org/10.1080/0269249X.2015.1072583
Kociolek, J.P., Kapustin, D.A. and Kulikovskiy, M.S. A new, large species of Gomphonema Ehrenberg from ancient Lake Matano, Indonesia, Diatom Research, 2018, vol. 33, no. 2, pp. 241–250. https://doi.org/10.1080/0269249X.2018.1513868
Kociolek, J.P. and Stoermer, E.F. Ultrastructure of Cymbella sinuata and its allies (Bacillariophyceae), and their transfer to Reimeria, gen. nov., Systematic Botany, 1987, vol. 12, no. 4, pp. 451–459. https://doi.org/10.2307/2418882
Kulikovskiy, M.S., Glushchenko, A.M., Genkal, S.I. and Kuznetsova, I.V. Identification book of diatoms from Russia, Yaroslavl: Filigran, 2016, pp. 1–804.
Kulikovskiy, M.S., Glushchenko, A.M., Kuznetsova, I.V. and Kociolek, J.P. Description of the new freshwater diatom genus Okhapkinia gen. nov. from Laos (Southeast Asia), with notes on family Sellaphoraceae Mereschkowsky 1902, Fottea, Olomouc, 2018, vol. 18, no. 1, pp. 120–129. https://dx.doi.org/10.5507/fot.2017.021
Kulikovskiy, M.S., Lange-Bertalot, H., Metzeltin, D. and Witkowski, A. Lake Baikal: Hotspot of endemic diatoms I, Iconographia Diatomologica, 2012, vol. 23, pp. 7–607.
Kulikovskiy, M.S., Maltsev, Ye.I., Andreeva, S.A., Glushchenko, A.M., Gusev, E.S., Podunay, Yu.A., Ludwig, T.V., Tusset, E. and Kociolek, J.P. Description of a new diatom genus Dorofeyukea gen. nov. with remarks on phylogeny of the family Stauroneidaceae, Journal of Phycology, 2019, vol. 55, no. 1, pp. 173–185. https://dx.doi.org/10.1111/jpy.12810
Levkov, Z. and Ector, L. A comparative study of Reimeria species (Bacillariophyceae), Nova Hedwigia, 2010, vol. 90, no. 3–4, pp. 469–489. https://dx.doi.org/10.1127/0029-5035/2010/0090-0469
Liu, Y., Kociolek, J.P., Glushchenko, A.M., Kulikovskiy, M.S. and Fan, Y. A new genus of Eunotiales (Bacillariophyta, Bacillariophyceae: Peroniaceae), Sinoperonia, from Southeast Asia, exhibiting remarkable phenotypic plasticity, and evidence for another lineage of monorapahid diatoms, Phycologia, 2018, vol. 57, no. 2, pp. 147–158. https://dx.doi.org/10.2216/17-21.1
Metzeltin, D., Lange-Bertalot, H. and García-Rodríguez, F. Diatoms of Uruguay. Compared with other taxa from South America and elsewhere, Iconographia Diatomologica, 2005, vol. 15, pp. 1–736.
Sala, S.E., Guerrero, J.M. and Ferrario, M.E. Redefinition of Reimeria sinuata (Gregory) Kociolek & Stoermer and recognition of Reimeria uniseriata nov. sp., Diatom Research, 1993, vol. 8, no. 2, pp. 439–446. https://doi.org/10.1080/0269249X.1993.9705273
Sumita M. and Watanabe T. Epilithic freshwater diatoms in Jakarta, Surabaya and Singapore, Japanese Journal of Phycology, 1979, vol. 27, no. 1, pp. 1–6.
Taylor, J.C., Harding, W.R. and Archibald, C.J.M. An Illustrated Guide to Some Common Diatom Species from South Africa, WRC Report TT 282/07, 2007, pp. 1–178.
Verma, J., Nautiyal, P. and Srivastava, P. Diatoms of the Cymbella sensu lato species of the two different eco-regions of the Indian Mountain Rivers, Annals of Plant Sciences, 2017, vol. 6, no 10, pp. 1705–1710. https://doi.org/10.21746/aps.2017.6.10.4
Watanabe, T. and Usman, R. 1987. Epilithic freshwater diatoms in Central Sumatra, Diatom, 1987, vol. 3, pp. 33–87. https://doi.org/10.11464/diatom1985.3.0_33
Zyong, Dyk Tien. Aglal flora in waterbodies of Vietnam. Doct. Diss, Tashkent, 1982, pp. 1–474.

Cписок литературы

Alekperov, I. and Snegovaya, N. Specific composition and number of testaceous amoebae (Testacea Lobosia, Protozoa) of Ganli-Gol lake, Turkish Journal of Zoology, 1999, vol. 23, pp. 313–319.
Alves, G., Velho, L., Simoes, N. and Lansac-Toha, F. Biodiversity of testate amoebae (Arcellinida and Euglyphida) in different habitats of a lake in the Upper Parana River floodplain, European Journal of Protistology, 2010, vol. 46, № 4, pp. 310–318.
Bobrov, A. and Wetterich, S. Testate amoebae of arctic tundra landscapes, Protistology, 2012, vol. 7, № 1, pp. 51–58.
Davidova, R. A Study of the Moss Testate Amoebae (Protozoa: Testacea) of the Strandzha Natural Park (South-East Bulgaria), Acta zoologica bulgarica, 2008, vol. 60, № 1, pp. 23–30.
Davidova, R. Testate Amoebae Communities (Protozoa: Arcellinida and Euglyphida) in Rabisha Reservoir (Northwestern Bulgaria), Acta zoologica bulgarica, 2010, vol. 62, № 3, pp. 259–269.
Davidova, R., Golemansky, V. and Todorov, M. Diversity and biotopic distribution of the testate amoebae (Protozoa: Testacea) of the “Ticha” dam (North-East Bulgaria), Acta zoologica bulgarica, 2008, Suppl. 2, pp. 7–18.
Davidova, R. and Vasilev, V. Seasonal Dynamics of the Testate Amoebae Fauna (Protozoa: Arcellinida and Euglyphida) in Durankulak Lake (Northeastern Bulgaria), Acta zoologica bulgarica, 2013, vol. 65, №1, pp. 27–36.
Davidova, R. and Boycheva, M. Testate Amoebae Fauna (Amoebozoa, Rhizaria) from the Benthal of Kamchia Reservoir (Eastern Bulgaria), Acta zoologica bulgarica, 2015, vol. 67, №3, pp. 375–384.
Davidova, R., Ganeva, A. and Boycheva, M. Ecology of Communities of Testate Amoebae (Amoebozoa, Rhizaria) Associated with Terrestrial Bryophytes in Zlatni Pyasatsi Natural Park, North-eastern Bulgaria, Acta zoologica bulgarica, 2016, vol. 68, № 2, pp. 281–290.
Golemansky, V., Todorov, M. and Temelkov, B. Diversity and biotopic distribution of the Rhizopods (Rhizopoda: Lobosia and Filosia) from the Western Rhodopes Bulgaria. In: Beron P. (ed.) Biodiversity of Bulgaria. 3. Biodiversity of Western Rhodopes (Bulgaria and Greece). I, Sofia, Pensoft & Nat. Mus. Natur. Hist., 2006, pp. 205–220.
Hammer, O., Harper, D. and Ryan, P. PAST: Palaeontological Statistics software package for education and data analysis, Palaeontologia electronika, 2001, vol. 4, pp. 1–9.
Kulikovskaya, I. About fauna of the Testaceous Amoebae (Rhizopoda, Testacea) of the Glubokoye lake, Biocenoses of the mesotrophic lake Glubokoye, 1983, pp. 149–181 (In Russian).
Laminger, H., Zisette, R., Phillips, S. and Bredigam, F. Beitrag zur kenntnis Protozoenfauna Montanas (USA): I. Die Testaceen (Rhizopoda) in der region des Flathead-Lake-Tales, Hydrobiology, 1979, vol. 65, № 3, pp. 257–271.
Lansac-Toha, F., Alves, G., Velho, L., Robertson, B. and Joko, C. Composition and occurrence of testate amoebae in the Curua-Una Reservoir (State of Para, Brasil), Acta Limnologica Bras., 2008, vol. 20, №3, pp. 177–195.
Lorencova, M. Thecamoebiens from recent lake sediments from the Šumava Mts, Czech Republic, Bulletin of Geosciences, 2009, vol. 84, №2, pp. 359–376.
Malysheva, E., Mazei, N., Shapovalov, M., Saprykin, M. and Mazei, Yu. Freshwater Testate Amoebae in the Belaya River Basin (Northwestern Caucasus), Inland Water Biology, 2017, vol. 10, № 1, pp. 92–96.
Mazei Yu. and Tsyganov, A. Species composition, spatial distribution and seasonal dynamics of testate amoebae community in a sphagnum bog (Middle Volga region, Russia), Protistology, 2008, vol. 5, № 2/3, pp. 156–206.
Patterson, R., Roe, H. and Swindles, G. Development of an Arcellacea (testate lobose amoebae) based transfer function for sedimentary phosphorus in lakes, Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology, 2012, vol. 348–349, pp. 32–44.
Prentice, S., Roe, H., Bennion, H., Sayer, C. and Salgado, J. Refining the palaeoecology of lacustrine testate amoebae: insights from a plant macrofossil record from a eutrophic Scottish lake, J. Paleolimnology, 2017, pp. 1–19.
Qin, Y., Booth, R., Gu, Y., Wang, Y. and Xie, S. Testate amoebae as indicators of 20th century environmental change in Lake Zhangdu, China, Fundam Appl. Limnol., 2009, vol. 175, pp. 29–38.
Schönborn, W. Die Ökologie der Testaceen im oligotrophen See, dargestellt am Beispiel des Groben Stechlinsees, Limnologica (Berlin), 1962, vol. 1, pp. 111–182.
Schönborn, W. Testaceen als Bioindikatoren im System der Seentypen. Untershungen in Masurischen Seen und im Suwalki Gebiet (Polen), Limnologica, 1966, vol. 4, № 1, pp. 1–11.
Schönborn, W. Paläolimnologische Studien an Testaceen aus Bohrkernen des Latnjajaure (Abisko-Gebiet; Schwedisch-Lappland), Hydrobiologia, 1973, vol. 42, № 1, pp. 63–75.
Todorov, M. and Golemansky, V. Testate amoebae (Protozoa: Rhizopoda) of the coastal lakes Shabla and Ezerets (Northeastern Bulgaria), a description of Pentagonia shablensis sp. nov. In: Biodiversity of Shabla Lake System, Sofia, ‘Prof. M. Drinov’ Academic Publishing House, 1998, pp. 69–90.
Todorov, M. and Golemansky, V. Testate Amoebae (Protozoa: Testacea) of the Glacial Lakes in the Rila National Park (Southwestern Bulgaria). In: Golemansky, V. and Naidenow, W. (eds.) Biodiversity and evolution of glacial water ecosystems in the Rila Mountains, Sofia, Institute of Zoology, 2000, pp. 15–26.
Todorov, M., Golemansky, V. and Temelkov B. Diversity and Biotopic Distribution of Testate amoebae (Protozoa: Arcellinida and Euglyphida) in the Batak Reservoir (Soutern Bulgaria), Acta zoologica bulgarica, 2008, vol. 60, № 2, pp. 115–124.
Vincke, S., van de Vijver, B., Gremmen, N. and Beyens, L. The moss dwelling testacean fauna of the Stromness Bay (South Georgia), Acta Protozoologica, 2006, vol. 45, pp. 65–75.
Wanner, M. A Review on the Variability of Testate Amoebae: Methodological Approaches, Environmental Influences and Taxonomical Implications, Acta Protozoologica, 1999, vol. 38, pp. 15–29.
Wanner, M. and Meisterfeld, R. Effects of some Environmental Factors on the Shell Morphology of Testate Amoebae (Rhizopoda, Protozoa), Europ. J. Protistol., 1994, vol. 30, pp. 191–195.
Zyapkov, L. Topical problems related to water use and protection. In: Geography of Bulgaria. Physical geography. Socio-economic geography, Sofia, ForCom, 2002, pp. 256–276.

Cписок литературы

Методика определения токсичности воды по смертности и изменению плодовитости дафний. 1999. Москва: Акварос.
Семенченко В.П., Разлуцкий В.И. 2009. Факторы, определяющие суточное распределение и перемещения зоопланктона в литоральной зоне пресноводных озер // Журнал Сибирского федерального университета: серия биология. Т. 2. № 2. С. 191.
Chapman S., Bartels J. 1940. Geomagnetism. London: Oxford University Press.
Dibner C., Schibler U. 2015. Circadian timing of metabolism in animal models and humans // J. Intern. Med. V. 277. № 5. P. 513.
Dobrynin A.E. 2009. Diurnal dynamics of the vertical distribution of zooplankton in an oligotrophic lake // Inland Water Biology. V. 2. № 2. P. 162.
Hore P.J., Mouritsen H. 2016. The radical-pair mechanism of magnetoreception // Annu. Rev. Biophys. V. 45. P. 299.
Hunt T., Sassone-Corsi P. 2007. Riding tandem: circadian clocks and the cell cycle // Cell. V. 129. P. 461.
Krylov V.V., Kantserova N.P., Lysenko L.A., Osipova E.A. 2019. A simulated geomagnetic storm unsynchronizes with diurnal geomagnetic variation affecting calpain activity in roach and great pond snail // Int. J. Biometeorol. (in print).
Maas A.E., Blanco-Bercial L., Lo A., Tarrant A.M., Timmins-Schiffman E. 2018. Variations in copepod proteome and respiration rate in association with diel vertical migration and circadian cycle // Biol. Bull. V. 235. № 1. P. 30.
Rund S.S., Yoo B., Alam C., Green T., Stephens M.T., Zeng E., George G.F., Sheppard A.D., Duffield G.E., Milenkovic T., Pfrender M.E. 2016. Genome-wide profiling of 24 hr diel rhythmicity in the water flea, Daphnia pulex: network analysis reveals rhythmic gene expression and enhances functional gene annotation // BMC Genomics. V. 17: 653. https://doi.org/10.1186/s12864-016-2998-2
Sancar A. 2003. Structure and function of DNA photolyase and cryptochrome blue-light photoreceptors // Chem. Rev. V. 103. P. 2203.
Schibler U., Sassone-Corsi P. 2002. A web of circadian pacemakers // Cell. V. 111. P. 919.
Solov'yov I. A., Chandler D. E., Schulten K. 2007. Magnetic field effects in Arabidopsis thaliana cryptochrome-1 // Biophys. J. V. 92. P. 2711.
Talikina M.G., Izyumov Y.G., Krylov V.V. 2017. The impact of hypomagnetic conditions and light deprivation on mitosis of germ cells and body length of prelarvae in roach (Rutilus rutilus L.) // Inland Water Biology. V. 10. № 2. P. 243.
US EPA Ecological effects test guidelines. 1996. OPPTS 850.1300 Daphnid chronic toxicity test. Washington: US EPA, 10 p. https://www.epa.gov/sites/production/files/2015-07/documents/850-1300.pdf.
Yamazaki Y., Maute A. 2017. Sq and EEJ – a review on the daily variation of the geomagnetic field caused by ionospheric dynamo currents // Space Sci. Rev. V. 206. P. 299.

Cписок литературы

Алимов А.Ф. 2015. Некоторые закономерности плодовитости у животных // Успехи современной биологии. Т. 135. № 3. С. 227.
Биологические инвазии в водных и наземных экосистемах. 2004. Москва: Товарищество науч. изданий КМК.
Боруцкий Е.С., Степанова Л.А., Кос М.С. 1991. Определитель Calanoida пресных вод СССР. Ленинград: Наука.
Бычек Е.А. 2008. Новые виды Polyphemoidea для волжских водохранилищ // Российский журнал биологических инвазий. № 1. С. 2.
Иванова М.Б. 1985. Продукция планктонных ракообразных в пресных водах. Ленинград: Зоол. ин-т АН СССР. 222 с.
Калинкина Н.М., Пименова И.В. 2003. Выращивание лабораторных культур ветвистоусых рачков Daphnia magna Straus и Simocephalus serrulatus Koch // Водная среда Карелии: исследования, использование и охрана. Петрозаводск: Изд-во Карельск. науч. центра РАН. C. 103.
Крупа Е.Г., Доброхотова О.В., Стуге Т.С. 2016. Фауна Calanoida (Crustacea: Copepoda) Казахстана и сопредельных территорий. Алматы: Etalon Print.
Лазарева В.И., Сабитова Р.З., Быкова С.В. и др. 2018а. Распределение летнего зоопланктона в каскаде водохранилищ Волги и Камы // Тр. Ин-та биол. внутр. вод РАН. Вып. 83(86). С. 62.
Лазарева В.И., Сабитова Р.З., Соколова Е.А. 2018б. Особенности структуры и распределения позднелетнего (август) зоопланктона в водохранилищах Волги // Тр. Ин-та биол. внутр. вод РАН. Вып. 82(85). С. 28.
Попов А.И. 2007. Некоторые данные по видовому составу и структуре зоопланктона Саратовского водохранилища // Известия Самарского научного центра РАН. Т. 9. № 4. С. 1013.
Рубахина С.Г. 2000. Особенности биологии массовых видов амфипод на литорали Белого моря: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Петрозаводск: Петрозаводский гос. ун-т.
Самчишина Л.В. 2005. Эколого-фаунистические и морфологические аспекты исследования пресноводных и солоновато-водных Calanoida (Crustacea, Copepoda) Украины: Дис. … канд. биол. наук НАН Украины. Киев: Ин-т зоологии им. И.И. Шмальгаузена.
Тимохина А.Ф. 2000. Зоопланктон как компонент экосистемы Куйбышевского водохранилища. Тольятти: Ин-т экологии волжского бассейна РАН.
Alekseev V.R., Souissi A. 2011. A new species within the Eurytemora affinis complex (Copepoda: Calanoida) from the Atlantic Coast of USA, with observations on eight morphologically different European populations // Zootaxa. V. 2767. P. 41.
Boxshall G. 2019. Eurytemora affinis (Poppe, 1880) // World of Copepods database; http://www.marinespecies.org (Accessed 13 February 2019).
Busch A., Brenning U. 1992. Studies on the status of Eurytemora affinis (Poppe, 1880) (Copepoda, Calanoida) // Crustaceana. V. 62. P. 13.
Castel J., Feurtet A. 1993. Morphological variations in the estuarine copepod Eurytemora affinis as a response to environmental factors // Proceedings of the twenty-seventh European marine biology symposium. Dublin, Ireland, P. 179.
Dussart B. 1967. Les Copepodes dese aux continentalesd’ Europe occidentale, Tome 1: Calanoides et Harpacticoides. Paris: BoubLe et Cie.
Folmer O., Black M., Hoeh W. et al. 1994. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates // Mol. Mar. Biol. Biotechnol. V. 3. P. 294.
Hall T.A. 1999. Bioedit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT // Nucleic Acids Res. V. 41. P. 95.
Kiefer F. 1978. Freilebende Copepoda. Das Zooplankton der Binnengewässer. Stuttgart: Schweizerbart.
Kumar S., Stecher G., Li M. et al. 2018. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms // Molecular Biology and Evolution. V. 35. P. 1547.
Lee C.E. 1999. Rapid and repeated invasions of fresh water by the copepod Eurytemora affinis // Evolution. V. 53. P. 1423.
Nordquist O. 1888. Die Calaniden Finlands // Bidrag till kannedom af Finlands Natur och Folk. V. 47. P. 46.
Popov A.I. 2011. Alien species of zooplankton in Saratov Reservoir (Russia, Volga River) // Rus. J. Biol. Invasions. V. 2. Issue 2–3. P. 126.
Razouls C., de Bovée F., Kouwenberg J., Desreumaux N. 2005–2019. Diversité et répartition géographique chez les Copépodes planctoniques marins. Sorbonne Université, CNRS$ http://copepods.obs-banyuls.fr.
Sukhikh N.M., Alekseev V.R. 2013. Eurytemora caspica sp. nov. from the Caspian Sea – one more new species within the E. affinis complex (Copepoda: Calanoida, Temoridae) // Proceedings of the Zoological Institute RAS. V. 317. № 1. P. 85.
Sukhikh N.M., Souissi A., Souissi S. et al. 2016. Genetic and morphological heterogeneity among populations of Eurytemora affinis (Crustacea: Copepoda: Temoridae) in European waters // C.R. Biol. V. 339. P. 197.
Thompson J.D., Higgins D.J., Gibson T.J. 1994. CLUSTAL W: Improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice // Nucleic Acids Res. V. 22. P. 4673.
Vasquez A.A., Hudson P.L., Fujimoto M. et al. 2016. Eurytemora carolleeae in the Laurentian Great Lakes revealed by phylogenetic and morphological analysis // J. Great. Lakes Res. V. 42. № 4. P. 802.
Wilson M.S. 1959. Calanoida // Freshwater Biol. New York: John Wiley and Sons. Р. 738.

Cписок литературы

Балушкина Е.Б., Винберг Г.Г. 1979. Зависимость между массой и длиной тела у планктонных животных // Общие основы изучения водных экосистем. Ленинград: Наука. С. 169.
Дьяченко Т.Н. 2011. Биологические и экологические особенности тростника южного (Phragmites australis) в аспекте оптимального использования его ресурсов // Гидробиол. ж. Т. 47. № 4. С. 23.
Комаркова И.Я., Марван П., Рычкова М.А. 1983. Первичная продукция и роль водорослей в литоральной зоне водоемов различного типа // Гидробиологические процессы в водоемах. Ленинград: Наука. С. 81.
Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. 1975. Москва: Наука.
Халиуллина Л.Ю., Яковлев В.А. 2015. Фитопланктон мелководий в верховьях Куйбышевского водохранилища. Казань: Изд-во Академии наук РТ.
Africa: Atlas of Our Changing Environment. 2008. Nairobi: United Nations Environment Program (UNEP).
African Economic Outlook. Sustainable Cities and Structural Transformation. 2016. Paris: OECD Publishing.
Akoma O.C. 2010. Hydrobiological Survey of the Bahir Dar Gulf of lake Tana, Ethiopia // African Research Review. V. 4(2). P. 57.
Brunelli G., Cannicci E.G. 1940. Le Caratteristiche Biologiche del Lag Tana. Missione di Studio al Lago Tana richerge limnologiche // Bollettino di Chemica e Biologia, Reale Accademia d’Italia. V. 3. P. 71.
Dejen E., Rutjes H.A., de Graaf M. et al. 2002. The “small barbs” Barbus humilis and B. trispilopleura of Lake Tana (Ethiopia): are they ecotypes of the same species? // Environ. Biol. Fishes. V. 65. P. 373.
Dejen E., Vijverberg J., Nagelkerke L.A.J., Sibbing F.A. 2004. Temporal and spatial distribution of microcrustacean zooplankton in relation to turbidity and other environmental factors in a large tropical lake L. Tana, Ethiopia // Hydrobiologia. V. 513. P. 39–49.
Gliwicz Z.M. 2002. On the different nature of top-down and bottom-up effects in pelagic food webs // Freshwater Biol. V. 47. P. 2296.
Imoobe T.O.T., Akoma O.C. 2008. Assessment of zooplankton community structure of the Bahir Dar gulf of Lake Tana, Ethiopia // Ethiopian Journal of Environmental Studies and Management. V. 1. № 2. P. 26.
Murdoch W.W. 1969. Switching in general predators: experiments on predator specificity and stability of prey populations // Ecological Monographs. V. 39. P. 335.
Murdoch W.W., Avery S., Smyth M.E.B. 1975. Switching in predatory fish // Ecology. V. 56. P. 1094.
Rzóska J. 1976. Lake Tana, headwater of the Blue Nile // The Nile, Biology of Ancient River. The Hague; The Netherlands: Dr W. Junk Publishers. Р. 223.
Teshale B., Lee R., Zawdie G. 2001. Development initiatives and challenges for sustainable resource management and livelihood in the Lake Tana region of Northern Ethiopia // Proceedings of the Wetland Awareness Creation and Activity Identification Workshop in Amhara National Regional State. January 23rd 2001. Bahar Dar, Ethiopia. P. 33.
Wondie A., Mengistu S., Vijverberg J., Dejen E. 2007. Seasonal variation in primary production of a high altitude tropical lake (Lake Tana, Ethiopia); effects of nutrient availability and water transparency // Aquat. Ecol. V. 4. P. 195.
Wudneh T. 1998. Biology and Management of Fish Stocks in Bahar Dar Gulf, Lake Tana, Ethiopia. PhD Thesis. Wageningen: Wageningen Agricultural University.
Zelalem W., Prokin A. 2017. Physico-chemical characteristics and macrozoobenthos abundance in the Gulf of Lake Tana // Ethiopian Journal of biological sciences. V. 16. № 2. P. 181.

Cписок литературы

Аннотированный каталог круглоротых и рыб континентальных вод России. 1998. Москва: Наука.
Камилов Г.К. 1973. Рыбы и биологические основы рыбохозяйственного освоения водохранилищ Узбекистана. Ташкент: Фан.
Конобеева В.К. 1983. Влияние течений на распределение молоди рыб в водохранилищах // Вопр. ихтиол. T. 23. Вып. 1. C. 108.
Кудерский Л.А. 1986. Особенности структуры популяций промысловых рыб равнинных водохранилищ // Биологические основы рыбного хозяйства водоемов Средней Азии и Казахстана: Тез. докл. XIX конф. Ашхабад: Ылым. С. 14.
Павлов Д.С., Алиев Д.С., Шакирова Ф.М. и др. 1994. Биология рыб Сарыязинского водохранилища. Москва: Гидропроект.
Павлов Д.С., Костин В.В., Островский М.П. 1991. Влияние расположения зоны изъятия стока на покатную миграцию рыб из водоемов (на примере Шекснинского водохранилища и Лозско-Азатского озера). Москва: Ин-т проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова.
Павлов Д.С., Лупандин А.И., Костин В.В. 1999. Покатная миграция рыб через плотины ГЭС. Москва: Наука.
Павлов Д.С., Михеев В.Н., Костин В.В. 2019. Миграции молоди рыб в зарегулированных реках. Роль экологических барьеров // Вопр. ихтиол. Т. 59. № 2. С. 204.
Павлов Д.С., Нездолий В.К., Ходоревская Р.П. и др. 1981. Покатная миграция молоди рыб в р. Волга и р. Или. Москва: Наука.
Сальников В.Б. 2014. Гольцы семейства Nemacheilidae (Actinopterygii: Cypriniformes: Cobitoidei) водоемов Туркменистана // Selevinia. Зоологический ежегодник Казахстана и Центральной Азии. Т. 22. С. 40.
Bonte D., Hovestadt T., Poethke, H.-J. 2010. Evolution of dispersal polymorphism and local adaptation of dispersal distance in spatially structured landscapes. // Oikos. V. 119. P. 560. https://doi.org/10.1111/j.1600-0706.2009.17943.x
Burgess S.C., Treml E.A., Marshall D.J. 2012. How do dispersal costs and habitat selection influence realized population connectivity? // Ecology. V. 93. P. 1378.
Chapman B.B., Bronmark C., Nilsson J.-A., Hansson L.-A. 2011. The ecology and evolution of partial migration // Oikos. V. 120. P. 1764. https://doi.org/10.1111/j.1600-0706.2011.20131.x
Day C.C., McCann N.P., Zollner P.A. et al. 2019. Temporal plasticity in habitat selection criteria explains patterns of animal dispersal // Behavioral Ecology. V. 30. № 2. P. 528. https://doi.org/10.1093/beheco/ary193
Dynesius M., Nilsson C. 1994. Fragmentation and flow regulation of river systems in the northern third of the world // Science. V. 266 P. 753. https://doi.org/10.1126/science.266.5186.753
Fahrig L. 2007. Non-optimal animal movement in human-altered landscapes // Functional Ecology. V. 21. P. 1003.
Fuiman L.A., Magurran A.E. 1994. Development of predator defences in fishes // Reviews in Fish Biology and Fisheries. V. 4. P. 145.
Hanski I. 1998. Metapopulation dynamics // Nature. V. 396. P. 41.
Kramer D.L., Rangeley R.W., Chapman L.J. 1997. Habitat selection: patterns of spatial distribution from behavioural decision // Behavioural ecology of teleost fishes. Oxford: Oxford Univ. Press. P. 37.
Lechner A., Keckeis H., Humphries P. 2016. Patterns and processes in the drift of early developmental stages of fish in rivers: a review // Rev. Fish Biol. Fish. V. 26. P. 471. https://doi.org/10.1007/s11160-016-9437-y
Lechner A., Keckeis H., Schludermann E. et al. 2013. Hydraulic forces impact larval fish drift in the free flowing section of a large European river // Ecohydrology. V. 7 № 2. P. 648. https://doi.org/10.1002/eco.1386
Lima S.L., Zollner P.A. 1996. Towards a behavioral ecology of ecological landscapes // Trends in Ecology & Evolution. V. 11. P. 131.
May R.C. 1974. Larval mortality in marine fishes and the critical period concept // The early life history of fish. New York: Springer-Verlag. P. 3.
Northcote T.G. 1984. Mechanisms of fish migration in rivers // Mechanisms of migration in fishes. New York; London: Plenum Press. P. 317.
Pavlov D.S. 1994. The downstream migration of young fishes in rivers: mechanisms and distribution // Folia Zoologica. V. 43. P. 193.
Pavlov D.S., Mikheev V.N. 2017. Downstream migration and mechanisms of dispersal of young fish in rivers // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 74. № 8. P. 1312. https://doi.org/10.1139/cjfas-2016-0298
Pelicice F.M., Pompeu P.S., Agostinho A.A. 2015. Large reservoirs as ecological barriers to downstream movements of neotropical migratory fish // Fish and Fisheries. V. 16. № 4. P. 697. https://doi.org/10.1111/faf.12089
Regulated Rivers. 1984. Oslo: Oslo University Press.
Schludermann E., Tritthart M., Humphries P. et al. 2012. Dispersal and retention of larval fish in a potential nursery habitat of a large temperate river: an experimental study // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 69. № 8. P. 1302. https://doi.org/10.1139/f2012-061
Sedell J.R., Reeves G.H., Hauer F.R et al. 1990. Role of refugia in recovery from disturbances: modern fragmented and disconnected river systems // Environ. Manage. V. 14. № 5. P. 711.
Sedell J.R., Richey J.E., Swanson F.J. 1989. The river continuum concept: A basis for the expected ecosystem behavior of very large rivers? // Can. Spec. Publ. Fish. Aquat. Sci. V. 106. P. 49.
Vannote R.L., Minshall G.W., Cummins K.W. et al. 1980. The river continuum concept // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 37. P. 130.
Wiens J.A. 2002. Riverine landscapes: taking landscape ecology into the water // Freshwater Biol. V. 47. P. 501.
Wolter C., Sukhodolov A. 2008. Random displacement versus habitat choice of fish larvae in rivers // River Research and Applications. V. 24. P. 661. https://doi.org/10.1002/Rra.1146
Zollner P.A., Lima S.L. 1999. Search strategies for landscape-level interpatch movements // Ecology. V. 80. P. 1019.
Zwick P. 1992. Stream habitat fragmentation – a threat to biodiversity // Biodiversity Conservation. V. 1. P. 80.

Cписок литературы

Артаев О.Н., Ручин А.Б. 2017. Рыбное население бассейна реки Мокши. Саранск.
Голованов В.К. 2013a. Эколого-физиологические закономерности распределения и поведения пресноводных рыб в термоградиентных условиях // Вопр. ихтиологии. T. 53. № 3. С. 286. https://doi.org/10.7868/S0042875213030016
Голованов В.К. 2013b. Температурные критерии жизнедеятельности пресноводных рыб. Москва: Изд-во ПОЛИГРАФ-ПЛЮС.
Дрягин П.А. 1973. Экологическая классификация рыб по температурному фактору // Лимнология Северо-Запада СССР. 1. А–И. Таллин: АН ЭССР. С. 167.
Зуев И.В. 2007. Гольяны рода Phoxinus (сем. Cyprinidae) бассейнов рек Енисея и Пясины: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Томск: Томск. гос. ун-т.
Коновалов А.Ф. 2016. Многолетние изменения структуры фаунистических комплексов рыб и круглоротых в водоёмах Вологодской области // Труды Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии. Т. 161. С. 115.
Лапкин В.В., Свирский А.М., Голованов В.К. 1981. Возрастная динамика избираемых и летальных температур // Зоол. ж. Т. 60. Вып. 12. С. 1792.
Лапкин В.В., Свирский А.М., Сопов Ю.Н. 1979. Избираемая температура и температура акклимации рыб // Зоол. ж. Т. 58. № 11. С. 1659.
Литвинов А.С., Законнова А.В. 2012. Термический режим Рыбинского водохранилища при глобальном потеплении // Метеорология и гидрология. № 9. С. 91.
Маврин А.С., Голованов В.К., Капшай Д.С. 2010. Поведение и распределение обыкновенного гольяна Phoxinus phoxinus L. в условиях градиента температур // Поведение рыб: Матер. докл. IV Всерос. конф. с международным участием. Москва: АКВАРОС. С. 209. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.2574.2241
Мовчан Ю.В., Смирнов А.И. 1981. Т. 8. Вып. 2. Ч. 1. Киев: Наук. думка.
Никаноров Ю.И. 1977. Влияние сбросных вод тепловых электростанций на ихтиофаyну и рыбное хозяйство водоемов-охладителей // Труды Всесoюзного гидробиологического общества. Т. 21. С. 135.
Рыбы в заповедниках России. 2010. Т. 1. Москва: Товарищество науч. изданий КМК.
Свердлова Т.В., Книжин И.Б. 2011. Биологические показатели и экологические особенности гольянов (Rhynchocypris, Phoxinus) водоемов бассейна верхнего течения реки Лена // Байкальский зоологический журнал. № 3(8). С. 42.
Свирский А.М. 1996. Поведение рыб в гетеротермальных условиях // Поведение и распределение рыб: Доклады II Всероссийского совещания. Борок. С. 140.
Свирский А.М., Лапкин В.В. 1987. Сезонная и возрастная изменчивость избираемых температур у рыб Рыбинского водохранилища: 1. Окунь (Perca fluviatilis L.) // Биология внутрeнних вод: Информ. бюл. Ленинград: Наука. № 76. C. 45.
Смирнов А.К. 2013. Влияние наличия пищи в зоне температурного оптимума на поведение молоди речного окуня Perca fluviatilis L. // Вестник Астраханского государственного технического университета. Сер. Рыбное хозяйство. № 1. С. 75.
Смирнов А.К., Голованов В.К. 2005. Сравнение термоустойчивости молоди некоторых видов рыб Рыбинского водохранилища // Вопр. ихтиологии. Т. 45. № 3. С. 430.
Смирнов А.К., Смирнова Е.С. 2019. Поведение молоди окуня Perca fluviatilis (Percidae) в гетеротермальной среде при разной обеспеченности пищей // Зоол. ж. Т. 98. № 2. С. 182. https://doi.org/10.1134/S0044513419020168
Artaev O.N., Ruchin A.B. 2017. The ichthyofauna of the Moksha River, a tributary of the Volga River basin, Russia // Check List. V. 13. № 4. P. 185. https://doi.org/10.15560/13.4.185
Barceló C., Ciannelli L., Olsen E.M. et al. 2016. Eight decades of sampling reveal a contemporary novel fish assemblage in coastal nursery habitats // Global Change Biology. V. 22. P. 1155. https://doi.org/10.1111/gcb.13047
Becker C.D., Genoway R.G. 1979. Evaluation of the critical thermal maximum for determining thermal tolerance of freshwater fish // Environ. Biol. Fish. V. 4. № 3. P. 245. https://doi.org/10.1007/BF00005481
Beitinger T.L., Bennet W.A., McCauley R.W. 2000. Temperature tolerances of North American freshwater fishes exposed to dynamic changes in temperature // Environ. Biol. Fish. V. 58. № 3. P. 237. https://doi.org/10.1023/A:100767632
Bitukov N.A., Shagarov L.M. 2017. Degradation of water protection function of the Western Caucasus mountain oakeries as a result of fellings // Nature Conservation Research. V. 2. № 3. P. 40. https://doi.org/10.24189/ncr.2017.006
Borzée A., Jang Y. 2018. Interference competition driven by hydric stress in Korean Hylids // Nature Conservation Research. V. 3 (Suppl. 1). P. 120. https://doi.org/10.24189/ncr.2018.008
Farmer G.T., Cook J. 2013. Climate Change Science: A Modern Synthesis. V. 1. New York: Springer Dordrecht Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-94-007-5757-8
Goyer K., Bertolo A., Pépino M., Magnan P. 2014. Effects of lake warming on behavioural thermoregulatory tactics in a cold-water stenothermic fish // PLoS ONE. V. 9. № 3. P. 1. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0092514
Jobling M. 1981. Temperature tolerance and the final preferendum – rapid methods for the assessment of optimum growth temperatures // J. Fish. Biol. V. 19. P. 439. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1981.tb05847.x
Kamiński R., Kamler E., Korwin-Kossakowski M. et al. (2006). Effects of different incubation temperatures on the yolk-feeding stage of Eupallasella percnurus (Pallas) // J. Fish Biol. V. 68(4). P. 1077. https://doi.org/10.1111/j.0022-1112.2006.01008.x
Killen S.S. 2014. Growth trajectory influences temperature preference in fish through an effect on metabolic rate // J. Anim. Ecol. P. 1. https://doi.org/10.1111/1365-2656.12244
Neill W.H., Magnuson J.J. 1974. Distributional ecology and behavioral thermoregulation of fishes in relation to heated effluent from a power plant at lake Monona, Wisconsin // Trans. Am. Fish. Soc. V. 103. № 4. P. 663. https://doi.org/10.1577/1548-8659(1974)103<663:DEABTO>2.0.CO;2
Scott N.L. 1987. Seasonal variation of critical thermal maximum in the redbelly dace, Phoxinus erythrogaster (Cyprinidae) // The Southwestern Naturalist. V. 32. № 4. P. 435. https://doi.org/10.2307/3671475
Ward A.J.W., Hensor E.M.A., Webster M.M., Hart P.J.B. 2010. Behavioural thermoregulation in two freshwater fish species // J. Fish Biol. V. 76. P. 2287. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2010.02576.x
Wolnicki J., Kamiński R., Korwin-Kossakowski M. et al. 2004. The influence of water temperature on laboratory-reared lake minnow Eupallasella perenurus (Pallas) larvae and juveniles // Arch. Polish Fish. V. 12. Fasc. 1. P. 61.

Cписок литературы

Abd-Al-Aal Z., Amer O.H., Badawy A.I.I., El-Ashram A.M.M. 2008. Digenetic trematodes of the little egret, Egretta garzetta, and possibility of transmission to Oreochromis niloticus at El-Abbassa Fish Farms, Egypt // Proceeding of the 8th Int. Symposium on Tilapia in Aquaculture. Egypt, Abbassa. P. 1351.
Akoll P., Konecny R., Mwanja W.W. et al. 2012. Parasite fauna of farmed Nile tilapia (Oreochromis niloticus) and African catfish (Clarias gariepinus) in Uganda // Parasitol. Res. V. 110. Issue 1. P. 315. https://doi.org/10.1007/s00436-011-2491-4
Barson M., Bray R.A., Ollevier F., Huyse T. 2008. Taxonomy and faunistics of the helminth parasites of Clarias gariepinus (Burchell, 1822), and Oreochromis mossambicus (Peters, 1852) from temporary pans and pools in the Save-Runde River Floodplain, Zimbabwe // Comparative Parasitology. V. 75. P. 228.
Britz J., Van As J.G., Saayman J.E. 2000. Occurrence and distribution of Clinostomum tilapiae Ukoli, 1966 and Euclinostomum heterostomum (Rudolphi, 1809) metacercarial infections of freshwater fish in Venda and Lebowa, southern Africa // J. Fish Biol. V. 26(1). P. 21.
Caffara M., Locke S.A., Gustinelli A. et al. 2011. Morphologicaland molecular differentiation of Clinostomum complanatum and Clinostomum marginatum (Digenea: Clinostomidae) metacecariae and adult // J. Parasitol. V. 97(5). P. 884. https://doi.org/10.1645/GE-2781.1
Caffara M., Bruni G., Paoletti C. et al. 2013. Metacercariae of Clinostomum complanatum (Trematoda: Digenea) in European newts Triturus carnifex and Lissotriton vulgaris (Caudata: Salamandridae) // J. Helminthol. V. 88. P. 278. https://doi.org/10.1017/S0022149X13000151
Caffara M., Davidovich N., Falk R. et al. 2014. Redescription of Clinostomum phalacrocoracis metacercariae (Digenea: Clinostomidae) in cichlids from Lake Kinneret, Israel // Parasite. V. 21. P. 32. https://doi.org/10.1051/parasite/2014034
Caffara M., Locke S.A., Cristanini C. et al. 2016. A combined morphometric and molecular approach to identifying metacercariae of Euclinostomum heterostomum (Digenea: Clinostomidae) // J. Parasitol. V. 102(2). P. 239. https://doi.org/10.1645/15-823
Caffara M., Locke S.A., Echi P.C. et al. 2017. A morphological and molecular study of Clinostomid metacercariae from African fish with a redescription of Clinostomum tilapiae // Parasitology. V. 144 (11). P. 1. https://doi.org/10.1017/S0031182017001068
Caffara M., Locke S.A., Halajian A. et al. 2019. Molecular data show Clinostomoides Dollfus, 1950 is a junior synonym of Clinostomum Leidy, 1856, with redescription of metacercariae of Clinostomum brieni n. comb. // Parasitology. V. 146. № 6. P. 805. https://doi.org/10.1017/S0031182018002172
Dias M.L.G. G., Eiras J.C., Machado M.H. et al. 2003. The life cycle of Clinostomum complanatum Rudolphi, 1814 (Digenea, Clinostomidae) on the floodplain of the high Parana´ river, Brazil // Parasitol. Res. V. 89 P. 506. https://doi.org/10.1007/s00436-002-0796-z
Dönges J. 1974. The life cycle of Euclinostomum heterostomum (Rugolphi, 1809) (Trtematoda: Clinostomatidae) // Int. J. Parasitol. V. 4. P. 79. https://doi.org/10.1016/0020-7519(74)90012-5
Dzikowski R., Levy M.G., Poore M.F. et al. 2004. Clinostomum complanatum and Clinostomum marginatum (Rudolphi, 1819) (Digenea: Clinostomidae) are separate species based on differences in ribosomal DNA // J. Parasitol. 90. P. 413. https://doi.org/10.1645/GE-159R
Echi P.C., Eyo J.E., Okafor F.C. et al. 2012. First record of co – infection of three clinostomatid parasites in cichlids (Osteichthyes: Cichlidae) in a tropical freshwater lake // Iran. J. Publ. Health. V. 41. № 7. P. 86.
El-Naffar M.K., Khalofa R.M. 1981. Euclinostomum ardeolae sp. nov. (Trematoda: Clinostomatidae) // Journal of the Egyptian Society of Parasitology. V. 11. № 1. P. 175.
Eshetu Y., Mulualem E. 2003. Parasites of fish at Lake Tana, Ethiopia // SINET: Аn Ethiopian Journal of Science. V. 26. P. 31.
Finkelman S. 1988. Infections of Clinostomatidea in the Sea of Galilee fish. M.Sc. Thesis. Jerusalem: Hebrew University of Jerusalem. 62 p.
Fischthal J.H., Thomas J.D. 1970. Some metacercariae of digenetic trematodes in fishes from Nungua Lake, Ghana // Anales del Instituto de Biologia Universidad Nacional Autonoma de México. Serie Zoologia. V. 1. P. 73.
Gustinelli A., Caffara M., Florio D. et al. 2010. First description of the adult stage of Clinostomum cutaneum Paperna, 1964 (Digenea: Clinostomidae) from grey herons Ardea cinerea L. and a redescription of the metacercaria from the Nile tilapia Oreochromis niloticus niloticus (L.) in Kenya // Systematic Parasitology. V. 76. P. 39. https://doi.org/10.1007/s11230-010-9231-5
Jansen van Rensburg C., van As J.G., King P.H. 2013. New records of digenean parasites of Clarias gariepinus (Pisces: Clariidae) from the Okavango Delta, Botswana, with description of Thaparotrema botswanensis sp. n. (Plathelminthes: Trematoda) // African Invertebrates. V. 54. P. 431. http://zoobank.org/References/CE0A3037-9617-4389-A447-1E92117966FA
Jhansilakshmibai K., Madhavi R. 1997. Euclinostomum heterostomum (Rudolphi, 1809) (Trematoda): life-cycle, growth and development of the metacercaria and adult // Systematic Parasitology. V. 38. P. 51. https://doi.org/10.1023/A:1005829625739
Kabunda M.Y., Sommerville C. 1984. Parasitic worm causing the rejection of tilapia (Oreochromis species) in Zaire // British Veterinary Journal. V. 140. P. 263.
Kamo H., Ogino K., Hatsushika R. 1962. A unique infection of man with Clinostomum sp., a small trematode causing acute laryngitis // Yonago Acta Med. V. 6 (2). P. 37.
Kanev I., Radev V., Fried B. 2002. Family Clinostomidae Lühe, 1901 // Keys to the Trematoda. V. 1. Wallingford: CABI Publishing and the Natural History Museum. P. 113. https://doi.org/10.1079/9780851995472.0113
Khalil L.F. 1969. Studies on the helminth parasites of freshwater fishes of the Sudan // J. Zool. V. 158. P. 143.
Manter H.W., Pritchard M.H. 1969. Some digenetic trematodes of Central Africa chiefly from fishes // Revue de Zoologie et de Botanique Africaines. V. 80. P. 51.
Mashego S.N., Saayman J.E. 1989. Digenetic trematodes and cestodes of Clarias gariepinus (Burchell, 1822) in Lebowa, South Africa, with taxonomic notes // South African Journal of Wildlife Research. V. 19. № 1. P. 17.
Morenikeji O.A., Adepeju A.I. 2009. Helminth communities in Cichlids in natural and man-made ponds in south-west Nigeria. https://sciencepub.net/researcher/0103/13_0727_helminth_research0103.pdf
Oliver P.A.S., Luus-Powell W.J., Saayman J.E. 2009. Report on some monogenean and clinostomid infestations of freshwater fish and waterbird hosts in Middle Letaba Dam, Limpopo Province, South Africa // Onderstepoort J. Vet. Res. V. 76. P. 187.
Olurin K.B., Somorin C.A. 2006. Intestinal helminths of the fishes of Owa Stream, south-west Nigeria // Research Journal of Fisheries and Hydrobiology. V. 1(1). P. 6.
Petkevičiūtė R., Stunžėnas V., Zhokhov A.E. et al. 2018. Diversity and phylogenetic relationships of European species of Crepidostomum Braun, 1900 (Trematoda: Allocreadiidae) based on rDNA, with special reference to Crepidostomum oschmarini Zhokhov et Pugacheva, 1998 // Parasites & Vectors. V. 11. P. 530. https://doi.org/10.1186/s13071-018-3095-y
Prudhoe S. 1957. Trematoda // Exploration du Parc National de l'Upemba. Mission G. F. de Witte (1946–1949). Bruxelles: Institute Parc National Congo Belge. V. 48. P. 1.
Prudhoe S., Hussey C.G. 1977. Some parasitic worms in freshwater fishes and fish-predators from the Transvaal, South Africa // Zoologica Africana. V. 12 (1). P. 113.
Scholz T., Vanhove M.P.M., Smit N. et al. 2018. A guide to the parasites of African Freshwater Fishes // Abc-Taxa. V. 18. P. 425.
Sereno-Uribe A.L., Pinacho-Pinacho C.D., Garcıґa-Varela M. et al. 2013. Using mitochondrial and ribosomal DNA sequences to test the taxonomic validity of Clinostomum complanatum Rudolphi, 1814 in fish-eating birds and freshwater fishes in Mexico, with the description of a new species // Parasitol. Res. V. 112. P. 2855. https://doi.org/10.1007/s00436-013-3457-5
Taher G.A. 2009. Some studies on metacercarial infection in Oreochromis niloticus in Assuit Governorate and their role in transmission of some trematodes to dogs // Ass. Univ. Bull. Environ. Res. V. 12(1). P. 63.
Ukoli F.M.A. 1966a. On Clinostomum tilapiae n. sp., and C. phalacrocoracis Dubois, 1930 from Ghana, and a discussion of the systematic of the genus Clinostomum Leidy, 1856 // J. Helminthol. V. 40(1/2). P. 187.
Ukoli F.M.A. 1966b. On the life history, growth and development from the metacercarial stages to adulthood, of Clinostomum tilapiae Ukoli, 1966 // J. Helminthol. V. 40(1/2). P. 215.
Vijverberg K., Ferdinand A.S., Eshete D. 2009. Lake Tana: Source of the Blue Nile // The Nile: Origin, Environments, Limnology and Human Use. V. 89. № 3. P. 163.
Yekutiel D. 1985. Metacercaria infections of cichlid fry in Lake Kinneret. M. Sc. Thesis. Jerusalem: Hebrew University of Jerusalem.

Cписок литературы

Голованова И.Л., Аминов А.И. 2017. Влияние гербицида Раундап на активность гликозидаз в кишечнике рыб разных экологических групп // Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы. Ярославль: Филигрань. С. 9.
Голованова И.Л., Аминов А.И. 2011. Влияние гербицида Раундап на активность гликозидаз рыб и их кормовых объектов // Антропогенное влияние на водные организмы и экосистемы: Материалы IV Всероссийской конференции по водной экотоксикологии. Борок. Ч. 1. С. 95.
Голованова И.Л., Аминов А.И., Капшай Д.С., Голованов В.К. 2013. Физиолого-биохимические и температурные характеристики сеголетков ротана при хроническом действии Раундапа // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. № 3. С. 98.
Жиденко А.А., Бибчук Е.В., Мехед О.Б., Кривопиша В.В. 2009. Влияние гербицидов различной химической структуры на углеводный обмен в организме карпа // Гидробиол. ж. Т. 45. № 5. С. 70.
Перечень рыбохозяйственных нормативов, предельно допустимых концентраций (ПДК) и ориентировочно безопасных уровней воздействия (ОБУВ) вредных веществ для воды водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение. 1999. Москва: Изд-во ВНИРО.
Уголев A.M., Кузьмина В.В. 1993. Пищеварительные процессы и адаптации у рыб. Санкт-Петербург: Гидрометеоиздат.
Уголев А.М., Иезуитова Н.Н., Масевич Ц.Г. и др. 1969. Исследование пищеварительного аппарата у человека. Обзор современных методов. Ленинград: Наука.
Annet R., Habibi H.R., Hontela A. 2014. Impact of glyphosate and glyphosate-based herbicide on freshwater environment // J. Appl. Toxicol. V. 34. № 5. P. 458.
Aparicio V.C., De Geronimo E., Marino D. et al. 2013. Environmental fate of glyphosate and aminomethylphosphonic acid in surface waters and soil of agricultural basins // Chemosphere. V. 93. № 9. P. 1866.
Benbrook C.M. 2016. Trends in glyphosate herbicide use in the United States and globally // Environ. Sci. Eur. V. 28. № 3. P. 1.
De Moura F.R., Brentegani K.R., Gemelli A. et al. 2017. Oxidative stress in the hybrid fish jundiara (Leiarius marmoratus x Pseudoplatystoma reticulatum) exposed to Roundup Original® // Chemosphere. V. 185. P. 445.
Filho J.D.S., Sousa C.C.N., Da Silva C.C. et al. 2013. Mutagenicity and genotoxicity in gill erythrocyte cells of Poecilia reticulata exposed to a glyphosate formulation // Bull. Environ. Contam. Toxicol. V. 91. № 5. P. 583.
Gholami-Seyedkolaei S.J., Mirvaghefi A., Farahmand H., Asghar Kosari A. 2013. Optimization of recovery patterns in common carp exposed to roundup using response surface methodology: Evaluation of neurotoxicity and genotoxicity effects and biochemical parameters // Ecotoxicol. Environ. Saf. V. 98. P. 152.
Giesy J.P., Dobson S., Solomon K.R. 2000. Ecotoxicological risk assessment for Roundup herbicide // Rev. Environ. Contam. Toxicol. V. 167. P. 35.
Gill J.P.K., Sethi N., Mohan A. et al. 2018. Glyphosate toxicity for animals // Environ. Chem. Lett. V. 16. № 2. P. 401.
Kier L.D., Kirkland D.J. 2013. Review of genotoxicity studies of glyphosate and glyphosate-based formulations // Crit. Rev. Toxicol. V. 43. № 4. P. 283.
Kuz’mina V.V., Tarleva A.F., Sheptitskii V.A. 2017. Influence of Roundup Herbicide on the Activities of Peptidases in the Intestines of Various Fish Species // J. Ichthyology. V. 57. № 5. P. 761.
Le Mer C., Roy R.L., Pellerin J. et al. 2013. Effects of chronic exposures to the herbicides altrazine and glyphosate to larvae of the threespine stickleback (Gasterosteus aculeatus) // Ecotoxicol. Environ. Saf. V. 89. P. 174.
Nwani C.D., Nagpure N.S., Kumar R. et al. 2013. DNA damage and oxidative stress modulatory effects of glyphosate-based herbicide in freshwater fish, Channa punctatus // Environ. Toxicol. Pharmacol. V. 36. № 2. P. 539.
Rossi C.R., da Silva M.D., Piancini L.D.S. et al. 2011. Sublethal effects of waterborne herbicides in tropical freshwater fish // Bull. Environ. Contam. Toxicol. V. 87. № 6. P. 603.
Salbego J., Pretto A., da Silva V.M.M. et al. 2014. Glifosato sobre a atividade de enzimas digestivas em piavas (Leporinus obtusidens) // Ciência Rural, Santa Maria. V. 44. № 9. P. 1603.
Sánchez J.A.A., Varela Junior A.S., Corcini C.D. 2017. Effects of Roundup formulations on biochemical biomarkers and male sperm quality of the livebearing Jenynsia multidentata // Chemosphere. V. 177. P. 200.
Sanden M., Johannessen L.E., Berdal K.G. et al. 2011. Uptake and clearance of dietary DNA in the intestine of Atlantic salmon (Salmo salar L.) fed conventional or genetically modified soybeans // Aquatic Nutrition. V. 17. № 3. P. 750.
Sinhorin V.D.G., Sinhorin A.P., Teixeira J.M.S. et al. 2014. Metabolic and behavior changes in surubim acutely exposed to a glyphosate-based herbicide // Arch. Environ. Contam. Toxicol. V. 67. № 4. P. 659.
Solovyev M., Gisbert E. 2016. Influence of time, storage temperature and freeze/thaw cycles on the activity of digestive enzymes from gilthead sea bream (Sparus aurata) // Fish Physiol. Biochem. V. 42. № 5. P. 1383.
Struger J., Thompson D., Staznik B. et al. 2008. Occurrence of glyphosate in surface waters of Southern Ontario // Bull. Environ. Contam. Toxicol. V. 80. № 4. P. 378.
Sviridov A.V., Shushkova T.V., Ermakova I.T. et al. 2015. Microbial degradation of glyphosate herbicides (review) // Appl. Biochem. Microbiol. V. 51. № 2. P. 188.
Tsui M.T.K., Chu L.M. 2003. Aquatic toxicity of glyphosate-based formulations: comparison between different organisms and the effects of environmental factors // Chemosphere. V. 52. № 7. P. 1189.
Tsui M.T.K., Chu L.M. 2008. Environmental fate and non-target impact of glyphosate-based herbicide (Roundup) in a subtropical wetland // Chemosphere. V. 71. № 3. P. 439.
USEPA (U.S. Environmental Protection Agency) edition of the drinking water Standards and Health Advisories. 2003. 12 p.
Webster T.M.U., Laing L.V., Florance H. et al. 2014. Effects of glyphosate and its formulation, Roundup, on reproduction in Zebrafish (Danio rerio) // Environ. Sci. Technol. V. 48. P. 1271.

Cписок литературы

Куровская Л.Я., Стрилько Г.А. 2016. Влияние рН водной среды на уровень заражения эктопаразитами, содержание белка и лизоцима у некоторых видов карповых рыб (Cyprinidae) // Ribogospodars'ka nauka Ukraïni. Т. 1. № 35. С. 88. https://doi.org/10.15407/fsu2016.01.088
Abasali H., Mohamad S. 2010. Immune response of common carp (Cyprinus carpio) fed with herbal immunostimulants diets // Agric. J. V. 5. № 3. P. 163. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2007.01660.x
Alexander C., Sahu N.P., Pal A.K. et al. 2011. Haemato-immunological and stress responses of Labeo rohita (Hamilton) fingerlings: effect of rearing temperature and dietary gelatinized carbohydrate // Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. V. 95. № 5. P. 653. https://doi.org/10.1111/j.1439-0396.2010.01096.x
Ardo L., Jeney Z., Adams A. et al. 2010. Immune responses of resistant and sensitive common carp families following experimental challenge with Aeromonas hydrophila // Fish Shellfish Immunol. V. 29. № 1. P. 111. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2010.02.029
Baruah A., Saha R.K, Kamilya D. 2012. Inter-species transmission of the epizootic ulcerative syndrome (EUS) pathogen, Aphanomyces invadans, and associated physiological responses // Bamidgeh. V. 64. P. 9
Behera T., Swain P. 2012. Antigen adsorbed surface modified poly-ε-caprolactone microspheres stimulates both adaptive and innate immune response in fish // Vaccine. V. 30. № 35. P. 5278. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2012.05.028
Behera T., Swain P. 2013. Alginate–chitosan–PLGA composite microspheres induce both innate and adaptive immune response through parenteral immunization in fish // Fish Shellfish Immunol. V. 35. № 3. P. 785. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2013.06.012
Behera T., Swain P. 2014. Antigen encapsulated alginate-coated chitosan microspheres stimulate both innate and adaptive immune responses in fish through oral immunization // Aquacult. Int. V. 22. № 2. P. 673. https://doi.org/10.1007/s10499-013-9696-8
Betoulle S., Etienne J.C., Vernet G. 2002. Acute Immunotoxicity of Gallium to Carp (Cyprinus carpio L.) // Bull. Environ. Contam. Toxicol. V. 68. № 6. P. 817. https://doi.org/10.1007/s00128-002-0028-3
Bols N.C., Brubacher J.L., Ganassin R.C. et al. 2001. Ecotoxicology and innate immunity in fish // Dev. Comp. Immunol. V. 25. № 8–9. P. 853. https://doi.org/10.1016/s0145-305x(01)00040-4
Chen Y., Zhu X., Yang Y. et al. 2014. Effect of dietary lysozyme on growth, immune response, intestine microbiota, intestine morphology and resistance to Aeromonas hydrophilia in gibel carp (Carassius auratus gibelio) // Aquacult. Nutr. V. 20. № 3. Р. 229. https://doi.org/10.1111/anu.12069
Das B.K., Pradhan J., Sahu S. 2009. The effect of Euglena viridis on immune response of rohu, Labeo rohita (Ham.) // Fish Shellfish Immunol. V. 26. № 6. P. 871. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2009.03.016
Das B.K., Pradhan J., Sahu S. et al. 2013. Microcystis aeruginosa (Kütz) incorporated diets increase immunity and survival of Indian major carp Labeo rohita (Ham.) against Aeromonas hydrophila infection // Aquacult. Res. V. 44. № 6. P. 918. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2012.03098.x
Das R., Raman R.P., Saha H. et al. 2015. Effect of Ocimum sanctum Linn. (Tulsi) extract on the immunity and survival of Labeo rohita (Hamilton) infected with Aeromonas hydrophila // Aquacult. Res. V. 46. № 5. Р. 1111. https://doi.org/10.1111/are.12264
Dash S., Das S.K., Samal J. et al. 2011. Dose dependence specific and non-specific immune responses of Indian major carp (L. rohita Ham) to intraperitoneal injection of formalin killed Aeromonas hydrophila whole cell vaccine // Vet. Res. Commun. V. 35. № 8. P. 541. https://doi.org/10.1007/s11259-011-9498-2
Dautremepuits C., Betoulle S., Paris-Palacios S. et al. 2004. Humoral immune factors modulated by copper and chitosan in healthy or parasitised carp (Cyprinus carpio L.) by Ptychobothrium sp. (Cestoda) // Aquat. Toxicol. V 68. № 4. P. 325. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2004.04.003
Devi T.B., Kamilya D., Abraham T.J. 2012. Dynamic changes in immune-effector activities of Indian major carp, catla (Catla catla) infected with Edwardsiella tarda // Aquaculture. V. 366–367. № 5. P. 62. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2012.09.002
Fatima M., Mandiki S.N.M., Douxfils J. et al. 2007. Combined effects of herbicides on biomarkers reflecting immune-endocrine interactions in goldfish. Immune and antioxidant effects // Aquat. Toxicol. V. 81. № 2. P. 159. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2006.11.013
Fawole F.J., Sahu N.P., Pal A.K. et al. 2016. Haemato-immunological response of Labeo rohita (Hamilton) fingerlings fed leaf extracts and challenged by Aeromonas hydrophila // Aquacult. Res. V. 47. № 12. P. 3788. https://doi.org/10.1111/are.12829
Harikrishnan R., Balasundaram C., Kim M.-C. et al. 2009. Innate immune response and disease resistance in Carassius auratus by triherbal solvent extracts // Fish Shellfish Immunol. V. 27. № 3. Р. 508. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2009.07.004
Harikrishnan R., Balasundaram C., Dharaneedharan S. et al. 2009. Effect of plant active compounds on immune response and disease resistance in Cirrhina mrigala infected with fungal fish pathogen, Aphanomyces invadans // Aquacult. Res. V. 40. № 10. P. 1170. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2009.02213.x
Harikrishnan R., Balasundaram C., Heo M.-S. 2010. Herbal supplementation diets on hematology and innate immunity in goldfish against Aeromonas hydrophila// Fish Shellfish Immunol. V. 28. № 2. Р. 354. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2009.11.013
Jiang X., Zhang C., Zhao Y. et al. 2016. Immune effects of the vaccine of live attenuated Aeromonas hydrophila screened by rifampicin on common carp (Cyprinus carpio L) // Vaccine. V. 34. № 27. P. 3087. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2016.04.075
Jin Y., Tian L., Zeng S. et al. 2013. Dietary lipid requirement on non-specific immune responses in juvenile grass carp (Ctenopharyngodon idella) // Fish Shellfish Immunol. V. 34. № 5. P. 1202. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2013.01.008
Kar B., Mohanty J., Hemaprasanth K.P. et al. 2015. The immune response in rohu, Labeo rohita (Actinopterygii: Cyprinidae) to Argulus siamensis (Branchiura: Argulidae) infection: kinetics of immune gene expression and innate immune response // Aquacult. Res. V. 46. № 6. P. 1292. https://doi.org/10.1111/are.12279
Kozinska A., Guz L. 2004. The effect of various Aeromonas bestiarum vaccines on non-specific immune parameters and protection of carp (Cyprinus carpio L.) // Fish Shellfish Immunol. V. 16. № 3. P. 437. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2003.08.003
Kumar V., Sahu N.P., Pal A.K. et al. 2007. Immunomodulation of Labeo rohita juveniles due to dietary gelatinized and non-gelatinized starch // Fish Shellfish Immunol. V. 23. № 2. P. 341. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2006.11.008
Kumar R., Mukherjee S.C., Ranjan R. et al. 2015. Effect of dietary supplementation of Bacillus subtilis on haematological and immunological parameters of Catla catla (Hamilton) // Aquacult. Int. V. 23. № 5. P. 1275.
Liu J., Lei Y., Wang F. et al. 2011. Immunostimulatory activities of specific bacterial secondary metabolite of Anoxybacillus flavithermus strain SX-4 on carp, Cyprinus carpio // J. Appl. Microbiol. V. 110. № 4. P. 1056. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.2011.04963.x
Liu B., Ge X., Xie J. et al. 2012. Effects of anthraquinone extract from Rheum officinale Bail on the physiological responses and HSP70 gene expression of Megalobrama amblycephala under Aeromonas hydrophila infection // Fish Shellfish Immunol. V. 32. № 1. P. 1. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2011.02.015
Maqsood S., Samoon M.H., Singh P. 2009. Immunomodulatory and growth promoting effect of dietary levamisole in Cyprinus carpio fingerlings against the challenge of Aeromonas hydrophila // Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. V. 9. № 1. Р. 111.
Misra C.K., Das B. K., Mukherjee S.C. et al. 2006. Effect of multiple injections of β-glucan on non-specific immune response and disease resistance in Labeo rohita fingerlings // Fish Shellfish Immunol. V. 20. № 3. P. 305. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2005.05.007
Misra S., Sahu N.P., Pal A.K. et al. 2006. Pre- and post-challenge immuno-haematological changes in Labeo rohita juveniles fed gelatinised or non-gelatinised carbohydrate with n-3 PUFA // Fish Shellfish Immunol. V. 21. № 4. P. 346. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2005.12.010
Mohammadian T., Alishahi M., Tabandeh M.R. et al. 2016. Probiotic effects of Lactobacillus plantarum and L. delbrueckii ssp. bulguricus on some immune-related parameters in Barbus grypus // Aquacult. Int. V. 24. № 1. P. 225. https://doi.org/10.1007/s10499-015-9921-8
Mohanty B.R., Sahoo P.K., Mahapatra K.D. et al. 2007. Innate immune responses in families of Indian major carp, Labeo rohita, differing in their resistance to Edwardsiella tarda infection // Curr. Sci. India. V. 92. № 9. P. 1270. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2004.06.008
Mohanty B.R., Sahoo P.K. 2010. Immune responses and expression profiles of some immune-related genes in Indian major carp, Labeo rohita to Edwardsiella tarda infection // Fish Shellfish Immunol. V. 28. № 4. Р. 613. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2009.12.025
Nayak A.K., Das B.K., Kohli M.P.S. et al. 2004. The immunosuppressive effect of α-permethrin on Indian major carp, rohu (Labeo rohita Ham.) // Fish Shellfish Immunol. V. 16. № 1. P. 41. https://doi.org/10.1016/S1050-4648(03)00029-9
Nayak S.K., Swain P., Nanda P.K. et al. 2008. Effect of endotoxin on the immunity of Indian major carp, Labeo rohita // Fish Shellfish Immunol. V. 24. № 4. P. 394. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2007.09.005
Qi X-Z., Li D-L., Tu X. et al. 2016. Preliminary study on the relationship between dexamethasone and pathogen susceptibility on crucian carp (Carassius auratus) // Fish Shellfish Immunol. V. 48. P. 79. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2016.10.017.
Raa J. 1996.The use of immunostimulatory substances in fish and shellfish farming // Rev. Fish. Sci. V. 4. № 3. Р. 229. https://doi.org/10.1080/10641269609388587
Sahoo P.K., Mahapatra K.D., Saha J.N. et al. 2008. Family association between immune parameters and resistance to Aeromonas hydrophila infection in the Indian major carp, Labeo rohita // Fish Shellfish Immunol. V. 25. № 1–2. P. 163. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2008.04.003
Sahu S., Das B.K., Mishra B.K. et al. 2007. Effect of Allium sativum on the immunity and survival of Labeo rohita infected with Aeromonas hydrophila // J. Appl. Ichthyol. V. 23. № 1. P. 80. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2006.00785.x
Sahu S., Das B.K., Mishra B.K. et al. 2008. Effect of dietary Curcuma longa on enzymatic and immunological profiles of rohu, Labeo rohita (Ham.), infected with Aeromonas hydrophila // Aquacult. Res. V. 39. № 16. P. 1720–1730. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2008.02048.x
Saikia D., Kamilya D. 2012. Immune responses and protection in catla (Catla catla) vaccinated against epizootic ulcerative syndrome // Fish Shellfish Immunol. V. 32. № 2. Р. 353. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2011.11.030
Saurabh S., Sahoo P.K. 2008. Lysozyme: an important defence molecule of fish innate immune system // Aquacult. Res. V. 39. № 3. P. 223. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2007.01883.x
Saurabh S., Sahoo P.K., Mohanty B.R. et al. 2010. Modulation of the innate immune response of rohu Labeo rohita (Hamilton) by experimental freshwater lice Argulus siamensis (Wilson) infection // Aquacult. Res. V. 41. № 9. P. 326. https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2010.02538.x
Sen S.S., Giri S.S., Sukumaran V. 2014. Immune responses and protection in rohu vaccinated against Aeromonas hydrophila infection // Aquacult. Int. V. 22. № 5. P. 1637. https://doi.org/10.1007/s10499-014-9770-x
Shariff M., Jayawandena P.A.H.L., Yusoff F.M. et al. 2001. Immunological parameters of Javanese carp Puntius gonionotus (Bleeker) exposed to copper and challenged with Aeromonas hydrophila // Fish Shellfish Immunol. V. 11. № 4. P. 281. https://doi.org/10.1006/fsim.2000.0309
Sharma A., Deo A.D., Riteshkumar S.T. et al. 2010. Effect of Withania somnifera (L. Dunal) root as a feed additive on immunological parameters and disease resistance to Aeromonas hydrophila in Labeo rohita (Hamilton) fingerlings // Fish Shellfish Immunol. V. 29. № 3. P. 508. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2010.05.005
Siwicki A., Studnicka M. 1987. The phagocytic ability of neutrophils and serum lysozyme activity in experimentally infected carp, Cyprinus carpio L. // J. Fish Biol. V. 31. (Suppl. A). P. 57. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.1987.tb05293.x
Siwicki A.K., Cossarini-Dunier M., Studnicka M. et al. 1990. In vivo Effect of the Organophosphorus Insecticide Trichlorphon on Immune Response of Carp (Cyprinus carpio). II. Effect of High Doses of Trichlorphon on Nonspecific Immune Response // Ecotoxicol. Environ. Saf. V. 19. № 1. P. 99. https://doi.org/10.1016/0147-6513(90)90084-I
Skouras A., Lang T., Vobach M. et al. 2003. Assessment of some innate immune responses in dab (Limanda limanda L.) from the North Sea as part of an integrated biological effects monitoring // Helgoland Marine Reseach. V. 57. № 3. P. 181. https://doi.org/10.1007/s10152-003-0143-5
Sun J., Wang Q., Qiao Z. et al. 2011. Effect of Lipopolysaccharide (LPS) and Outer Membrane Protein (OMP) Vaccines on Protection of Grass Carp (Ctenopharyngodon idella) against Aeromonas hydrophila // Bamidgeh. V. 63. P. 8
Swain P., Nayak S.K., Nanda P.K. et al. 2008. Biological effects of bacterial lipopolysaccharide (endotoxin) in fish: A review // Fish Shellfish Immunol. V. 25. № 3. P. 191. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2008.04.009
Tassakka A.C.M.A.R., Sakai M. 2002. CpG oligodeoxynucleotides enhance the non-specific immune responses on carp, Cyprinus carpio // Aquaculture. V. 209. № 1–4. P. 1. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00764-5
Thilagam H., Gopalakrishnan S., Bo J. et al. 2009. Effect of 17 β-estradiol on the immunocompetence of Japanese sea bass (Lateolabrax japonicus) // Environ. Toxicol. Chem. V. 28. № 8. Р. 1722. https://doi.org/10.1897/08-642.1
Tort L., Balasch J.C., Mackenzie S. 2003. Fish immune system. A crossroads between innate and adaptive responses // Immunologia. V. 22. № 3. P. 277.
Vainikka A., Jokinen E.I., Kortet R. et al. 2005. Effects of testosterone and β-glucan on immune functions in tench // J. Fish. Biol. V. 66. № 2. P. 348. https://doi.org/10.1111/j.0022-1112.2005.00598.x
Wang W.B., Li A.H., Cai T.Z. et al. 2005. Effects of intraperitoneal injection of cortisol on non-specific immune functions of Ctenopharyngodon idella // J. Fish. Biol. V. 67. № 3. P. 779. https://doi.org/10.1111/j.0022-1112.2005.00779.x
Wang G.-X., Liu Y.-T., Li F.-Y. et al. 2010. Immunostimulatory activities of Bacillus simplex DR-834 to carp (Cyprinus carpio) // Fish Shellfish Immunol. V. 29. № 3. P. 378. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2010.03.014
Wang G.-X., Wang Y., Wu Z.-F. et al. 2011a. Immunomodulatory effects of secondary metabolites from thermophilic Anoxybacillus kamchatkensis XA-1 on carp, Cyprinus carpio // Fish Shellfish Immunol. V. 30. № 6. P. 1331. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2011.03.011
Wang G.-X., Li F.-Y., Cui J. et al. 2011b. Immunostimulatory activities of a decapeptide derived from Alcaligenes faecalis FY-3 to Crucian carp // Scand. J. Immunol. V. 74. № 1. P. 14. https://doi.org/10.1111/j.1365-3083.2011.02533.x
Wang N., Yang Z., Zang M. et al. 2013. Identification of Omp38 by immunoproteomic analysis and evaluation as a potential vaccine antigen against Aeromonas hydrophila in Chinese breams // Fish Shellfish Immunol. V. 34. № 1. P. 74. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2012.10.003
Watanuki H., Chakraborty G., Korenaga H. et al. 2009. Immunostimulatory effects of natural human interferon-alpha (huIFN-α) on carps Cyprinus carpio L // Vet. Immunol. Immunop. V. 131. № 3–4. P. 273. https://doi.org/10.1016/j.vetimm.2009.04.005
Wu Z.X., Pang S.F., Liu J.J. et al. 2013. Coriolus versicolor polysaccharides enhance the immune response of crucian carp (Carassius auratus gibelio) and protect against Aeromonas hydrophila // J. Appl. Ichthyol. V. 29. № 3. P. 562. https://doi.org/10.1111/jai.12105
Yang X., Guo J.L., Ye J.Y. et al. 2015. The effects of Ficus carica polysaccharide on immune response and expression of some immune-related genes in grass carp, Ctenopharyngodon idella // Fish Shellfish Immunol. V. 42. № 1. P. 132. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2014.10.037
Yin G., Ardo L., Thompson K.D. et al. 2009. Chinese herbs (Astragalus radix and Ganoderma lucidum) enhance immune response of carp, Cyprinus carpio, and protection against Aeromonas hydrophila // Fish Shellfish Immunol. V. 26. № 1. P. 140. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2008.08.015
Zhang L., Ma J., Fan Y. et al. 2016. Immune response and protection in gibel carp, Carassius gibelio, after vaccination with β-propiolactone inactivated cyprinid herpesvirus 2 // Fish Shellfish Immunol. V. 49. P. 344. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2016.01.003

Cписок литературы

Баканов А.И. 1993. О появлении пиявки Archaeobdella esmonti (Arhynchobdella, Herpobdellidae) в волжских водохранилищах // Зоол. ж. Т. 72. Вып. 6. С. 135.
Баканов А.И. 2005. Бентос Чебоксарского водохранилища: таксономический состав и обилие // Биология внутренних вод. № 1. С. 69.
Гримм О.А. 1876. Труды Арало-Каспийской экспедиции. Вып. 2. Тетр. 1. Санкт-Петербург. 168 с.
Зинченко Т.Д., Головатюк Л.В., Загорская Е.П., Антонов П.И. 2008. Распределение инвазионных видов в составе донных сообществ Куйбышевского водохранилища: анализ многолетних исследований // Известия Самарского научного центра РАН. Т. 10. № 2. С. 547.
Литвинов А.С., Законнова А.В. 2014. Экологические условия в Рыбинском водохранилище при потеплении климата // Географический вестник. Физическая география и геоморфология. № 2(29). С. 41.
Лукин Е.И. 1976. Фауна СССР. Т. 1. Ленинград: Наука.
Мельникова А.В. 2018. Биологическое разнообразие донных беспозвоночных Нижнекамского водохранилища по данным 2017 г. // Современные проблемы и перспективы развития рыбохозяйственного комплекса: Матер. VI науч.-практ. конф. молодых учёных с международным участием. Москва: Изд-во ВНИРО. С. 174.
Методика изучения биогеоценозов внутренних водоемов. 1975. Москва: Наука.
Мордухай-Болтовской Ф.Д. 1960. Каспийская фауна в Азово-Черноморском бассейне. Москва: Изд-во АН СССР.
Мордухай-Болтовской Ф.Д., Дзюбан Н.А. 1976. Изменения в составе и распределении фауны Волги в результате антропогенных воздействий // Биологические продукционные процессы в бассейне Волги. Ленинград: Наука. С. 67.
Сигарева Л.Е., Пырина И.Л., Тимофеева Н.А. 2016. Межгодовая динамика хлорофилла в планктоне и донных отложениях Рыбинского водохранилища // Тр. Ин-та биологии внутр. вод РАН. № 76(79). С. 119.
Скальская И.А. 2010. О базе данных “Freshwater Invasion” // Экология и морфология беспозвоночных континентальных вод. Махачкала: Изд-во “Наука ДНЦ”. С. 467.
Цельмович О.Л., Отюкова Н.Г. 2018. Содержание железа и главных компонентов солевого состава в воде волжских водохранилищ в период открытой воды 2015 г. // Тр. Ин-та биологии внутренних вод РАН. № 81(84). С. 7.
Perova S.N., Pryanichnikova E.G., Zhgareva N.N. 2019. Appearance and Distribution of New Alien Macrozoobenthos Species in the Upper Volga Reservoirs // Rus. J. Biol. Invasions. V. 10 № 1. P. 30. https://doi.org/10.1134/S2075111719010119
Tokinova R.P. 2017. New Data on the Distribution of the Invader Leech Species Archaeobdella esmonti (Clitellata: Hirudinida) in the Kuybyshev Reservoir // Rus. J. Biol. Invasions. V. 8. № 4. P. 370. https://doi.org/10.1134/S2075111717040129

Cписок литературы

Daugbjerg N., Andreasen T., Happel E. et al. 2014. Studies on woloszynskioid dinoflagellates VII. Description of Borghiella andersenii sp. nov.: light and electron microscopy and phylogeny based on LSU rDNA // Eur. J. Phycol. V. 49. № 4. P. 436. https://doi.org/10.1080/09670262.2014.969781
Flaim G., Rott E, Frassanito R et al. 2010. Eco-fingerprinting of the dinoflagellate Borghiella dodgei: experimental evidence of a specific environmental niche // Hydrobiologia. V. 639. № 1. P. 85. https://doi.org/10.1007/s10750-009-0013-5
Fritz L., Triemer R.E. 1985. A rapid simple technique utilizing Calcofluor White M2R for the visualization of Dinoflagellate thecal plates // J. Phycol. V. 21. Р. 662. https://doi.org/10.1111/j.0022-3646.1985.00662.x
Hansen G., Daugbjerg N., Henriksen P. 2007. Baldinia anauniensis gen. et sp. nov.: a ‘new’ dinoflagellate from Lake Tovel, N. Italy // Phycologia. V. 46. № 1. P. 86. https://doi.org/10.2216/PH06-23.1
Hansen G., Flaim G. 2007. Dinoflagellates of the Trentino Province, Italy // J. Limnol. V. 66. № 2. P. 107. https://doi.org/10.4081/jlimnol.2007.107
Moestrup Ø., Calado A.J. 2018. Dinophyceae. Süßwasserflora von Mitteleuropa. Bd. 6. Berlin: Springer Spektrum. https://doi.org/10.1007/978-3-662-56269-7_7
Moestrup Ø., Hansen G., Daugbjerg N. 2008. Studies on woloszynskioid dinoflagellates III: on the ultrastructure and phylogeny of Borghiella dodgei gen. et sp. nov., a cold-water species from Lake Tovel, N. Italy, and on B. tenuissima comb. nov. (syn. Woloszynskia tenuissima) // Phycologia. V. 47. № 1. P. 54.
Pandeirada M.S., Craveiro S.C., Calado A.J. 2013. Freshwater dinoflagellates in Portugal (W Iberia): a critical checklist and new observations // Nova Hedwigia. V. 97. № 3–4. P. 321. https://doi.org/10.1127/0029-5035/2013/0119

Cписок литературы

Волга и ее жизнь. 1978. Ленинград: Наука.
Второй оценочный доклад Росгидромета об изменениях климата и их последствиях на территории Российской Федерации. Общее резюме. 2014. Москва: Росгидромет.
Доклад об особенностях климата на территории Российской Федерации за 2017 год. 2018. Москва: Росгидромет.
Доклад об особенностях климата на территории Российской Федерации за 2018 год. 2019. Москва: Росгидромет.
Корнева Л.Г. 2015. Фитопланктон водохранилищ бассейна Волги. Кострома: Костромской печатный дом.
Минеева Н.М. 2004. Растительные пигменты в воде волжских водохранилищ. Москва: Наука.
Охапкин А.Г., Шарагина Е.М., Бондарев О.О. 2013. Фитопланктон Чебоксарского водохранилища на современном этапе его существования // Поволжский экологический журнал. № 2. С. 190.
Пырина И.Л. 1966. Первичная продукция фитопланктона в Иваньковском, Рыбинском и Куйбышевском водохранилищах в зависимости от некоторых факторов // Продуцирование и круговорот органического вещества во внутренних водоемах. Москва: Наука. С. 249.
Пырина И.Л. 2000. Многолетняя динамика и цикличность межгодовых колебаний содержания хлорофилла в Рыбинском водохранилище // Озерные экосистемы: биологические процессы, антропогенная трансформация, качество воды. Минск: Белорусский гос. ун-т. С. 375.
Mineeva N.M., Makarova O.S. 2018. Chlorophyll content as an indicator of the modern (2015–2016) trophic state of Volga River Reservoirs // Inland Water Biology. V. 11. № 3. P. 386. https://doi.org/10.1134/S1995082918030124
Rivers of Europe. 2009. Amsterdam: Elsevier.
SCOR-UNESCO Working Group 17. 1966. Determination of photosynthetic pigments // Determination of photosynthetic pigments in sea water. Monographs on oceanographic methodology. Montreux: UNESСO. P. 9.